Name: Pobranie allotransplantacji unaczynionej i unerwionej ściany brzucha (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-07-18T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 30 s
Description: Poznaj metodę pobrania allotransplantatu unaczynionej i unerwionej ściany brzucha. Protokół zapewnia szczegółowy przewodnik po punktach anatomicznych i wymaganiach technicznych dla zespołów specjalizujących się w transplantacji kompozytowej.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Autorzy pragną wyrazić szczerą wdzięczność osobom, które hojnie ofiarowały swoje ciała nauce, umożliwiając w ten sposób badania anatomiczne. Wnioski uzyskane z takich badań mogą przyczynić się do znacznego poszerzenia wiedzy naukowej i poprawy opieki nad pacjentem. W związku z tym ci darczyńcy i ich rodziny zasługują na nasze najgłębsze uznanie.

Laboratorium Anatomii Wydziału Medycyny w Nicei we Francji hojnie udostępniło preparaty i materiały wykorzystane w niniejszym badaniu. Badanie zostało zatwierdzone przez Francuską Krajową Komisję Etyczną (numer zatwierdzenia 83.2024) i przeprowadzone zgodnie z zasadami Deklaracji Helsińskiej.
Allograft ściany brzusznej, o kształcie zbliżonym do pięciokąta, rozciąga się od wyrostka xifoidalnego do spojenia łonowego. Obejmuje on, w jednym bloku, skórę i tkankę podskórną, oba mięśnie proste brzucha, fragmenty mięśni wewnątrzbrzusznych, zewnętrznych oraz poprzecznych brzucha, głęboką powięź mięśniową, powięź poprzeczną oraz powięź otrzewnej ściennej. Przeszczep jest unaczyniony przez obustronne głębokie naczynia epigastryczne dolne, które zostają przecięte proksymalnie w miejscu ich odejścia od naczyń zewnętrznych biodrowych.
1. Rysunek przedoperacyjny (Rysunek 1)
<ol>
	<li>Umieścić pacjenta w pozycji tyłem na stole operacyjnym, z ramionami wzdłuż ciała. Zabezpieczyć oczy i zapewnić odpowiednie wyścielenie punktów nacisku.</li>
	<li>Za pomocą pisaka dermograficznego wyznaczyć granicę górną, rysując linię rozpoczynającą się od wyrostka mieczykowatego mostka. Przedłużyć linię bocznie, prowadząc ją wzdłuż dolnego brzegu klatki piersiowej po obu stronach, aż do pionowej linii znajdującej się 2-3 cm bocznie od kolca przedniego górnego kości biodrowej.</li>
	<li>Wyznaczyć granicę boczną, korzystając z pionowej linii umieszczonej 2-3 cm bocznie od kolca przedniego górnego kości biodrowej. Od tego punktu poprowadzić linię w dół do miejsca wyczuwalnego tętna tętnicy udowej, około 7-10 cm poniżej więzadła pachwinowego.</li>
	<li>Wyznaczyć granicę dolną, prowadząc linię od tętna tętnicy udowej w kierunku kolca łonowego po każdej ze stron, tworząc trójkąt, którego wierzchołek znajduje się poniżej więzadeł pachwinowych. Połączyć obie strony rysunku wzdłuż linii środkowej, kończąc na spojeniu łonowym.</li>
</ol>
<img alt="Schemat planowania nacięcia brzusznego na zwłokach." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/68418/68418fig1.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rycina 1"> 
Rycina 1: Rysunek przedoperacyjny. Ciągła niebieska linia reprezentuje chirurgiczne nacięcie skóry w allotransplantacji ściany brzucha. (1) wyrostek mieczowaty, (2) dolny łuk żebrowy, (3) kolec przedni górny kości biodrowej, (4) więzadło pachwinowe, (5) spojenie łonowe. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/68418/68418fig1large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
2. Górne nacięcie (Rysunek 2)
<ol>
	<li>Wykonaj obustronne podżebrowe nacięcie skóry wzdłuż wcześniej zaznaczonej linii, używając zimnego ostrza skalpela.</li>
	<li>Kontynuuj nacięcie przez tkankę podskórną za pomocą elektrokoagulatora, aż do dotarcia do powięzi mięśniowej.</li>
	<li>Nacinaj powięź pokrywającą mięśnie proste brzucha, aby odsłonić brzuszce mięśniowe.</li>
	<li>Przetnij przyczepy żebrowe mięśni prostych brzucha elektrokoagulatorem.</li>
	<li>Zidentyfikuj naczynia nadbrzuszne górne, podwiąż je, a następnie przetnij.</li>
	<li>Za każdym zmobilizowanym mięśniem prostym kolejno nacinaj głęboką aponeurozę mięśniową, powięź przekrośną oraz powięź otrzewnej ściennej.</li>
	<li>Bocznie rozpreparuj mięśnie skośne zewnętrzne i zidentyfikuj linię półksiężycowatą.</li>
</ol>
<img alt="Schemat preparatu z sekcji anatomicznej chirurgicznej; przedstawia warstwy, w tym skórę, tłuszcz i mięśnie brzucha." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/68418/68418fig2.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rycina 2"> 
Rycina 2: Górne nacięcie. Górne oddzielenie allograftu brzusznego umożliwia wizualizację mięśni ściany brzucha. (1) lewy mięsień prosty brzucha, (2) prawy mięsień prosty brzucha, (3) linia biała, (4) głęboka aponeuroza mięśniowa. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/68418/68418fig2large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
3. Nacięcia boczne (Rysunek 3)
<ol>
	<li>Wykonaj nacięcie skóry zimnym ostrzem zgodnie z uprzednio wyznaczonymi liniami bocznymi.</li>
	<li>Kontynuuj nacięcie przez tkankę podskórną przy użyciu elektrokoagulatora, aż do osiągnięcia warstwy aponeurotycznej mięśni skośnych zewnętrznych brzucha.</li>
	<li>Zidentyfikuj linię półksiężycowatą, a następnie wykonaj pionowe nacięcie w aponeurozie mięśnia skośnego zewnętrznego brzucha, około 2-3 cm bocznie od linii półksiężycowatej.</li>
	<li>Nacinaj mięsień skośny zewnętrzny brzucha, a następnie mięsień skośny wewnętrzny brzucha, zachowując odległość od 2 do 3 cm bocznie od linii półksiężycowatej, aby uniknąć uszkodzenia nerwów piersiowo-lędźwiowych.</li>
	<li>Zidentyfikuj płaszczyznę rozdzielenia między mięśniem skośnym wewnętrznym a mięśniem poprzecznym brzucha.</li>
	<li>Zlokalizuj nerwy piersiowo-lędźwiowe przebiegające między mięśniem skośnym wewnętrznym a mięśniem poprzecznym brzucha i ostrożnie odsuń je bocznie tak daleko, jak to możliwe.</li>
	<li>Po zabezpieczeniu nerwów piersiowo-lędźwiowych nacinaj mięsień poprzeczny brzucha, następnie powięź mięśnia poprzecznego brzucha, a na koniec otrzewną ścienną.</li>
</ol>
<img alt="Schemat techniki abdominoplastyki, ilustrujący nacięcia i warstwy anatomiczne w celach edukacyjnych." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/68418/68418fig3.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rycina 3"> 
Rycina 3: Nacięcie boczne i identyfikacja nerwów piersiowo-lędźwiowych. Boczna dyssekcja ukazuje nerwy piersiowo-lędźwiowe przebiegające między mięśniem skośnym wewnętrznym a mięśniem poprzecznym brzucha. Allograft jest unoszony w kierunku od głowowym do ogonowym. (1) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (2) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2, (3) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (4) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4, (5) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (6) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2, (7) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (8) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4, (9) prawy mięsień skośny wewnętrzny, (10) lewy mięsień skośny wewnętrzny, (11) prawy mięsień skośny zewnętrzny, (12) lewy mięsień skośny zewnętrzny, (13) prawy mięsień prosty brzucha, (14) lewy mięsień prosty brzucha, (15) powięź otrzewnej ścienna. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/68418/68418fig3large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
4. Uwalnianie allograftu od strony czaszkowej do ogonowej
<ol>
	<li>Rozpocząć uwalnianie allograftu od strony kranialnej do kaudalnej, pozostawiając go przytwierdzonym do ciała dawcy w jego dolnych krawędziach.</li>
	<li>Zidentyfikować głębokie pieńki tętnic i żył epigastrycznych dolnych znajdujące się na głębokiej powierzchni mięśni prostych brzucha.</li>
</ol>
5. Dolne cięcie i dyssekcja szypuły (Rycina 4, Rycina 5 oraz Rycina 6)
<ol>
	<li>Wykonać nacięcie skóry wzdłuż dolnej, wcześniej wyznaczonej linii, używając zimnego skalpela.</li>
	<li>Kontynuować preparowanie tkanki podskórnej za pomocą skalpela elektrycznego, aż do osiągnięcia powięziowej płaszczyzny mięśniowej kończyny dolnej w obrębie uda.</li>
	<li>Zidentyfikować żyłę odpiszczelną wielką; podwiązać ją i przeciąć. Zlokalizować skórny nerw boczny uda i go przekroić.</li>
	<li>Naciąć powięź kończyny dolnej, która musi zostać włączona w skład pobranego przeszczepu.</li>
	<li>Odwarstwić dwa trójkątne płaty powięziowo-skórne znajdujące się pod więzadłami pachwinowymi, aż do odsłonięcia naczyń udowych.</li>
	<li>Po obu stronach ostrożnie wypreparować tętnicę i żyłę udową wraz z ich odgałęzieniami bocznymi (powierzchownymi naczyniami najniższych naczyń brzusznych oraz powierzchownymi naczyniami obręczylicznymi). Kontynuować preparowanie w kierunku tętnicy i żyły biodrowej zewnętrznej, identyfikując i zachowując głębokie naczynia najniższych naczyń brzusznych oraz głębokie naczynia obręczyliczne. Zabezpieczyć głębokie naczynia najniższych naczyń brzusznych za pomocą silikonowej pętli. W przypadku dawców z bijącym sercem należy upewnić się, że tętnienie tętnicze jest utrzymane przez cały czas trwania procedury, oraz potwierdzić, że brzegi skóry allograftu krwawią, co jest wskaźnikiem perfuzji.</li>
	<li>Kontynuować preparowanie powyżej więzadła pachwinowego, usuwając powięź mięśniową nad mięśniem biodrowym, aby uniknąć uszkodzenia głębokich naczyń obręczylicznych.</li>
	<li>Za pomocą skalpela elektrycznego oddzielić mięśnie proste brzucha od ich przyczepów łonowych, dbając o zachowanie ciągłości głębokich naczyń najniższych naczyń brzusznych.</li>
	<li>Podwiązać i przekroić zawartość kanału pachwinowego: sznur nasienny i nerw biodrowo-pachwinowy u mężczyzn lub więzadło okrągłe macicy i nerw biodrowo-pachwinowy u kobiet.</li>
	<li>Zakończyć preparowanie poprzez podwiązanie i przecięcie głębokich naczyń obręczylicznych, powierzchownych naczyń obręczylicznych oraz powierzchownych naczyń najniższych naczyń brzusznych u ich ujść do naczyń biodrowych zewnętrznych i udowych. Upewnić się, że dwa głębokie pieńki naczyniowe najniższych naczyń brzusznych pozostają przytwierdzone zarówno do allograftu ściany brzusznej, jak i do ciała dawcy.</li>
</ol>
<img alt="Sekcja zwłok człowieka przedstawiająca anatomię klatki piersiowej i jamy brzusznej; opisowy schemat chirurgiczny." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/68418/68418fig4.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rycina 4"> 
Rycina 4Unaczynienie allograftu. Ten widok przedni ukazuje wszystkie naczynia (tętnice i żyły) oraz nerwy, które należy zidentyfikować. W tle, w jamie brzusznej, widoczne są narządy jamy brzusznej. (1) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (2) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2, (3) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (4) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4, (5) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (6) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2, (7) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (8) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4, (9) prawa tętnica biodrowa zewnętrzna, (10) lewa tętnica biodrowa zewnętrzna, (11) prawa tętnica naczasowa dolna, (12) lewa tętnica naczasowa dolna, (13) prawa żyła naczasowa dolna, (14) lewa żyła naczasowa dolna, (15) prawa żyła biodrowa zewnętrzna, (16) lewa żyła biodrowa zewnętrzna, (17) prawa tętnica biodrowa obwodnia głęboka, (18) lewa tętnica biodrowa obwodnia głęboka, (19) prawa tętnica biodrowa obwodnia powierzchowna, (20) prawa tętnica naczasowa dolna powierzchowna, (21) wspólny pień lewej tętnicy naczasowej dolnej powierzchownej i lewej tętnicy biodrowej obwodniej powierzchownej. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/68418/68418fig4large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.</a>
<img alt="Disekcja chirurgiczna, badania anatomiczne, odsłonięcie oznakowanych mięśni i nerwów, zastosowanie w badaniach edukacyjnych." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/68418/68418fig5.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rycina 5"> 
Rycina 5Unaczynienie allograftu (lewa strona). Na tym widoku z lewej strony widoczne są cztery nerwy piersiowo-lędźwiowe. Ponadto, w tym przypadku występuje wspólny pień między lewą powierzchowną tętnicą nadbrzuszną dolną a lewą powierzchowną tętnicą obwodową biodrową. (1) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (2) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2, (3) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (4) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4, (5) lewa tętnica biodrowa zewnętrzna, (6) lewa tętnica brzuszna dolna głęboka, (7) lewa żyła brzuszna dolna głęboka, (8) lewa żyła biodrowa zewnętrzna, (9) lewa tętnica biodrowa obwodowa głęboka, (10) wspólny pień lewej tętnicy brzusznej dolnej powierzchownej i lewej tętnicy biodrowej obwodowej powierzchownej. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/68418/68418fig5large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<img alt="Procedura chirurgiczna, wypreparowane nerwy oznaczone numerami 1-11 w kończynie górnej. Badanie anatomiczne, edukacja medyczna." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/68418/68418fig6.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rycina 6"> 
Rycina 6: Unaczynienie allograftu (strona prawa). Na tym widoku prawostronnym widoczne są cztery nerwy piersiowo-lędźwiowe. Tutaj prawa tętnica epigastryczna powierzchowna dolna oraz prawa tętnica biodrowa obwodna powierzchowna odchodzą oddzielnie od tętnicy udowej. (1) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (2) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2, (3) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (4) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4, (5) prawa tętnica biodrowa zewnętrzna, (6) prawa tętnica epigastryczna głęboka dolna, (7) prawa żyła epigastryczna głęboka dolna, (8) prawa żyła biodrowa zewnętrzna, (9) prawa tętnica biodrowa obwodna głęboka, (10) prawa tętnica biodrowa obwodna powierzchowna, (11) prawa tętnica epigastryczna powierzchowna dolna. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/68418/68418fig6large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
6. Odzwyczajanie i kondycjonowanie przeszczepu (Rysunek 7)
<ol>
	<li>Pozostaw allograft ściany brzusznej na szypułach naczyń epigastrycznych dolnych głębokich podczas usuwania trzewi brzusznych. W tym czasie umieść przeszczep w sterylnym naczyniu wypełnionym chłodnym roztworem soli fizjologicznej.</li>
	<li>Po całkowitym usunięciu trzewi brzusznych zidentyfikuj i zaznacz naczynia epigastryczne dolne głębokie po obu stronach – zazwyczaj jest to jedna tętnica i dwie żyły na każdą stronę. Ostrożnie wypreparuj i podwiąż naczynia w miejscu ich odgałęzienia od naczyń zewnętrznych tętnicy i żyły biodrowej. Przetnij naczynia, aby uwolnić przeszczep.</li>
	<li>Zakaniuluj każdą tętnicę epigastryczną dolną głęboką, używając kaniuli naczyniowej wyposażonej w kranik. Przymocuj kaniulę do światła tętnicy za pomocą podwiązki.</li>
	<li>Podłącz zestaw do irygacji do kaniul i przepłucz przeszczep 1-3 L roztworu konserwującego University of Wisconsin (UW) schłodzonego do 4 °C. Utrzymuj przepływ na poziomie około 100 mL/min pod niskim ciśnieniem (&lt;100 mmHg) do momentu, aż płyn odpływający stanie się klarowny. Krok ten zapewnia optymalne chłodzenie i konserwację przeszczepu przed transplantacją.</li>
</ol>
<img alt="Schemat sekcji anatomicznej przedstawiający struktury nerwowe; zestaw do edukacyjnej analizy anatomicznej." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/68418/68418fig7.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rysunek 7"> 
Rysunek 7: Wolny allograft brzuszny. Lewy obraz przedstawia stronę głęboką wolnego allograftu, a prawy obraz przedstawia stronę powierzchowną wolnego allograftu. Ten allotransplantat ściany brzusznej jest teraz gotowy do przyjęcia roztworu konserwującego i do transportu. (1) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (2) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2 lewy, (3) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (4) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4 lewy, (5) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (6) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2, (7) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (8) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4, (9) lewa głęboka tętnica nadbrzuszna dolna, (10) prawa głęboka tętnica nadbrzuszna dolna, (11) lewa głęboka żyła nadbrzuszna dolna, (12) prawa głęboka żyła nadbrzuszna dolna, (13) lewa głęboka tętnica obwodnia biodrowa, (14) prawa głęboka tętnica obwodnia biodrowa, (15) wspólny pień lewej powierzchownej tętnicy nadbrzusznej dolnej i lewej powierzchownej tętnicy obwodnia biodrowej, (16) prawa powierzchowna tętnica obwodnia biodrowa, (17) prawa powierzchowna tętnica nadbrzuszna dolna, (18) lewy mięsień prosty brzucha, (19) prawy mięsień prosty brzucha, (20) linia łukowata. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/68418/68418fig7large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.</a>

Autorzy nie mają do zadeklarowania konfliktu interesów.

Zgodnie z aktualną literaturą, allotransplantacja ściany brzucha okazała się skuteczną opcją rekonstrukcyjną w złożonych warunkach przeszczepu narządów. Obecne wskazania do stosowania tej techniki operacyjnej ograniczają się do przypadków, w których konwencjonalne metody rekonstrukcji powłok jamy brzusznej nie są możliwe podczas przeszczepienia narządów do jamy brzusznej. Należą do nich sytuacje takie jak wielobliznowaty i zwłóknieniony brzuch wynikający z powtarzających się operacji jamy brzusznej, obecność wielu przeto...

Skuteczne zamknięcie ściany jamy brzusznej po przeszczepieniu jelita (ITx) lub przeszczepie wielotrzewnym (MVTx) stanowi poważne wyzwanie dla chirurgów rekonstrukcyjnych ze względu na różne czynniki - takie jak ograniczona objętość jamy brzusznej biorcy, rozbieżności morfologiczne między dawcą a biorcą, obrzęk pooperacyjny, bliznowaty brzuch i obecność wielu przetok jelitowo-skórnych1, 2,3,4,5,6.
W ciągu ostatnich kilku dekad zaproponowano kilka technik zamykania jamy brzusznej w celu rozwiązania lub przynajmniej złagodzenia powikłań związanych ze złożonymi wadami jamy brzusznej. Należą do nich stosowanie siatek syntetycznych, rozszerzanie skóry, terapia podciśnieniowa oraz uszypułowane lub wolne płaty 2,6,7,8,9,10,11,12,13.
Jednak gdy konwencjonalne metody nie są wykonalne, można rozważyć dwie alternatywne strategie: wybór dawcy z mniejszymi narządami, chociaż może to wydłużyć czas oczekiwania i ryzyko śmiertelności dla pacjentów znajdujących się na listach do przeszczepów (Fishbein i wsp. stwierdzili, że idealny stosunek masy ciała dawcy do biorcy wynosi od 0,76 do 1,1)14 lub zaproponowanie związanego z tym przeszczepu ściany brzucha.
Koncepcja ta została po raz pierwszy wprowadzona przez Leviego i wsp. w 2003 r.15 , a następnie ulepszona w wersji mikronaczyniowej przez Ciprianiego i wsp.16. Jest to wykonalna i bezpieczna procedura o wielu zaletach, zwłaszcza biorąc pod uwagę, że immunosupresja jest już wymagana w przypadku przeszczepów jelitowych lub wielotrzewnych. Bardzo ważne jest jednak przeprowadzenie badań przesiewowych pod kątem przeciwwskazań dawcy, takich jak przepukliny lub wybrzuszenia brzucha w wywiadzie, wcześniejsze operacje w jamie brzusznej lub otyłość.
Główną zaletą allotransplantacji ściany brzucha jest możliwość monitorowania immunosupresji i odrzucenia przez komponent skórny przeszczepu, który służy zarówno jako modulator immunologiczny, jak i widoczny strażnik aktywności immunologicznej gospodarza. Stanowi to cenne narzędzie do wczesnego wykrywania odrzucenia przeszczepu jelitowego i, co ważniejsze, pomaga uniknąć niepotrzebnej nadmiernej immunosupresji w przypadkach dysfunkcji przeszczepu niezwiązanej z odrzuceniem immunologicznym1, 7,18.
Pomimo obiecujących zmian, allotransplantacja powłok brzusznych pozostaje rzadką interwencją chirurgiczną, z zaledwie około czterdziestoma przypadkami zgłoszonymi na całym świecie19,20. Przypadki te są opisane głównie w seriach przypadków i przeglądach 5,15,16,19,20,21,22,23,24,25,26,27,28,29,30 . Ponadto literatura na temat pozyskiwania unerwionych przeszczepów ścian jamy brzusznej jest bardzo ograniczona; Do tej pory nie przeprowadzono takich zabiegów u żywych ludzi31. Oczekuje się jednak, że reinerwacja znacznie poprawi wyniki funkcjonalne27. Niniejszy artykuł ma na celu przedstawienie krok po kroku protokołu pobierania alloprzeszczepu ściany jamy brzusznej - w tym specyfikę techniczną jego zreinerwiowanej odmiany.

<table><tbody><tr><td>11,5" Medium Premium Surgiclip II Auto Szwy Aplikator do naczyń</td><td>Wirus Covidien</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Szew jedwabny 2-0&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kleszcze Adson</td><td>Współczynnik zarządzania rybami (MPM</td><td>106-2112A</td><td></td></tr><tr><td>Bipolarne kleszcze do krzepnięcia</td><td>Olsen</td><td>20-1320I</td><td></td></tr><tr><td>Custodiol HTK Roztwór do perfuzji kończyn</td><td>Niezbędne farmaceutyki Inc.</td><td></td><td>Stosowanie poza wskazaniami rejestracyjnymi</td></tr><tr><td>Zestaw do irygacji pęcherza moczowego&nbsp;</td><td>Baxter Healthcare Corp.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Skalpel jednorazowy #15</td><td>Sklar</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DLP 3 mm kaniula naczyniowa końcówka</td><td>Medtronic Inc</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kauteryzacja cienkoigłowa</td><td>Cormedica (Kormedica)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rozszerzacze kleszczy</td><td>Wskaźnik WPI</td><td>15910</td><td></td></tr><tr><td>Zawór odcinający dożylnie</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mikro nożyczki</td><td>Wskaźnik WPI</td><td>504492</td><td></td></tr><tr><td>Diatermia monopolarna</td><td>Laboratorium doliny</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Piła oscylacyjna</td><td>GPC Medyczne</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Roztwór soli fizjologicznej 0,9%</td><td>GenDepot</td><td>S0600-101</td><td></td></tr><tr><td>Sterylny bandaż Esmarcha&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sterylny długopis chirurgiczny do znakowania</td><td>Kardynalne zdrowie</td><td>212PR powiedział:</td><td></td></tr><tr><td>Nożyczki do zeza</td><td>Surtex powiedział:</td><td>102-4109</td><td></td></tr><tr><td>Nici Ethilon 4.0</td><td>Etyka</td><td>1667G</td><td></td></tr><tr><td>Strzykawka 10 ml</td><td>Agilent</td><td>9301-6474</td><td></td></tr><tr><td>Trzy sterylne plastikowe torby do pobierania i trzy sterylne opaski zaciskowe</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kleszcze do tkanek</td><td>Współczynnik zarządzania rybami (MPM</td><td>106-0511</td><td></td></tr><tr><td>Pętla statku</td><td>Deroyal (Królewski)</td><td>30-711</td><td></td></tr></tbody></table>

pobranie allotransplantacji unaczynionej i unerwionej ściany brzucha

Procurement for a Vascularized and Reinnervated Abdominal Wall Allotransplantation

Rozległe i złożone wady ściany jamy brzusznej, szczególnie te związane z uszkodzeniem jelit lub narządów trzewnych, stanowią poważne wyzwanie medyczne i chirurgiczne. Idealna rekonstrukcja musi przywrócić anatomię, funkcję, czucie i obraz ciała. Obecnie żadna konwencjonalna metoda rekonstrukcji nie spełnia wszystkich tych kryteriów w tak złożonych scenariuszach. Jednak unaczyniona allotransplantacja kompozytowa (VCA) oferuje unikalne rozwiązanie, zapewniając zadowalające wyniki anatomiczne i funkcjonalne - choć kosztem immunosupresji przez całe życie.
Od czasu pierwszego zgłoszonego przypadku u człowieka w 2003 r. na całym świecie przeprowadzono około 40 przeszczepów ścian brzucha, wszystkie w połączeniu z przeszczepem jelitowym lub wielotrzewnym. Chociaż opisano różne adaptacje techniczne, procedura okazała się zarówno bezpieczna, jak i skuteczna dla pacjentów ze złożonymi wadami ściany brzucha. Do tej pory nie podjęto próby przeprowadzenia alloprzeszczepu unerwionej ściany jamy brzusznej u ludzi. Jednak reinerwacja wydaje się być kolejną granicą, z potencjałem poprawy wyników funkcjonalnych i zmniejszenia powikłań.
Protokół ten określa ustandaryzowaną procedurę pobierania i przygotowania unaczynionego alloprzeszczepu kompozytowego ściany brzucha, zaprojektowaną w celu zapewnienia optymalnych wyników i zminimalizowania uszkodzeń tkanek. Przeszczep, unaczyniony przez głębokie dolne naczynia nadbrzusza, jest pobierany z dużymi marginesami, aby umożliwić rekonstrukcję bez napięć. Wyszczególniamy również konkretne kroki wymagane do pobrania unerwionej próbki. Pod koniec zabiegu dwie głębokie dolne tętnice nadbrzusza są kaniulowane, a przeszczep jest perfundowany roztworem konserwującym do transportu. Ostatecznie protokół ten ma na celu standaryzację pobierania przeszczepów powłok brzusznych. Ma to być cenne źródło informacji zarówno do badań translacyjnych, jak i zastosowań klinicznych, zwłaszcza że zainteresowanie przeszczepem powłok brzusznych stale rośnie.

Ciało dawcy wypreparowane do tego badania było kobietą o wzroście 1,69 m i standardowej morfologii ciała. Pobrany alloprzeszczep ściany jamy brzusznej mierzył 40 cm wysokości i 21 cm szerokości, przy stosunkowo jednolitej grubości 43 mm.
Z każdej strony udało się wyizolować cztery nerwy piersiowo-lędźwiowe dobrego kalibru (o średnicy około 1 mm). Nerwy te zostały wypreparowane bocznie w płaszczyźnie anatomicznej między wewnętrznymi skośnymi i poprzecznymi mięśniami brzucha, uzyskując średnią d...

Protokół ten opisuje krok po kroku procedurę pobierania unaczynionego i unerwionego alloprzeszczepu ściany jamy brzusznej, szczegółowo opisując jego anatomiczne punkty orientacyjne, wymagania techniczne i przyszłe potencjalne zastosowania kliniczne.

Pobranie allotransplantacji unaczynionej i unerwionej ściany brzucha

Extensive and complex abdominal wall defects, particularly those associated with intestinal or visceral organ damage, pose significant medical and ...

Nasze francuskie laboratorium koncentruje się na ulepszaniu VCA w celu ulepszenia protokołów zbioru, optymalizacji konserwacji przeszczepów, strategii zmniejszania uszkodzenia reperfuzyjnego niedokrwiennego i wywoływania tolerancji u ludzi.Główne obecne wyzwania w VCA obejmują standaryzację metod pobierania i opracowanie solidnych protokołowanych technik konserwacji tkanek w celu zapewnienia żywotności przeszczepu i poprawy długoterminowych wyników funkcjonalnych i immunologicznych. Protokół ten jest przeznaczony dla zespołów specjalizujących się w VCA, aby pomóc im w wykonywaniu zoptymalizowanych allotransplantacji jamy brzusznej w niezawodny i powtarzalny sposób. W przeciwieństwie do innych technik, protokół ten zawiera przewodnik krok po kroku, jak uzyskać przeszczep unerwionej ściany brzucha, który jest kluczem do optymalnego powrotu do sprawności.Nasz francuski dział rekonstrukcji koncentruje się na poprawie regeneracji nerwów, rozwijającej się dziedzinie wykorzystującej techniki takie jak TMR, APNI i przewody nerwowe. Jest to szczególnie istotne na etapie przeszczepu tego przeszczepu.Nasz protokół rodzi kluczowe pytania o to, ile napraw nerwów jest potrzebnych i jakie techniki zastosować, aby osiągnąć znaczące unerwienie motoryczne i powrót do sprawności.Nasze laboratorium skupi się na konserwacji przeszczepów, które są kluczem do udanego przeszczepu, a ten protokół może być bardzo przydatnym modelem, jeśli zostanie pobrany na martwym dawcy, ale musi to być wykonane pod ścisłą autoryzacją badawczą.[Instruktor] Aby rozpocząć, ułóż pacjenta na wznak na stole operacyjnym z rękami wzdłuż ciała. Użyj ołówka dermograficznego, aby narysować górną linię graniczną, zaczynając od wyrostka mieczykowatego mostka. Rozciągnij tę linię na boki, śledząc dolny brzeg klatki piersiowej po obu stronach, aż osiągnie pionową linię położoną od dwóch do trzech centymetrów bocznie od przedniego górnego odcinka kręgosłupa. Zdefiniuj granicę boczną za pomocą pionowej linii umieszczonej od dwóch do trzech centymetrów bocznie w stosunku do przedniego górnego odcinka kręgosłupa. Od tego miejsca narysuj linię skierowaną w dół, aby dotrzeć do tętna tętnicy udowej znajdującej się około siedmiu do 10 centymetrów poniżej więzadła pachwinowego. Następnie narysuj dolną granicę, przedłużając linię od impulsu tętnicy udowej w kierunku kręgosłupa łonowego po każdej stronie. Połącz obie strony rysunku wzdłuż linii środkowej, kończąc na syntezie łonowej, aby uzupełnić trójkątny kontur. Wykonaj obustronne podżebrowe nacięcie skóry wzdłuż wcześniej zaznaczonej linii za pomocą zimnego ostrza skalpela. Następnie, za pomocą urządzenia do elektrokoagulacji, naciąć tkankę podskórną, aż do dotarcia do powięzi mięśniowej. Naciąć powięź leżącą nad mięśniami prostymi brzucha, aby odsłonić leżące poniżej ciała mięśniowe i przeciąć przyczepy żebrowe mięśni prostych brzucha za pomocą urządzenia do elektrokoagulacji. Teraz zidentyfikuj górne naczynia nadbrzusza za mięśniami prostymi, ostrożnie je podnieś i przekrój za pomocą elektrokoagulacji za każdym zmobilizowanym mięśniem prostym, naciąć głębokie rozcięgno mięśniowe, następnie powięź poprzeczną, a na końcu powięź ciemieniowo-otrzewnową. Z boku wypreparuj zewnętrzne mięśnie skośne, aby odsłonić i zidentyfikować linię półksiężycowatą. Wykonaj nacięcie skóry zimnym ostrzem skalpela zgodnie z wcześniej zaznaczoną granicą boczną. Użyj urządzenia do elektrokoagulacji, aby kontynuować nacięcie przez tkankę podskórną, aż do osiągnięcia warstwy rozcięgnowej zewnętrznych mięśni skośnych. Następnie naciąć zewnętrzny mięsień skośny, a następnie mięsień skośny wewnętrzny, zachowując boczny margines od dwóch do trzech centymetrów od linii półksiężycowatej. Następnie zlokalizuj nerwy piersiowo-lędźwiowe między wewnętrznymi skośnymi i poprzecznymi mięśniami brzucha i ostrożnie wypreparuj te nerwy bocznie tak daleko, jak to możliwe, aby je zachować. Po zabezpieczeniu nerwów piersiowo-lędźwiowych należy naciąć mięsień poprzeczny brzucha, następnie powięź poprzeczną, a następnie powięź ciemieniową otrzewnową. Podczas uwalniania przeszczepu allogenicznego zidentyfikuj głębokie dolne szypułki nadbrzusza znajdujące się na głębokiej powierzchni mięśni prostych brzucha. Wykonaj nacięcie skóry wzdłuż dolnej części za pomocą zimnego ostrza skalpela. Za pomocą skalpela elektrycznego kontynuuj preparację przez tkankę podskórną, aż do osiągnięcia płaszczyzny rozcięgna mięśniowego podudzia uda. Teraz zidentyfikuj żyłę odpiszczelową wielką, podwiąż ją i przetransektuj. Następnie zlokalizuj boczny nerw skórny kości udowej i przeciąć go. Naciąć powięź podudzi, upewniając się, że jest ona zawarta w próbce przeszczepu. Następnie podnieś dwie trójkątne płaty skórne powięzi znajdujące się pod więzadłami pachwinowymi, aż do odsłonięcia naczyń udowych. Po obu stronach dokładnie wypreparuj tętnicę i żyłę udową wraz z ich odgałęzieniami pobocznymi, w tym powierzchownym dolnym nadbrzuszem i powierzchownymi obwodowymi naczyniami biodrowymi. Kontynuuj sekcję w kierunku zewnętrznej tętnicy biodrowej i żyły, identyfikując i zachowując głębokie dolne naczynie biodrowe i głębokie obwodowe naczynia biodrowe. Następnie zapętl głębokie dolne naczynia nadbrzusza silikonową pętlą dla ochrony. Aby kontynuować sekcję powyżej więzadła pachwinowego, usuń powięź mięśniową nad mięśniem biodrowym, aby uniknąć uszkodzenia głębokich naczyń biodrowych obwodowych. Za pomocą skalpela elektrycznego odłącz mięśnie proste brzucha od ich przyczepów łonowych, upewniając się, że głębokie dolne naczynia nadbrzusza pozostają nienaruszone. Następnie podwiąż i przetransektuj zawartość kanału pachwinowego, w tym więzadło okrągłe macicy i nerw biodrowo-pachwinowy u kobiet. Aby zakończyć sekcję, podwiąż i przetnij głębokie naczynia biodrowe obwodowe, powierzchowne biodrowe obwodowe i powierzchowne dolne naczynia nadbrzusza u ich źródeł na zewnętrznych naczyniach biodrowych i udowych. Upewnij się, że dwie głębokie dolne szypułki naczyń krwionośnych nadbrzusza pozostają przyczepione zarówno do alloprzeszczepu ściany jamy brzusznej, jak i do ciała dawcy. Po usunięciu wnętrzności brzusznych zidentyfikuj i zaznacz głębokie dolne naczynia nadbrzusza po obu stronach, zwykle jedną tętnicę i dwie żyły po każdej stronie. Ostrożnie wypreparuj i podwiąż te naczynia u ich początku od zewnętrznych naczyń biodrowych, a następnie przeciąć naczynia, aby uwolnić przeszczep. Teraz cewnikować każdą głęboką dolną tętnicę nadbrzusza za pomocą kaniuli naczyniowej wyposażonej w kran i przymocować ją do światła tętnicy za pomocą podwiązki. Na koniec podłącz zestaw do irygacji do kaniul i przepłucz przeszczep jednym do trzech litrów roztworu konserwującego University of Wisconsin o temperaturze czterech stopni Celsjusza. Utrzymuj natężenie przepływu około 100 mililitrów na minutę pod niskim ciśnieniem, nie przekraczając 100 milimetrów rtęci, aż ścieki będą czyste. Średnia długość użytkowa nerwów piersiowo-lędźwiowych wypreparowanych zarówno z prawej, jak i lewej strony wynosiła 68 milimetrów, przy czym długość poszczególnych nerwów wahała się od 60 do 85 milimetrów. Głęboka dolna tętnica nadbrzusza mierzyła 85 milimetrów po lewej stronie i 71 milimetrów po prawej stronie przed wejściem do przeszczepu.

procurement-for-vascularized-reinnervated-abdominal-wall

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Ten film demonstruje metodę generowania modelu interpozycji aorty myszy do badania odrzucenia naczyniowego wywołanego alloimmunologicznie. Po umieszczeniu znieczulonej myszy dawcy w pozycji leżącej, aorta podnerkowa brzuszna (IAA) jest starannie izolowana od otaczających struktur. Rozgałęzione naczynia są podwiązane, a oba końce IAA są zaciśnięte, aby zapobiec przepływowi krwi przed resekcją. Następnie dawca IAA jest wszczepiany allogenicznej myszy biorcy, a przepływ krwi jest przywracany przez...

Mysi model interpozycji aorty do badania odrzucenia naczyniowego wywołanego alloimmunologicznie

Unaczynione allotransplantacje kompozytowe (VCA) stały się kliniczną rzeczywistością. Jednak szerokie zastosowanie kliniczne VCA jest ograniczone przez przewlekłą wielolekową immunosupresję. Autorzy prezentują wiarygodny i powtarzalny duży model zwierzęcy do tłumaczenia nowych strategii immunomodulacyjnych, które mogą zminimalizować lub potencjalnie wyeliminować potrzebę immunosupresji w VCA.

Zmodyfikowany heterotopowy model przeszczepu kończyn tylnych świń do badań nad translacyjną unaczynioną allotransplantacją kompozytową (VCA)

Opisujemy protokół szczepienia interpozycji aorty u myszy. Celem protokołu jest dostarczenie modelu, za pomocą którego można badać procesy patologiczne i strategie terapeutyczne związane z reakcjami alloimmunologicznymi w tętnicach i wynikającymi z nich zmianami tętniczymi, które przyczyniają się do niewydolności przeszczepu narządu.

Mysi model odrzucenia naczyniowego indukowanego alloimmunologicznie i miażdżycy tętnic po przeszczepie

Do tej pory, grube ubytki tkanek są zazwyczaj rekonstruowane za pomocą autologicznych płatów tkankowych lub tkanek zmodyfikowanych. W niniejszym protokole przedstawiamy nową metodę inżynierii unaczynionego płata tkankowego z autologiczną szypułką, która ma służyć jako substytut płatów autologicznych.

Zaprojektowana unaczyniona płat mięśniowa

Unaczyniony kompozytowy przeszczep allogeniczny oferuje korzyści zmieniające życie biorcom przeszczepów, ale biologiczne przyczyny odrzucenia przeszczepu i waskulopatii pozostają słabo poznane. Przedstawiony tutaj model chirurgiczny gryzoni oferuje powtarzalny, klinicznie istotny model przeszczepu, umożliwiając naukowcom ocenę zdarzeń odrzucenia przeszczepu i potencjalnych strategii terapeutycznych zapobiegających ich wystąpieniu.

Zmodyfikowany heterotopowy model płata kostno-skórnego kończyn tylnych u szczura do translacyjnych badań nad allotransplantacją unaczynionych kompozytów

Przedstawiamy protokół wykorzystania normotermicznego systemu perfuzji krwi ex vivo do dostarczania środków terapeutycznych do całego alloprzeszczepu serca w heterotopowym modelu przeszczepu serca u świń.

Protokół heterotopowego przeszczepu serca u świń w celu dostarczenia leków do alloprzeszczepu serca

Protokół opisuje chirurgiczne pobieranie i późniejszą decelularyzację unaczynionych płatów świńskich poprzez perfuzję detergentu z dodecylosiarczanu sodu przez unaczynienie płata w dostosowanym bioreaktorze perfuzyjnym.

Pobieranie i perfuzja-decelularyzacja unaczynionych płatów świń w niestandardowym bioreaktorze perfuzyjnym

Opisujemy technikę chirurgiczną i proces decelularyzacji kompozytowych kończyn tylnych szczurów. Decelularyzacja odbywa się przy użyciu dodecylosiarczanu sodu o niskim stężeniu przez system perfuzji maszynowej ex vivo.

Pobieranie i decelularyzacja kończyn tylnych szczura przy użyciu bioreaktora opartego na perfuzji ex vivo do unaczynionej allotransplantacji kompozytowej

Tutaj prezentujemy protokół pozyskiwania i przygotowywania unaczynionych kompozytowych alloprzeszczepów dłoni podczas przeszczepu dystalnego lub bliższego przedramienia.

Unaczyniony kompozytowy przeszczep allogeniczny ręki Pobieranie i przygotowanie do allotransplantacji dystalnego i proksymalnego przedramienia: podejście krokowe

W tym miejscu protokół wyjaśnia krok po kroku technikę pobierania alloprzeszczepu ramienia na poziomie transramiennym lub ramienno-ramiennym podczas allotransplantacji ramienia.

Unaczyniony kompozytowy przeszczep allogeniczny kończyny górnej do allotransplantacji bliższego ramienia

Protokół ten opisuje technikę chirurgiczną pobierania ludzkiego modelu płata perforatora opartego na głębokim dolnym szypułku tętnicy nadbrzuszkowej, przeznaczonego do badań eksperymentalnych.

Eksperymentalny ludzki model płatów DIEP do badania strategii zachowania dla naczyniowych allograftów kompozytowych i płatów wolnych

Poznaj metodę pobrania allotransplantatu unaczynionej i unerwionej ściany brzucha. Protokół zapewnia szczegółowy przewodnik po punktach anatomicznych i wymaganiach technicznych dla zespołów specjalizujących się w transplantacji kompozytowej.

Pobranie allotransplantacji unaczynionej i unerwionej ściany brzucha

Przeglądaj więcej filmów