RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/67741-v
Mariana Palma-Tenango1,2, Marcos Soto-Hernández3, Rubén San Miguel-Chavez3, Araceli Gaytán-Acuña4, Víctor A. González-Hernández1
1Posgrado en Fisiología Vegetal. Recursos Genéticos y Productividad,Colegio de Postgraduados-Campus Montecillo, 2Facultad de Ciencias,Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 3Posgrado en Botánica,Colegio de Postgraduados-Campus Montecillo, 4Posgrado en Fruticultura,Colegio de Postgraduados-Campus Montecillo
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Tutaj prezentujemy metodę kolorymetryczną chlorku glinu, bezpośrednią technikę analityczną do ilościowego oznaczania flawonoidów w nagietku. Podejście to wykorzystuje prostą reakcję chemiczną polegającą na traktowaniu ekstraktu z nagietka odczynnikiem chlorku glinu, tworząc kolorowy kompleks. Intensywność koloru, oceniana za pomocą spektrofotometrii, koreluje ze stężeniem flawonoidów.
W naszym badaniu wykorzystano dostępną i wiarygodną metodę kolorymetryczną do ilościowego oznaczania całkowitej flawonoidów, ułatwiając analizę danych w laboratoriach fitochemicznych i wspierając badania nad związkami o właściwościach terapeutycznych.
Zawartość flawonoidów w nagietku jest badana podczas rozwoju kwiatów w celu określenia optymalnego czasu zbioru i maksymalizacji jego potencjału leczniczego i komercyjnego.
Nasz protokół jest czułą i wydajną mikrotechniką, która umożliwia ilościowe oznaczanie flawonoidów przy użyciu małych ilości próbek, optymalizację użycia rozpuszczalników, a analiza materiału roślinnego jest ograniczona.
[Instruktor] Na początek susz materiał roślinny w piekarniku z wymuszonym obiegiem powietrza w temperaturze 40 stopni Celsjusza przez 48 godzin. Po wyschnięciu wyjmij go z piekarnika, przenieś wysuszony materiał do papierowych kopert i przechowuj w ciemności w temperaturze pokojowej. Zamroź materiał roślinny za pomocą ciekłego azotu, aby przygotować się do mielenia. Następnie zamrożony materiał należy zmielić w moździerzu porcelanowym, aż uzyska jednolitą konsystencję. Przygotować próbki, ważąc 25 miligramów sproszkowanego materiału z każdej próbki. Do zważonego materiału dodać 500 mikrolitrów 80% metanolu. Aby wyekstrahować flawonoidy, inkubuj mieszaninę w temperaturze 70 stopni Celsjusza przez godzinę. Po inkubacji odwirować mieszaninę o stężeniu 731 g przez 13 minut. Teraz przygotuj podwielokrotności, biorąc 150 mikrolitrów otrzymanego ekstraktu i dodając do niego 37 mikrolitrów 80% metanolu. Weź 50 mikrolitrów ekstraktu i dodaj 100 mikrolitrów jednego molowego octanu potasu i 100 mikrolitrów 10% chlorku glinu. Uzupełnij roztwór, zwiększając całkowitą objętość mieszaniny do pięciu mililitrów za pomocą wody destylowanej. Ustaw długość fali absorbancji spektrofotometru na 415 nanometrów i zmierz absorbancję roztworu. Wygeneruj krzywą kalibracyjną, przygotowując roztwory kwercetyny w zakresie od 50, 100, 175 i 350 miligramów na mililitr. Aby przygotować próbki kalibracyjne, należy odpipetować 500 mikrolitrów roztworu kwercetyny z ostatniego punktu krzywej kalibracyjnej i dodać do roztworu 100 mikrolitrów 10% chlorku glinu i 100 mikrolitrów jednego molowego octanu potasu. Następnie dodaj 1,5 mililitra 80% metanolu i 2,8 mililitra wody destylowanej. Pozostaw roztwory kalibracyjne na 40 minut w temperaturze pokojowej. Ustaw długość fali absorbancji spektrofotometru na 415 nanometrów i zmierz absorbancję próbek kalibracyjnych, aby skonstruować krzywą kalibracyjną. Na koniec należy obliczyć stężenie flawonoidów i zawartość flawonoidów na gram suchej masy. Poniższa tabela podsumowuje, w jaki sposób stężenie flawonoidów i produkcja flawonoidów na roślinę różnią się od początkowego tworzenia pąków do pełnego kwitnienia i rozwoju owoców w główkach kwiatowych nagietka. Wyższe poziomy całkowitego stężenia flawonoidów zaobserwowano między stadiami ósmym i jedenastym, co odpowiada pąkom z oddzielonymi działkami kielicha do w pełni otwartych główek kwiatowych. We wcześniejszych stadiach, takich jak pąki ze zjednoczonymi działkami, oraz w późniejszych stadiach, takich jak starzejące się główki kwiatowe, stężenia flawonoidów były o 22% do 27% niższe w porównaniu z w pełni otwartymi główkami kwiatowymi. Rysunek ten przedstawia pomiar całkowitego stężenia flawonoidów w suchej masie główek kwiatowych nagietka, kwiatów języczkowatych i kwiatów rurkowych na różnych etapach rozwoju kwiatowego. Wyniki sugerują, że zrozumienie zmienności stężenia flawonoidów między różnymi strukturami i etapami kwiatowymi jest przydatne do określenia optymalnego czasu zbiorów, aby zmaksymalizować zawartość flawonoidów w główkach kwiatowych nagietka.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
12:32
Related Videos
8.1K Views
09:50
Related Videos
9.7K Views
10:49
Related Videos
5.9K Views
12:08
Related Videos
7.2K Views
10:22
Related Videos
14.2K Views
10:30
Related Videos
7.8K Views
14:39
Related Videos
4.2K Views
07:05
Related Videos
2.6K Views
06:38
Related Videos
585 Views
07:13
Related Videos
1.2K Views