Name: In vivo (in vivo ) Mikroskopia konfokalna: standardowa procedura operacyjna do wykrywania roztoczy nużeńca na brzegu powieki (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-07-03T13:55:00.000+00:00
Duration: 5 min 21 s
Description: Poznaj nieinwazyjną metodę mikroskopii konfokalnej in vivo do wykrywania roztoczy Demodex na brzegu powieki. Standaryzowany protokół zwiększa komfort pacjenta i ułatwia wdrożenie kliniczne.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Badania te były wspierane przez grant z Krajowego Administracyjnego Departamentu Nauki i Technologii Tradycyjnej Medycyny Chińskiej - Zhejiang Prowincjonalna Administracja Tradycyjnej Medycyny Chińskiej Współtworzenie Planu Nauki i Technologii (GZY-ZJ-KJ-23086). Mikroskopię konfokalną in vivo wykonano przy użyciu tomografu siatkówki Heidelberg Retina Tomograph III z dodatkiem modułu rogówki Rostock. Autorzy pragną wyrazić wdzięczność firmie Heidelberg Engineering GmbH, wszystkim uczestnikom i osobom pracującym nad tą standardową procedurą operacyjną.

<ol><li>Cheng, A. M., Sheha, H., Tseng, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+advances+on+ocular+Demodex+infestation%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Recent advances on ocular Demodex infestation.</a> Curr Opin Ophthalmol. 26 (4), 295-300 (2015).</li>
<li>Czepita, D., Kuźna-Grygiel, W., Czepita, M., Grobelny, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Demodex+folliculorum+and+Demodex+brevis+as+a+cause+of+chronic+marginal+blepharitis%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Acad+Med+Stetin%22%5BJournal%5D)">Demodex folliculorum and Demodex brevis as a cause of chronic marginal blepharitis.</a> Ann Acad Med Stetin. 53 (1), discussion 67 63-67 (2007).</li>
<li>Clifford, C. W., Fulk, G. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Association+of+diabetes%2C+lash+loss%2C+and+Staphylococcus+aureus+with+infestation+of+eyelids+by+Demodex+folliculorum+%28acari%3A+Demodicidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Med+Entomol%22%5BJournal%5D)">Association of diabetes, lash loss, and Staphylococcus aureus with infestation of eyelids by Demodex folliculorum (acari: Demodicidae).</a> J Med Entomol. 27 (4), 467-470 (1990).</li>
<li>O'Dell, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Psychosocial+impact+of+Demodex+blepharitis%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Psychosocial impact of Demodex blepharitis.</a> Clin Ophthalmol. 16, 2979-2987 (2022).</li>
<li>Yeu, E., Holdbrook, M. J., Baba, S. N., Gomes, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Psychosocial+impact+of+Demodex+blepharitis%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Psychosocial impact of Demodex blepharitis.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 62 (8), 1261-1261 (2021).</li>
<li>Wu, M., Wang, X., Han, J., Shao, T., Wang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+ocular+surface+characteristics+and+Demodex+infestation+in+paediatric+and+adult+blepharokeratoconjunctivitis%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the ocular surface characteristics and Demodex infestation in paediatric and adult blepharokeratoconjunctivitis.</a> BMC Ophthalmol. 19 (1), 67(2019).</li>
<li>Zou, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characteristics+of+bacterial+community+in+eyelashes+of+patients+with+Demodex+blepharitis%5BTitle%5D)+AND+%22Parasit+Vectors%22%5BJournal%5D)">Characteristics of bacterial community in eyelashes of patients with Demodex blepharitis.</a> Parasit Vectors. 17 (1), 64(2024).</li>
<li>Coston, T. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Demodex+folliculorum+blepharitis%5BTitle%5D)+AND+%22Trans+Am+Ophthalmol+Soc%22%5BJournal%5D)">Demodex folliculorum blepharitis.</a> Trans Am Ophthalmol Soc. 65, 361-392 (1967).</li>
<li>Mastrota, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Method+to+identify+Demodex+in+the+eyelash+follicle+without+epilation%5BTitle%5D)+AND+%22Optom+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Method to identify Demodex in the eyelash follicle without epilation.</a> Optom Vis Sci. 90 (6), e172-e174 (2013).</li>
<li>Gao, Y. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+prevalence+of+demodex+in+eyelashes+with+cylindrical+dandruff%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">High prevalence of demodex in eyelashes with cylindrical dandruff.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 46 (9), 3089-3094 (2005).</li>
<li>Randon, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+confocal+microscopy+as+a+novel+and+reliable+tool+for+the+diagnosis+of+Demodex+eyelid+infestation%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">In vivo confocal microscopy as a novel and reliable tool for the diagnosis of Demodex eyelid infestation.</a> Br J Ophthalmol. 99 (3), 336-341 (2015).</li>
<li>Muntz, A., Purslow, C., Wolffsohn, J. S., Craig, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+Demodex+diagnosis+in+the+clinical+setting+using+a+novel+in+situ+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Cont+Lens+Anterior+Eye%22%5BJournal%5D)">Improved Demodex diagnosis in the clinical setting using a novel in situ technique.</a> Cont Lens Anterior Eye. 43 (4), 345-349 (2020).</li>
<li>Kojima, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+evaluation+of+ocular+demodicosis+using+laser+scanning+confocal+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">In vivo evaluation of ocular demodicosis using laser scanning confocal microscopy.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (1), 565-569 (2011).</li>
<li>Tas, A. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interobserver+and+intraobserver+agreements+of+the+detection+of+Demodex+infestation+by+in+vivo+confocal+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Beyoglu+Eye+J%22%5BJournal%5D)">Interobserver and intraobserver agreements of the detection of Demodex infestation by in vivo confocal microscopy.</a> Beyoglu Eye J. 7 (3), 173-180 (2022).</li>
<li>Wang, Y. -J., Ke, M., Chen, X. -M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prospective+study+of+the+diagnostic+accuracy+of+the+in+vivo+laser+scanning+confocal+microscopy+for+ocular+demodicosis%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Prospective study of the diagnostic accuracy of the in vivo laser scanning confocal microscopy for ocular demodicosis.</a> Am J Ophthalmol. 203, 46-52 (2019).</li>
<li>hrt3 rostock cornea module user manual v. 1.5 english. , Heidelberg Engineering GmbH. 
 <a target="_blank" href="http://www.HeidelbergEngineering.com">http://www.HeidelbergEngineering.com</a> (2025).</li>
<li>Lee, S. H., Chun, Y. S., Kim, J. H., Kim, E. S., Kim, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+relationship+between+Demodex+and+ocular+discomfort%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">The relationship between Demodex and ocular discomfort.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 51 (6), 2906-2911 (2010).</li>
<li>Sattler, E. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+in+vivo+detection+and+quantification+of+Demodex+mites+by+confocal+laser+scanning+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Noninvasive in vivo detection and quantification of Demodex mites by confocal laser scanning microscopy.</a> Br J Dermatol. 167 (5), 1042-1047 (2012).</li>
<li>Duncan, N., Sood, P., Khandelwal, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Demodex+blepharitis%3A+Its+role+and+treatment+in+ocular+surface+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Ophthalmol+Rep%22%5BJournal%5D)">Demodex blepharitis: Its role and treatment in ocular surface disease.</a> Curr Ophthalmol Rep. 10 (4), 107-113 (2022).</li>
<li>Luo, X., Li, J., Chen, C., Tseng, S., Liang, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ocular+demodicosis+as+a+potential+cause+of+ocular+surface+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Cornea%22%5BJournal%5D)">Ocular demodicosis as a potential cause of ocular surface inflammation.</a> Cornea. 36 Suppl 1 (Suppl 1), S9-S14 (2017).</li>
</ol>

Autorzy nie mają do ujawnienia żadnych konfliktów interesów.

Ektopasożyt Demodex jest jednym z najczęstszych pasożytów u ludzi. Roztocza te żyją w mieszkach włosowych, gruczołach Meiboma (MG) i gruczołach łojowych i są przezroczyste, wydłużone i mierzą 0,15-0,4 mm długości17. IVCM wykonywany za pomocą urządzenia zapewnia obrazy w czasie rzeczywistym o wymiarach 400 μm x 400 μm z rozdzielczością poprzeczną 1 μm/piksel i powiększeniem 800x. Dzięki IVCM można uzyskać szczegółowe obrazy nużeńca w mieszkach rzęsowych; Można również monitorować ...

Zapalenie powiek jest jedną z najczęściej spotykanych diagnoz okulistycznych w praktyce klinicznej. Dowody sugerują istotny związek między obecnością roztoczy Demodex a zapaleniem powiek1. Zarażenie roztoczy wiąże się zarówno z bezpośrednimi uszkodzeniami spowodowanymi przez Demodex2, jak i z reakcjami immunologicznymi wywołanymi przez jego wydzieliny, które mogą działać jako wektor dla bakterii i potencjalnie przyczyniać się do rozwoju zapalenia powiek3. Demodex blepharitis(DB) powoduje szereg niezadowalających zdarzeń, w tym uszkodzenie rogówki i powierzchni oka1, które negatywnie wpływają na jakość życia pacjenta 4,5.
Demodex to pasożytniczy roztocz, który zamieszkuje mieszki włosowe i gruczoły łojowe, a także obszary w ich pobliżu6. Wykrycie nużeńca w mieszkach rzęs lub wokół nich może pomóc w diagnozie DB7. Rozpoznanie kliniczne DB obejmuje depilację rzęs i obserwację Demodex pod mikroskopem świetlnym. Uznaje się jednak, że wiele roztoczy znajdujących się głęboko w mieszku włosowym może pozostać w otworze po usunięciu rzęs 8,9,10, co może prowadzić do niedoszacowania liczby roztoczy. Mikroskopia konfokalna in vivo (IVCM), nieinwazyjne narzędzie do obrazowania w okulistyce, oferuje alternatywne podejście do wizualizacji nużeńca w mieszkach rzęs lub wokół mieszków rzęs in vivo11. Technika ta zapewnia wgląd w mikrostruktury powierzchni oka i powiek z rozdzielczością podobną do histologicznej11. Roztocza można zidentyfikować wizualnie na podstawie ich charakterystycznej morfologii i ruchliwości. Jednak IVCM może stanowić wyzwanie techniczne dla okulistów, którzy nie mają dużego doświadczenia z tą metodą obrazowania12.
Aby ułatwić zastosowanie IVCM w rutynowych zastosowaniach klinicznych, w tym w diagnostyce różnicowej i obserwacji zdrowych powiek, a także DB, proponujemy standardową procedurę operacyjną (SOP) do obserwacji roztoczy Demodex na brzegu powieki. Protokół ten zapewnia klinicystom systematyczne podejście do wykrywania roztoczy in vivo.

<table><tbody><tr><td>Żel okulistyczny na bazie karbomeru, Vidisic</td><td>&nbsp; Bausch and Lomb, Berlin, Niemcy</td><td>8187195</td><td></td></tr><tr><td>Oprogramowanie Heidelberg Eye Explorer</td><td>&nbsp; Heidelberg Engineering GmbH, Heidelberg, Niemcy</td><td>Wersja 1.3.3.0</td><td></td></tr><tr><td>Tomograf siatkówki III w Heidelbergu</td><td>&nbsp; Heidelberg Engineering GmbH, Heidelberg, Niemcy</td><td>Przekaźnik HRT3-08398</td><td></td></tr><tr><td>Chlorowodorek proparakainy</td><td>Alcon Laboratories, Fort Worth, Teksas, Stany Zjednoczone</td><td>8387271</td><td></td></tr><tr><td>Czapka TomoCap</td><td>&nbsp; Heidelberg Engineering GmbH, Heidelberg, Niemcy</td><td>18829</td><td>Nasadka z PMMA</td></tr></tbody></table>

in vivo (in vivo ) mikroskopia konfokalna: standardowa procedura operacyjna do wykrywania roztoczy nużeńca na brzegu powieki

In Vivo Confocal Microscopy: A Standard Operating Procedure for the Detection of Demodex Mites at the Eyelid Margin

Inwazja roztoczy Demodex może powodować zapalenie brzegu powieki, a zapalenie powiek Demodex może w przypadkach klinicznych powodować szereg chorób oczu. Wielu lekarzy diagnozuje porażenie oczu roztoczami nużeńca poprzez depilację rzęs i obserwację rzęs pod mikroskopem świetlnym in vitro. Jednak obecność resztek roztoczy po usunięciu rzęs i ból związany z zabiegiem są ograniczeniami standardowej opieki klinicznej.
Mikroskopia konfokalna in vivo (IVCM) to nieinwazyjna technika obrazowania, która pozwala klinicystom na szczegółową obserwację roztoczy Demodex na brzegu powieki bez depilacji. Technika ta umożliwia bezbolesną analizę, którą można wykonać w <30 min. Pomimo coraz większej uwagi poświęcanej temu badaniu, może być ono niedostępne dla wielu okulistów bez dużego doświadczenia. W artykule przedstawiono standardową procedurę operacyjną wizualizacji roztoczy Demodex na brzegu powieki za pomocą IVCM w celu promowania szerszego zastosowania tej metody w pracy klinicznej.

Zgodnie z opisaną powyżej standardową procedurą operacyjną (SOP), w 2024 roku zbadano pacjentów z podejrzeniem infestacji Demodex. Dodatkowo porównano dane z 2023 roku, kiedy SOP ta nie była jeszcze stosowana. Jak pokazano na Rysunku 5, liczba pacjentów, u których w 2024 roku przeprowadzono badanie IVCM w celu wykrycia Demodex, jest znacznie wyższa niż w roku poprzednim. Niniejsza SOP umożliwia badanie pacjentów w różnym wieku, od 4 do 92 lat.
<p class="jove_content big...

Mikroskopia konfokalna in vivo jest obiecującą techniką obrazowania o wysokiej rozdzielczości. Przedstawiamy następującą procedurę dla klinicystów w celu wykrycia nużeńca na brzegu powieki in vivo.

In vivo (in vivo ) Mikroskopia konfokalna: standardowa procedura operacyjna do wykrywania roztoczy nużeńca na brzegu powieki

Demodex mite infestation can cause inflammation of the eyelid margin, and Demodex blepharitis could give rise to a series of ocular conditions in clinical ...

Opracowujemy ustandaryzowany protokół mikroskopii konfokalnej in vivo do wykrywania powiek roztoczy nużeńca, aby rozszerzyć zastosowanie kliniczne. Dostosowujemy późniejszy ze standardowych protokołów IVCM, który ogranicza wykrywanie roztoczy nużeńca in vivo w praktyce klinicznej. Zapewnia nieinwazyjne, bezbolesne i szybkie wykrywanie in vivo z łatwą obserwacją, eliminując ból apelacyjny i łagodne pozostałości.[Narrator] Aby rozpocząć, wyczyść obiektyw urządzenia za pomocą chusteczek do czyszczenia soczewek. Za pomocą wacików nasączonych alkoholem dokładnie zdezynfekuj zagłówek i podbródek. Ściśnij dwie czarne dźwignie razem i pociągnij podbródek do przodu, aż się zatrzaśnie, aby upewnić się, że znajduje się we właściwej pozycji poziomej. Teraz przekręć regulacyjną, aby odsunąć kamerę od pacjenta przed badaniem. Nałóż około 0,02 mililitra żelu okulistycznego na bazie karbomeru na przednią powierzchnię soczewki mikroskopu urządzenia. Następnie zdejmij sterylną jednorazową nasadkę z polimetakrylanu metylu z pokrowca ochronnego. Mocno dociśnij boki nasadki do soczewki mikroskopu, nie dotykając przedniej powierzchni. Następnie nałóż jedną kroplę substytutu żelu na przednią powierzchnię nasadki. Utwórz nową kartotekę pacjenta w oprogramowaniu. Teraz nałóż kroplę chlorowodorku proparakainy na brzeg powieki, która ma być zbadana. Przesuń kamerę skanującą w lewo z punktu widzenia operatora. Następnie obróć obiektyw kamery CCD, aby wyregulować obraz kontrolny prostopadle do osi optycznej kamery laserowej skanera. Rozpocznij nowe badanie za pomocą oprogramowania. Na karcie Examination Data (Dane badania) wybierz Heidelberg Retina Tomograph Cornea z listy rozwijanej Device (Urządzenie) i obserwuj okno dialogowe Cord Module Settings (Ustawienia modułu rogówki). Wybierz FOV 400 z listy rozwijanej Field Lens i kliknij OK, aby potwierdzić. Następnie poczekaj, aż otworzy się okno akwizycji i sprawdź wyświetlanie obrazu na żywo z skanującej kamery laserowej i obrazu kontrolnego. Następnie ustaw czynniki w oknie akwizycji. Wybierz 1x z listy rozwijanej CCD Zoom Factor, aby ustawić kontrolny rozmiar obrazu. Zaznacz pola automatycznej jasności i automatycznej, aby włączyć automatyczną kontrolę jasności. Upewnij się, że wybrano opcję Section Scan Type (Typ skanowania sekcji). Aby uzyskać obraz referencyjny, wyłącz automatyczną regulację jasności. Następnie wyreguluj płaszczyznę ogniskową za pomocą kołka regulacyjnego, aż obraz na żywo ciemnieje, a następnie pojawi się jasne odbicie, wskazujące przednią powierzchnię nasadki z polimetakrylanu metylu. Kliknij przycisk Resetuj w sekcji Mikrometr pozycji ostrości i poczekaj, aż wartość osiągnie 0. Następnie zaznacz pole Automatyczna jasność i wyłącz automatyczne resetowanie. Teraz dostosuj wysokość stołu do badań. Połóż podbródek pacjenta na podbródku, a czoło na podpórce pod czoło. Wyreguluj uniesienie podbródka za pomocą czarnej tak, aby górne powieki pacjenta zrównały się z czerwonymi znakami na kolumnie zagłówka. Poinstruuj pacjenta, aby patrzył w dół w kierunku stałego źródła światła i utrzymywał stałe spojrzenie. Za pomocą bawełnianego wacika odwróć górną powiekę i całkowicie odsłoń korzeń rzęsy i brzeg powieki. Przekręć regulacyjną, aby wyrównać odbicie wiązki laserowej na poziomie górnej powieki. Następnie przesuń skanującą kamerę laserową, aż górny brzeg powieki delikatnie zetknie się ze środkiem nasadki z polimetakrylanu metylu. Ostrożnie zeskanuj korzeń rzęsy od strony skroniowej do nosowej, wykonując drobne ruchy poziome brzegu powieki. Obróć soczewkę mikroskopu zgodnie z ruchem wskazówek zegara lub przeciwnie do ruchu wskazówek zegara, aby zmodyfikować ostrość i obserwować całe mieszki włosowe i korzenie. Nagraj wszystkie podejrzane obrazy demodeksu za pomocą pedału nożnego. Po zakończeniu badania wybierz opcję Sortuj szybko według czasu akwizycji w oknie dialogowym Opcje, aby wyświetlić obrazy od strony skroniowej do nosowej. W 2024 r. liczba osób poddawanych mikroskopii konfokalnej in vivo w celu wykrycia nużeńca znacznie wzrosła we wszystkich grupach wiekowych w porównaniu z 2023 r., przy czym największą liczbę zaobserwowano w grupie wiekowej od 21 do 30 lat. Wprowadzona w 2024 r. standardowa procedura operacyjna umożliwiła włączenie pacjentów w wieku od czterech lat do ponad 90 lat.

in-vivo-confocal-microscopy-standard-operating-procedure-for

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Technikę CLEM dostosowano do analizy morfologii ultrastrukturalnej błon, organelli i struktur wewnątrzkomórkowych pod wpływem cząsteczek wstrzykniętych metodą mikroiniekcji. Metoda ta łączy zaawansowane techniki mikromanipulacji/mikroiniekcji, konfokalnej mikroskopii fluorescencyjnej oraz mikroskopii elektronowej, co pozwala na uzyskanie rozdzielczości od milimetrów do wielu nanometrów. Technika ta znajduje zastosowanie w szerokim spektrum badań.

Korelacyjna mikroskopia świetlna i elektronowa (CLEM) jako narzędzie do wizualizacji cząsteczek wprowadzonych metodą mikroiniekcji oraz ich eukariotycznych celów wewnątrzkomórkowych

Tutaj wprowadzamy metodę, cocem3D, która pozwala na odkrycie ultrastruktury konkretnej komórki w jej natywnej tkance poprzez połączenie konfokalnej i seryjnej skaningowej mikroskopii elektronowej.

Korelacyjna, konfokalna i trójwymiarowa mikroskopia elektronowa określonej komórki czuciowej

Mechanizmy rządzące ruchliwością śródmiąższową komórek T efektorowych CD4 w miejscach zapalenia są stosunkowo nieznane. Przedstawiamy nieinwazyjne podejście do wizualizacji i manipulacji limfocytami T CD4 przygotowanymi in vitro w zapalnej skórze właściwej ucha, co pozwala na badanie dynamicznego zachowania tych komórek in situ.

Obrazowanie migracji śródmiąższowej komórek T CD4 w stanie zapalnym skóry właściwej

Ten protokół opisuje, jak techniki obrazowania o wysokiej rozdzielczości, takie jak optyczna koherentna tomografia w domenie spektralnej i skaningowa oftalmoskopia laserowa, mogą być wykorzystane u małych gryzoni, przy użyciu systemu platformy obrazowania okulistycznego, aby uzyskać informacje odpowiednio o grubości siatkówki i rozmieszczeniu komórek mikrogleju.

In vivo (in vivo) Obrazowanie myszy reporterowych Cx3cr1gfp/gfp z optyczną koherentną tomografią w domenie spektralnej i skaningową oftalmoskopią laserową

Ta technika opisuje efektywny proces przesiewowy do oceny specyficznych dla bakterii środków obrazowania optycznego w tkance płuc ex vivo ludzkiej, za pomocą światłowodowej konfokalnej mikroskopii fluorescencyjnej w celu szybkiej identyfikacji kandydatów na sondy chemiczne o małym potencjale translacyjnym.

Optyczne badania przesiewowe nowych sond specyficznych dla bakterii na ludzkiej tkance płucnej ex vivo za pomocą konfokalnej endomikroskopii laserowej

Suche oko to coraz częstsza dolegliwość, która znacznie pogarsza jakość życia pacjentów. Niedawno wykazano, że nowe urządzenie wykorzystujące intensywne światło pulsacyjne, zaprojektowane specjalnie dla obszaru okołogałkowego, poprawia stabilność filmu łzowego i objawy dyskomfortu ocznego w chorobie suchego oka spowodowanej dysfunkcją gruczołów Meiboma.

Intensywne światło pulsacyjne w leczeniu zespołu suchego oka spowodowanego dysfunkcją gruczołów Meiboma

Prezentowana tutaj jest wielofotonowa mikroskopijna platforma do obrazowania powierzchni oka myszy na żywo. Fluorescencyjna mysz transgeniczna umożliwia wizualizację jąder komórkowych, błon komórkowych, włókien nerwowych i naczyń włosowatych na powierzchni oka. Nieliniowe sygnały generujące drugą harmoniczną pochodzące ze struktur kolagenowych zapewniają obrazowanie bez znaczników dla architektur zrębowych.

Niestandardowa platforma mikroskopii wielofotonowej do obrazowania na żywo rogówki i spojówki myszy

Przedstawiamy protokół użycia światłowodowej konfokalnej laserowej mikroendoskopii (CLM) do nieinwazyjnego badania czasoprzestrzennego rozkładu liposomów w oku po wstrzyknięciu podspojówkowym.

Przestrzenno-czasowe obrazowanie in vivo ocznych systemów dostarczania leków za pomocą światłowodowej konfokalnej laserowej mikroendoskopii

Zapalenie powierzchni oka uszkadza tkanki powierzchni oka i zagraża funkcjom życiowym oka. Niniejszy protokół opisuje metodę wywoływania zapalenia oka i zbierania uszkodzonych tkanek w mysim modelu dysfunkcji gruczołów Meiboma (MGD).

Indukcja stanu zapalnego powierzchni oka i gromadzenie zajętych tkanek

Niniejszy artykuł demonstruje działanie i wpływ mikroskopii konfokalnej in vivo w diagnozie i leczeniu suchego oka oraz bada zastosowanie i wyniki mikroskopii konfokalnej in vivo , aby stanowić podstawę przyszłych badań.

In Vivo Mikroskopia konfokalna w diagnostyce i leczeniu suchego oka: Skupienie się na protokołach obrazowania i interpretacji

Poznaj nieinwazyjną metodę mikroskopii konfokalnej in vivo do wykrywania roztoczy Demodex na brzegu powieki. Standaryzowany protokół zwiększa komfort pacjenta i ułatwia wdrożenie kliniczne.

In vivo (in vivo ) Mikroskopia konfokalna: standardowa procedura operacyjna do wykrywania roztoczy nużeńca na brzegu powieki

Przeglądaj więcej filmów