1 sierpnia 2025
W tym artykule przedstawiono uproszczony protokół rozwarstwiania i dysocjacji mysiego nabłonka węchowego w celu sekwencjonowania jednojądrowego RNA.
Tutaj przedstawiamy protokół zaprojektowany, aby pomóc w szybkim rozwarstwieniu nabłonka węchowego w celu sekwencjonowania pojedynczej komórki lub pojedynczego jądra. Nasz protokół stawia na pierwszym miejscu szybkość i łatwość uczenia się i jest idealny do zastosowań jednokomórkowych, w których tkanka jest homogenizowana, a szybka sekcja jest ważniejsza niż zachowanie integralności anatomicznej, w przeciwieństwie do poprzednich metod. Nasz protokół umożliwia szybką, przyjazną dla użytkownika sekcję nabłonka węchowego, co ma na celu ułatwienie badań sekwencjonowania pojedynczych komórek i promowanie badań nad genetycznymi podstawami układu węchowego.
Aby rozpocząć, zdobądź pozbawioną skóry głowę myszy. Użyj pary cienkich nożyczek z ostrymi końcówkami, aby wykonać dwa nacięcia, aby obustronnie zerwać łuki jarzmowe z kości łuskowej, umieszczając jedną końcówkę nożyczek w tylnym oczodole, a drugą w sąsiedztwie kanału słuchowego. Wykonaj płytkie nacięcie od oczodołu do oczodołu wzdłuż najbardziej przedniej części kości czołowej, nacinając tylko grzbietową powierzchnię kości czołowej na głębokość około jednego do dwóch milimetrów.
Teraz przeciąć wzdłuż linii środkowej czaszki od otworu wielkiego przez szwy strzałkowe i międzyczołowe, aż do nacięcia międzyoczodołowego wykonanego wcześniej. Włóż parę kleszczy w nacięcie linii środkowej i mocno pociągnij jedną półkulę sklepienia czaszki na boki. Trzymając kość nosową i siekacze, użyj kleszczy, aby oderwać przeciwległe sklepienie czaszki.
Pozwól, aby mózg, w tym opuszki węchowe, został usunięty wraz z półkulą kości, gdy jest ona odrywana. Następnie użyj szczypiec do kości lub Rongeurs, aby usunąć pozostałą kość czołową i kość przedszczękową aż do podstawy siekaczy. Przeciąć wzdłuż szwu czołowo-nosowego za pomocą szczypiec do kości, aby uwolnić kość nosową z płytki cribriform.
Następnie użyj kleszczy, aby podnieść kość nosową z płytki cribriform, aby odsłonić nabłonek węchowy. Jeśli resztki kości przedszczękowej zasłaniają grzbietowy nabłonek węchowy, usuń go przed kontynuowaniem. Teraz użyj pary kleszczy z cienką końcówką, aby delikatnie zabezpieczyć grzbietową część przegrody nosowej na jej styku z płytką cribriform i pociągnij ją do tyłu.
Główny nabłonek węchowy uwolni się jako całkowicie nienaruszona struktura. Obrazowa cytometria przepływowa wykazała, że 53,69% wszystkich zdarzeń dotyczyło jąder. Wśród pojedynczych jąder 53,89% miało wysoką cyrkularność.
Poletka kontroli jakości potwierdziły stałą jakość sekwencjonowania w czterech próbkach, z jednolitym rozkładem liczby genów i mitochondriów. Geny markerowe w zbiorze danych są zgodne z wieloma dobrze znanymi genami markerowymi dla każdego typu komórki.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł przedstawia protokół szybkiej sekcji i dysocjacji nabłonka węchowego myszy, mający na celu ułatwienie sekwencjonowania RNA pojedynczych jąder komórkowych. Metoda ta kładzie nacisk na szybkość i łatwość wykonania, co czyni ją odpowiednią do zastosowań, w których konieczna jest homogenizacja tkanki.
Szybkie i powtarzalne przygotowanie zawiesin pojedynczych jąder komórkowych z nabłonka węchowego myszy umożliwia wysokorozdzielcze profilowanie molekularne zróżnicowanych populacji neuronów i komórek progenitorowych. Niniejszy protokół rozwiązuje kluczowy problem w genomice pojedynczych komórek poprzez zminimalizowanie czasu ekstrakcji tkanki i zachowanie integralności jąder, co wspiera rzetelną walidację celów oraz redukcję ryzyka mechanistycznego w procesach badawczych z zakresu neuronauki sensorycznej. Zastosowane podejście zwiększa pewność prognostyczną we wczesnych etapach odkryć oraz w badaniach translacyjnych skoncentrowanych na genetycznych podstawach funkcji i regeneracji węchu.
Niniejszy protokół integruje etap wczesnego odkrywania z identyfikacją związków wiodących, umożliwiając płynne przejście od ekstrakcji tkanki do sekwencjonowania pojedynczych jąder komórkowych i analizy danych.