March 28th, 2025
To badanie przedstawia opłacalną i efektywną metodologię generowania struktur komórkowych 3D za pomocą systemu opartego na stemplach do tworzenia mikrostudzienek w formach agarozowych. System sprzyja tworzeniu się jednolitych sferoidów/organoidów, poprawiając w ten sposób interakcje komórkowe. Takie podejście zmniejsza zmienność eksperymentalną i wspiera zastosowania w testowaniu leków i inżynierii tkankowej.
Zakres naszych badań polega na ustaleniu wydajnego i powtarzalnego protokołu generowania trójwymiarowych kultur komórkowych przy użyciu innowacyjnego systemu mikrostudzienek krokowych w formach agarozowych. Naszym celem jest znalezienie odpowiedzi na pytanie, jak stworzyć uproszczone, kontrolowane środowisko, które promuje jednolite, wysokiej jakości kultury 3D do testowania leków, inżynierii genetycznej i powiązanych zastosowań. Najnowsze postępy w systemach hodowli komórkowych 3D poprawiają interakcje międzykomórkowe i tworzą więcej środowisk podobnych do in vivo.
Takie podejście usprawnia tworzenie organoidów sferoidalnych, co czyni je obiecującym narzędziem do badań biomedycznych. Obecne technologie hodowli komórkowych 3D obejmują wiszące krople, rotacyjną hodowlę komórkową, tworzywa sztuczne o niskim stopniu przylegania, płytki ze stożkowymi dołkami, rusztowania mikroporowate, kulki magnetyczne i hydrożele bez rusztowań. Metody te umożliwiają tworzenie struktur komórkowych 3D, z których każda ma swoje zalety i ograniczenia.
Nasz protokół jest odpowiedzią na wyzwanie generowania jednolitych sferoidów i organoidów 3D o stałym rozmiarze i jakości na dużą skalę. Rozwiązuje problemy związane z żywotnością i gęstością komórek, trudnościami w obsłudze i niestabilnością podczas procesu, stanowiąc opłacalne, powtarzalne rozwiązanie dla wiarygodnych badań nad kulturami komórkowymi 3D. Jesteśmy zaangażowani w dążenie do doskonalenia narzędzi badawczych, generowania sferoidowych organoidów komórek beta wytwarzających insulinę do analizy in vitro i enkapsulacji w biopolimerach, mając na celu odwrócenie cukrzycy typu I i generowanie organoidów sferoidowych z potrójnie ujemnych ludzkich komórek raka piersi jako platformę badań przesiewowych leków przed leczeniem pacjenta.
Zaprojektuj urządzenie stemplujące przy użyciu określonego oprogramowania. Umyj wykonany na zamówienie stempel gąbką z miękkim włosiem i wodą destylowaną, aby usunąć wszelkie pozostałości. Wystaw czysty stempel na działanie światła ultrafioletowego przez pięć do 10 minut, aby zapewnić sterylność.
Aby przygotować 1 do 2% roztworu agarozy, zważ wymaganą ilość czystego proszku agarozy i rozpuść ją w PBS. Podgrzej roztwór w kuchence mikrofalowej, aż agaroza całkowicie się rozpuści. Następnie odpipetuj około trzech mililitrów roztworu agarozy o temperaturze 40 stopni Celsjusza do każdej studzienki sześciodołkowej płytki.
Umieść stempel na środku studzienki i pozwól agarozie zestalić się przez 5 do 10 minut. Po zestaleniu usuń stempel delikatnymi ruchami w przód iw tył, aby uwolnić próżnię bez uszkadzania mikrostudzienek. Umyj mikrostudzienki trzykrotnie PBS, aby usunąć pozostałości.
Wystaw płytkę na działanie światła ultrafioletowego przez 10 minut, aby wyeliminować zanieczyszczenie mikrobiologiczne. Dodaj trzy mililitry pożywki hodowlanej do każdego dołka na sześciodołkowej płytce i inkubuj płytkę przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza w inkubatorze dwutlenku węgla. Aby uzyskać jednorodną zawiesinę wysp trzustkowych świni, należy dodać trypsynę do dwuwymiarowej hodowli komórkowej w celu dysocjacji komórek.
Następnie policz komórki i dostosuj stężenie, aby osiągnąć pożądaną liczbę komórek na mikrodołku na płytce sześciodołkowej. Odpipetować trzy mililitry zawiesiny komórek na mikrodołkach agarozy i zakręcić płytką, aby zapewnić równomierne rozprowadzenie. Pozwól komórkom osiąść grawitacyjnie przez 10 do 15 minut.
Następnie obserwuj osadzone komórki pod mikroskopem. Inkubuj płytkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza w inkubatorze z 5% dwutlenkiem węgla. Co dwa do trzech dni zastąp 50% starego lub zużytego podłoża świeżym.
Kontynuuj hodowlę, aż w pełni uformują się zwarte, trójwymiarowe struktury. Aby zebrać sferoidy lub organoidy, usuń pożywkę hodowlaną i za pomocą przeciętej końcówki pipety zbierz trójwymiarowe struktury za pomocą energicznego pipetowania. Zwarte trójwymiarowe struktury udało się uformować po 48 godzinach hodowli w mikrostudzienkach agarozy, co zaobserwowano za pomocą zależnej od czasu agregacji komórek.
Żywotne trójwymiarowe struktury zostały zachowane po usunięciu z mikrostudzienek agarozowych z zielonym zabarwieniem wskazującym na żywe komórki w strukturach, potwierdzając żywotność i stabilność komórek.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
To badanie przedstawia opłacalną metodologię generowania 3D struktur komórkowych przy użyciu opartego na stemplu systemu mikrodołków w formach agarozowych. To podejście poprawia tworzenie sferoidyna i organoidalnych struktur, poprawiając interakcje komórkowe i zmniejszając zmienność eksperymentalną.
Standardized 3D spheroid and organoid generation is critical for predictive drug testing and translational tissue engineering. The novel stamp-based microwell system enables scalable, reproducible formation of uniform 3D cell structures, directly addressing variability and throughput challenges in early discovery and preclinical workflows. This platform supports robust in vitro modeling, enhancing confidence in downstream screening and mechanistic studies.
This microwell-based 3D culture method integrates from early discovery through lead identification and preclinical research, supporting both target validation and screening inflection points.