30 grudnia 2025
Komórki raka piersi Hs578T zawierające mutację p53 V157F wykazują istotnie wyższą fluorescencję tioflawiny T w porównaniu z komórkami MCF7, co wskazuje na zwiększoną agregację białek. Pomiary fluorescencji wielopunktowej poprawiają dokładność i niezawodność wykrywania agregatów bogatych w β arkusze, podkreślając znaczenie mutacji p53 podatnych na agregację w badaniach nad rakiem oraz opracowywaniu strategii terapeutycznych.
Badanie to analizuje skłonność do agregacji mutanta p53 V157F w komórkach raka piersi oraz ocenia wielopunktowe odczyty płytek pod kątem wykrywania. Obecne wyzwania eksperymentalne obejmują dokładne wykrywanie agregacji p53, ilościowe określenie struktur amyloidowych oraz zapewnienie spójnego pomiaru na powierzchniach testów komórkowych. Na początek weź 10 mikrolitrów trypan blue w rurce mikrowirówki.
Dodaj 10 mikrolitrów komórek zawieszonych w DPBS do tej samej rurki i dokładnie wymieszaj zawartość, aby zapewnić jednorodność. Załaduj 10 mikrolitrów przygotowanej mieszanki na podkładkę, aby policzyć żywe komórki za pomocą automatycznego licznika komórek. Na podstawie liczby żywotności należy nasiono 30 000 żywotnych komórek na odwiert do płyty hodowli 96 dołków.
Oznacz jedną studnię jako kontrolną bez barwienia i wyznacz pozostałe trzy dołki do barwienia. Waż 0,02 grama proszku Tioflawiny T lub THT na wagi. Dodaj proszek do pięciu mililitrów wody zdejonizowanej i dokładnie wymieszaj, aż proszek całkowicie się rozpuści.
Następnie dodaj składniki barwiące do jednego mililitra DPBS. Dodaj do rurki roztwory THT i Hoechst i delikatnie mieszaj, aby zapewnić jednolitość. Teraz usuń podłoże hodowlane z każdego dołku płyty hodowli 96 dołków.
Do każdego odwiertu barwiącego dodaj 100 mikrolitrów przygotowanego bufora THT i buforu barwiącego Hoechst, a następnie 100 mikrolitrów DPBS do niebarwionego dołka kontrolnego. Umieść płytkę hodowlę w ciemnym miejscu w temperaturze pokojowej na 30 minut. Ostrożnie aspiruj lub odrzucaj roztwór barwiący z każdej dołki, nie naruszając jednowarstwy komórkowej.
Następnie dodaj 100 mikrolitrów DPBS do każdego otworu i zostawij na 30 sekund. Następnie wyrzuć DPB. Po powtórzeniu procesu mycia dodaj 100 mikrolitrów świeżego DPBS do każdego otworu.
Usuń pokrywkę z płyty hodowli 96 dołków przed odczytem sygnału fluorescencyjnego. Włóż płytę hodowli z 96 dołkami do czytnika mikropłyt. Zmierz fluorescencję THT z wzbudzeniem na 450 nanometrów i misję na 490 nanometrów oraz zmierz fluorescencję Hoechst 33342 z wzbudzeniem na 360 nanometrów i misję na 460 nanometrów.
Wybierz pożądany obszar odczytu, a następnie ustaw parametry czytnika, w tym potrząsanie przez pięć sekund przed odczytem – przekierowanie góry oraz czas integracji 140 milisekund. Po uzyskaniu danych fluorescencyjnych wykonaj obliczenia w celu uzyskania wartości agregacji białek. Na koniec normalizacja intensywności fluorescencji THT poprzez ustawienie stosunku w komórkach MCF7 jako jednego, aby służyć jako bazowa kontrola. Pomiary wykonywano zarówno metodą pojedynczej, jak i czteropunktowej na dołkach barwionych i niebarwionych w komórkach MCF7 i Hs578T.
Komórki raka piersi Hs578T wykazały 3,2-krotny wzrost intensywności fluorescencji tioflawiny T w porównaniu z komórkami MCF7 stosowanymi metodą jednopunktowego odczytu. Przy użyciu metody średniej odczytu czteropunktowej komórki Hs578T wykazały 3,86-krotny wzrost fluorescencji tioflawiny T w porównaniu do komórek MCF7. Fluorescencja tioflawiny T w komórkach Hs578T była konsekwentnie podwyższona we wszystkich czterech punktach pomiarowych w porównaniu do komórek MCF7.
Protokół ten umożliwia dokładne wykrywanie agregacji białek w kontekstach komórkowych za pomocą barwienia tioflawiną T, w połączeniu z niezawodnymi metodami wielopunktowego odczytu płytek fluorescencyjnych.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie analizuje skłonność do agregacji mutantu p53 V157F w komórkach raka piersi, wskazując na trudności w dokładnym wykrywaniu agregacji p53 oraz kwantyfikowaniu struktur amyloidopodobnych. Badania podkreślają znaczenie stosowania wielopunktowych pomiarów fluorescencji w celu zwiększenia dokładności detekcji.
Dokładna detekcja skłonnych do agregacji mutantów p53 w komórkach raka piersi rozwiązuje krytyczny problem we wczesnej fazie odkryć onkologicznych, gdzie niejednoznaczność mechanistyczna może utrudniać walidację celu i ocenę ryzyka. Wielopunktowa kwantyfikacja fluorescencji tioflawiny T umożliwia solidny i powtarzalny pomiar agregatów amyloidopodobnych, co zwiększa pewność prognostyczną w badaniach funkcjonalnych mutacji onkogennych. Możliwość ta usprawnia selekcję projektów w portfolio i dostarcza informacji niezbędnych do podejmowania decyzji o kontynuacji lub przerwaniu programów ukierunkowanych na nowotwory napędzane przez p53.
Ta wielopunktowa metoda fluorescencyjna integruje się z kontinuum od odkrywania do badań przedklinicznych, łącząc wczesne badania mechanistyczne z badaniami translacyjnymi nad celami podatnymi na agregację.