17 października 2025
Protokół ten określa metodę wytwarzania organoidów skóry zawierających mieszki włosowe pochodzące z ludzko indukowanych pluripotentnych komórek macierzystych, wykorzystując płaski, fizjologicznie istotny system hodowli powietrzno-cieczowy, aby odwzorować architekturę i funkcję skóry.
Zakres moich badań polega na opracowaniu modelu uszkodzeń indukowanych UVB, aby móc badać patogenność rzadkiej choroby, xeroderma pigmentosum, a dokładniej XPA. Jednym z wyzwań tych modeli in vitro jest to, że wychowanie trwa dość długo, około czterech miesięcy, a ponieważ to wciąż dość młoda dziedzina, musimy je jeszcze lepiej scharakteryzować. Zalety tego modelu to model 3D pochodzący od hiPSC, kultura, że powietrze i ciecz się stykają, odtwarzają architekturę ludzkiej skóry i posiadają kończyny skórne, takie jak gruczoł łojowy i mieszki włosowe.
Na początek przygotuj roztwór jednomolowy, dodając granulki wodorotlenku sodu do pustej rurki 15-mililitrowej. Dodaj wodę destylowaną do pelletów i przeprowadź rurkę wirem, aby je rozpuścić. Filtr sterylizuje roztwór wodorotlenku sodu o stężeniu 0,1 mola za pomocą membranowego filtra o rozmiarze poru o średnicy 0,2 mikrometra.
Na lodzie rozcieńczaj roztwór kolagenu typu I za pomocą 10 razy stężenia PBS, pięciomilimolowego wodorotlenku sodu i wody destylowanej, aby dostosować ostateczną objętość. Rozprowadz 150 mikrolitrów tego roztworu kolagenowego do każdej insetki, umieszczonej w standardowej płytki z 12 dołkami. Inkubuj płytkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 30 minut, aby żel kolagenowy mógł się zpolimeryzować.
Następnie wytnij końcówki P1000 podgrzewanym skalpelem, aby uzyskać końcówki o szerokim przełęcie. Następnie użyj szerokich końcówek otworu, aby umieścić wybraną torbielowatą strukturę z niewielką ilością medium na pokrywce 10-centymetrowej szalki Petriego. Ostrożnie usuń wszelkie produkty uboczne struktury za pomocą sterylnego skalpela, stabilizując ją sterylnymi kleszczami po przeciwnej stronie.
Wyciąć około jednego milimetra z obu końców torbielowatego organoidu skóry przylegającego do pierwszego nacięcia skalpelem. Używając sterylnych kleszczy, delikatnie rozłóż górną warstwę skóry. Pokrój tkankę na dwie do czterech części, w zależności od rozmiaru.
Następnie, używając sterylnych kleszczy, przesuwaj każdy element na wkład pokryty kolagenem, skierowany do góry. Dodaj 600 mikrolitrów OMM do każdego dołku standardowej płytki z 12 dołkami. Przenieś wkład z powrotem na płytkę 12-dołkową zawierającą OMM.
Następnie umieścić płytkę w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza z 5% dwutlenku węgla. Do dnia zero powstał pojedynczy, gęsty agregat komórkowy zawierający większość komórek dzięki starannemu obsłudzeniu i wirówce. Prawidłowa indukcja nabłonka powierzchniowego doprowadziła do powstania cienkiego, przejrzystego nabłonka na zewnętrznej warstwie kruszywa już trzeciego dnia. Do 12. dnia cienka warstwa komórek mezenchymalnych zgromadziła się na jednym biegunie torbieli.
Płytki i szpiączki do włosów stały się widoczne między 50. a 80. dniem, po współindukcji nabłonka i mezenchymalnego. Organoidy pozbawione widocznych plakodów wykazywały niezwykle cienki nabłonek i były wyłączone z przejścia planarnego. Do płaskiego generowania organoidów skóry wyselekcjonowano jedynie torbiele o średnicy co najmniej pięciu milimetrów o spolaryzowanych produktach ubocznych.
Mieszki włosowe stopniowo wydłużały się przez 27 dni hodowli styku powietrze-ciecz. Gruczoły łojowe stały się widoczne około 14. dnia w konfiguracji płaskiej. Stopniowo zwiększało się przebarwienie organoidów z czasem.
Barwienie hematoksyliny i eozyny ujawniło warstwowy nabłonek oraz błonę podstawną oddzielającą je od skóry skórnej. Barwienie immunofluorescencyjne potwierdziło architekturę podobną do ludzkiej skóry w płaskich organoidach skóry.
Niniejsza praca opracowuje model uszkodzeń indukowanych promieniami UVB w celu zbadania unforemowanej skóry (xeroderma pigmentosum), koncentrując się na generowaniu organoidów skóry zawierających mieszki włosowe, pochodzących z ludzkich indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych. Organoidy są hodowane z wykorzystaniem fizjologicznie istotnego interfejsu powietrze-ciecz, aby skutecznie naśladować architekturę i funkcję ludzkiej skóry.
Ludzkie organoidy płaskiej skóry z włosami, pochodne z iPSC i hodowane na granicy powietrze-ciecz, stanowią fizjologicznie istotny system in vitro do badania biologii skóry oraz formowania przydatków. Platforma ta umożliwia predykcyjne modelowanie odpowiedzi tkankowej na szkodliwe czynniki środowiskowe oraz środki farmakologiczne, wspierając badania translacyjne i mechanistyczną redukcję ryzyka w badaniach i rozwoju (R&D) w dziedzinie dermatologii. Podejście to zwiększa pewność co do potencjału portfela badawczego poprzez zapewnienie solidnych, reprodukowalnych modeli skóry do wczesnego etapu odkryć i oceny przedklinicznej.
Ten system organoidowy integruje etapy od wczesnego odkrywania po badania przedkliniczne, umożliwiając testowanie hipotez, wyjaśnianie szlaków sygnałowych oraz analitykę predykcyjną w biologii skóry.