6 czerwca 2025
Protokół ten przedstawia dostępną metodę tworzenia gazoszczelnego środowiska do podawania lotnych środków znieczulających larwom danio pręgowanego w eksperymentach behawioralnych.
Nasze badania koncentrują się na farmakologii anestezjologicznej, która obejmuje zainteresowanie mechanizmami znieczulającymi, a także mechanizmami działania niepożądanego znieczulenia. Wykorzystanie larw danio pręgowanego jako modelu behawioralnego do badania farmakologii anestezjologicznej szybko się rozwija i ma wiele zalet, w tym ich przydatność do stosowania w eksperymentach przesiewowych na dużą skalę. Porównanie lotnych i dożylnych środków znieczulających pozostaje wyzwaniem, ponieważ podawanie lotnych środków znieczulających zwierzętom niewodnym jest znacznie łatwiejsze niż znieczulenia dożylnego.
Przeciwnie, znieczulenie dożylne jest łatwiejsze do podania zwierzętom wodnym niż lotne środki znieczulające. Protokół ten zapewnia stosunkowo niedrogi i dostępny sposób podawania lotnych środków znieczulających w zamkniętej komorze w celu przeprowadzenia eksperymentów behawioralnych na larwach danio pręgowanego. Inne protokoły tego rodzaju często wymagają jakiejś formy dostosowanej aparatury, która może być kosztowna lub nie jest łatwo dostępna dla tych, którzy nie mają środków na stworzenie lub nabycie tego typu sprzętu.
Na początek ułóż 0,5-milimetrowy arkusz silikonu na czystej, płaskiej powierzchni. Sprawdź arkusze pod kątem zagnieceń i unikaj ich, jeśli to możliwe. Wyczyść pościel 70% alkoholem, aby usunąć olej lub zanieczyszczenia.
Gdy arkusz całkowicie wyschnie, użyj aplikatora, takiego jak pędzel, aby nałożyć cienką, równą warstwę podkładu adhezyjnego na arkusz silikonowy. Po nałożeniu podkładu samoprzylepnego wyrównaj podwójnie powlekaną taśmę z arkuszem silikonowym z papierowym spodem skierowanym do góry. Stopniowo nakładaj taśmę na silikon za pomocą wałka, aby wygładzić powierzchnię i usunąć pęcherzyki powietrza.
W razie potrzeby ponownie nałóż podkład małymi sekcjami i kontynuuj nakładanie taśmy, gdy podkład wyschnie w ciągu jednej do pięciu sekund. Odwróć arkusz silikonowy, aby działał silikonową stroną do góry, aby pomóc w wizualizacji i usuwaniu pęcherzyków powietrza. Następnie pokrój silikon samoprzylepny na paski o szerokości co najmniej 10 milimetrów.
Upewnij się, że paski są wystarczająco długie, aby pokryć co najmniej szerokość jednego rzędu płytki studzienki. Aby przygotować lotne środki znieczulające, należy dodać objętość nielotnego rozpuszczalnika do fiolki HPLC lub scyntylacyjnej, zapewniając minimalną przestrzeń nad roztworem po dodaniu ostatecznego rozcieńczenia lotnego środka znieczulającego. Użyj gazoszczelnej strzykawki Hamiltona, aby dodać lotny środek znieczulający i szybko zamknij fiolkę.
Wymieszać fiolki przez wirowanie lub sonikację w zależności od potrzeb. Tymczasowo przechowuj je podczas przygotowywania talerzy danio pręgowanego. Aby przygotować eksperyment behawioralny, przenieś jedną larwę danio pręgowanego po pięciu dniach od zapłodnienia do co drugiego rzędu szklanej płytki 96-dołkowej.
Ostrożnie usuń roztwór E-3 z każdej studzienki. Użyj pipety transferowej, aby napełnić każdą studzienkę w rzędzie roztworem eksperymentalnym. Za pomocą samoprzylepnych pasków silikonowych szybko dociśnij pasek w dół, aby zapobiec tworzeniu się pęcherzyków i przelaniu się ryb do sąsiednich studzienek.
Następnie mocno dociśnij górną część płytki, aby upewnić się, że każda studzienka jest uszczelniona. Powtarzaj proces uszczelniania, aż roztwór zostanie wymieniony i wszystkie studzienki w co drugim rzędzie płytki zostaną uszczelnione. Delikatnie odwróć płytkę i sprawdź, czy nie ma pęcherzyków powietrza.
Umieść płytkę w jednostce obserwacyjnej zachowania stroną z klejem silikonowym do dołu i przeprowadź eksperyment behawioralny. W szczelnie zamkniętych studzienkach stężenie sewofluranu wykazywało minimalny spadek w ciągu trzech godzin, a izofluran wykazywał 4% spadek stężenia. Żaden ze środków znieczulających nie wykazał znaczącej utraty w ciągu pierwszych 30 do 60 minut.
Mediana skutecznego stężenia sewofluranu wynosiła 62 mikromole dla ruchu spontanicznego i 126 mikromolów dla ruchu wywołanego, przy czym drabinka była znacznie niższa niż wcześniej zgłaszane 240 mikromolowców, co może być spowodowane poprawą w tworzeniu gazoszczelnego uszczelnienia tą metodą. Zaobserwowano znaczącą różnicę w spontanicznym ruchu między odwiertami otwartymi i zamkniętymi, które pojawiły się po dwóch godzinach, prawdopodobnie z powodu wyczerpania tlenu w studni, i stanowią ważne ograniczenie tej techniki.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie przedstawia protokół tworzenia środowiska gazoszczelnego do podawania anestetyków lotnych larwom rybka zebry w eksperymentach behawioralnych. Metoda ta umożliwia badaczom zgłębianie farmakologii środków znieczulających oraz ich wpływu na zachowanie, wykorzystując zalety larw rybki zebry jako modelu behawioralnego.
Niezawodna administracja lotnych anestetyków u larw rybek danio umożliwia skalowalne badania z zakresu farmakologii behawioralnej, wspierając wczesną walidację celów terapeutycznych oraz ograniczanie ryzyka mechanistycznego w procesie poszukiwania leków na schorzenia OUN. Ta przystępna metoda rozwiązuje kluczowy problem w schematach pracy z modelami wodnymi, ułatwiając ilościową ocenę efektów działania anestetyków i zwiększając pewność predykcyjną w badaniach translacyjnych. Podejście to usprawnia podejmowanie decyzji dotyczących portfolio badawczego poprzez umożliwienie generowania solidnych i powtarzalnych danych w genetycznie podatnym systemie kręgowców.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków, od wczesnego testowania hipotez, poprzez identyfikację związków wiodących, aż po walidację przedkliniczną, w szczególności w ramach programów farmakologii OUN oraz środków znieczulających.