Name: System mikrofluidyczny do modelowania dysfunkcji endotelialnych w warunkach połączonego fizjologicznego pulsującego stresu ścinającego i oscylacyjnej hiperglikemii (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-05-12T13:30:00.000+00:00
Duration: 14 min 10 s
Description: Odkryj mikrofluidyczną platformę do modelowania dysfunkcji endotelialnych przy oscylacyjnej hiperglikemii i pulsującym stresie ścinającym. To narzędzie umożliwia badania mechanizmów i przesiewowe testy leków w chorobach naczyniowych cukrzycy.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

To dzieło zostało wsparte przez Narodowe Fundusze Nauki Przyrodniczej Chin (numery grantów 12372304, 12172081) oraz Fundusze Badań Podstawowych dla Uniwersytetów Centralnych (DUT25YG272).

Oświadczenie etyczne:
UWAGA: Wszystkie reagenty, urządzenia i oprogramowanie użyte w tym protokole są wymienione w Tabeli Materiałów.
1. Produkcja mikroczipów mikrofluidycznych
<ol>
	<li>Użyj oprogramowania CAD do zaprojektowania struktury mikroczipu mikrofluidycznego (S x D x W = 2 mm x 30 mm x 0.1 mm, Rysunek 1A) i zamów wykonanie formy masterowej SU-8 w firmie komercyjnej.</li>
	<li>Wymieszaj utwardzacz PDMS i prepolimer w stosunku 10:1 w masie w czystym pojemniku i energicznie mieszaj ręcznie przez 5 min.</li>
	<li>Umieść pojemnik w komorze próżniowej pod ciśnieniem -0,08 MPa na minimum 15 minut, aby usunąć pęcherzyki powietrza uwięzione podczas procesu mieszania. 
	UWAGA: Aby przyspieszyć usuwanie pęcherzyków i zapobiec przepływowi, tymczasowo wentyluj komorę do ciśnienia atmosferycznego, aby pęcherzyki pękły, a następnie natychmiast przywróć próżnię. Powtórz cykl wentylacji 2–3 razy, aż mieszanina stanie się całkowicie przezroczysta i wolna od makroskopowych pęcherzyków.</li>
	<li>Wlej PDMS na wafer umieszczony w szklanym naczyniu Petriego.</li>
	<li>Degazuj PDMS nalane na wafer w eksykatorze przez dodatkowe 15 minut, aby usunąć wszelkie pęcherzyki, które mogłyby się utworzyć podczas odlewu. 
	UWAGA: Jeśli jakiekolwiek trudne do usunięcia mikropęcherzyki pozostaną uwięzione w pobliżu lub w strukturach formy masterowej SU-8, delikatnie dmuchaj je na krawędź lub rozbij za pomocą ręcznej gumowej dmuchawki. Całkowite usunięcie pęcherzyków jest kluczowe, aby zapobiec defektom strukturalnym w mikrokanałach.</li>
	<li>Umieść naczynie Petriego zawierające formę i polimer w gorącym piekarniku ustawionym na 80 °C na 2 godziny. 
	OSTROŻNIE: Używaj rękawic odpornych na wysoką temperaturę podczas manipulacji gorącymi materiałami</li>
	<li>Odepnij stwardniały polimerowy blat od formy masterowej za pomocą skalpela.</li>
	<li>Użyj narzędzia do wybijania otworu (np. 1,2 mm średnicy), aby stworzyć wejściowe i wyjściowe porty na wyznaczonych końcach kanału na blacie polimerowym.</li>
	<li>Wyczyść szklany pokryw szklany i wzorowany bok blatu polimerowego za pomocą taśmy klejącej. 
	PAUZA: Wyprodukowane i przebity polimer może być przechowywany w czystym pojemniku (np. uszczelnionej misce Petriego) w temperaturze pokojowej przez kilka tygodni przed obróbką plazmową i wiązaniem.</li>
	<li>Poddaj polimer i szklany pokryw działaniu oczyszczacza plazmowego przy mocy 65W pod zwykłym powietrzem na 60 s.</li>
	<li>Natychmiast wyrównaj twarz kanału polimeru z traktowaną stroną pokrywy szklanej.</li>
	<li>Delikatnie dociśnij, aby stworzyć trwały, zamknięty mikrofluidyczny kanał.</li>
</ol>
2. Przygotowanie i zasiedlenie komórek śródbłonkowych
<ol>
	<li>Umieść złączony mikroczip mikrofluidyczny w borosilikatowym słoju wypełnionym dejonizowaną wodą i sterylizuj w autoklawie w temperaturze 121 °C i 15 psi przez 20 min. 
	UWAGA: Zanurzyć mikroczip w wodzie podczas autoklawienia, aby zrównoważyć ciśnienie i zapobiec odkształceniu mikrokanałów PDMS. Pomaga to również usunąć uwięzione pęcherzyki powietrza i przygotować kanały na wprowadzanie płynu. 
	PAUZA: Sterylizowany mikroczip można bezpiecznie przechowywać w uszczelnionym słoju szklanym w temperaturze pokojowej do kilku tygodni, aż będzie potrzebny do zasiedlenia komórek.</li>
	<li>Umieść sterylizowane mikroczipy w 60 mm naczyniu hodowlanym wypełnionym 1:1 mieszaniną buforu fosforanowego (PBS) i DMEM z niskim poziomem glukozy.</li>
	<li>Wprowadź 100 μg / mL fibronektyny do kanału za pomocą strzykawki 1 mL i inkubację w temperaturze 37 °C przez 4 godziny. 
	UWAGA: Upewnij się, że mikroczip mikrofluidyczny jest umieszczony poniżej poziomu płynu. Podłącz wężyk adaptera do igły strzykawki, napełnij wężyk płynem i wsuń go poniżej poziomu płynu, podłącz wejście, a następnie wstrzyknij, aby upewnić się, że nie wejdą bąbelki.</li>
	<li>Dodaj 24,5 mM D-mannitol do DMEM z niskim poziomem glukozy (5,5 mM glukozy) w celu zwiększenia ciśnienia osmotycznego. Dodaj 5 mM D-glukozy do DMEM z wysokim poziomem glukozy (25 mM glukozy) do ostatecznego poziomu 30 mM glukozy. Stwórz normalny (NG) i wysoko-glukozowy (HG) środek hodowli z dodatkiem 20% surowicy wołowej (FBS) i 1% penicyliny/streptomycyny (P/S), odpowiednio.</li>
	<li>Podgrzej 1x PBS, trypsynę, środki hodowli NG i HG w kąpieli wodnej do 37 °C. Zbierz komórki śródbłonka żyły pępowinowej człowieka (HUVEC) z naczynia hodowlanyego w 90% konfluencji. Odłącz komórki za pomocą 0,25% roztworu trypsyny-EDTA i inkubację w 37 °C przez 30 s. Zlicz zebrane komórki i wyrówna koncentrację do 1 x 106

<ol><li>Zhang, H., Dellsperger, K. C., Zhang, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+link+between+metabolic+abnormalities+and+endothelial+dysfunction+in+type+2+diabetes%3A+An+update%5BTitle%5D)+AND+%22Basic+Research+in+Cardiology%22%5BJournal%5D)">The link between metabolic abnormalities and endothelial dysfunction in type 2 diabetes: An update.</a> Basic Research in Cardiology. 107 (1), 237(2011).</li>
<li>Yang, D. R., Wang, M. Y., Zhang, C. L., Wang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+dysfunction+in+vascular+complications+of+diabetes%3A+A+comprehensive+review+of+mechanisms+and+implications%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Endothelial dysfunction in vascular complications of diabetes: A comprehensive review of mechanisms and implications.</a> Front Endocrinol. 15, 1359255(2024).</li>
<li>Piconi, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Constant+and+intermittent+high+glucose+enhances+endothelial+cell+apoptosis+through+mitochondrial+superoxide+overproduction%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes+Metab+Res+Rev%22%5BJournal%5D)">Constant and intermittent high glucose enhances endothelial cell apoptosis through mitochondrial superoxide overproduction.</a> Diabetes Metab Res Rev. 22 (3), 198-203 (2006).</li>
<li>Liu, T. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oscillating+high+glucose+enhances+oxidative+stress+and+apoptosis+in+human+coronary+artery+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Endocrinol+Invest%22%5BJournal%5D)">Oscillating high glucose enhances oxidative stress and apoptosis in human coronary artery endothelial cells.</a> J Endocrinol Invest. 37 (7), 645-651 (2014).</li>
<li>Alfieri, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+glycemic+variability+in+cardiovascular+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Mol+Sci%22%5BJournal%5D)">The role of glycemic variability in cardiovascular disorders.</a> Int J Mol Sci. 22 (16), 8393(2021).</li>
<li>Adams, J. A., Uryash, A., Lopez, J. R., Sackner, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+endothelium+as+a+therapeutic+target+in+diabetes%3A+A+narrative+review+and+perspective%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Physiol%22%5BJournal%5D)">The endothelium as a therapeutic target in diabetes: A narrative review and perspective.</a> Front Physiol. 12, 638491(2021).</li>
<li>Cheng, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+shear+stress+on+vascular+endothelial+functions+in+atherosclerosis+and+potential+therapeutic+approaches%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Pharmacother%22%5BJournal%5D)">Effects of shear stress on vascular endothelial functions in atherosclerosis and potential therapeutic approaches.</a> Biomed Pharmacother. 158, 114198(2023).</li>
<li>Jackson, M. L., Bond, A. R., George, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanobiology+of+the+endothelium+in+vascular+health+and+disease%3A+In+vitro+shear+stress+models%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc+Drugs+Ther%22%5BJournal%5D)">Mechanobiology of the endothelium in vascular health and disease: In vitro shear stress models.</a> Cardiovasc Drugs Ther. 37 (5), 997-1010 (2022).</li>
<li>Liu, X. F., Yu, J. Q., Dalan, R., Liu, A. Q., Luo, K. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biological+factors+in+plasma+from+diabetes+mellitus+patients+enhance+hyperglycaemia+and+pulsatile+shear+stress-induced+endothelial+cell+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22Integr+Biol%22%5BJournal%5D)">Biological factors in plasma from diabetes mellitus patients enhance hyperglycaemia and pulsatile shear stress-induced endothelial cell apoptosis.</a> Integr Biol. 6 (5), 511-522 (2014).</li>
<li>Chin, L. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+reactive+oxygen+species+in+endothelial+cells+under+different+pulsatile+shear+stresses+and+glucose+concentrations%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Production of reactive oxygen species in endothelial cells under different pulsatile shear stresses and glucose concentrations.</a> Lab Chip. 11 (11), 1856-1863 (2011).</li>
<li>Yu, J. Q., Liu, X. F., Chin, L. K., Liu, A. Q., Luo, K. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Study+of+endothelial+cell+apoptosis+using+fluorescence+resonance+energy+transfer+%28FRET%29+biosensor+cell+line+with+hemodynamic+microfluidic+chip+system%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Study of endothelial cell apoptosis using fluorescence resonance energy transfer (FRET) biosensor cell line with hemodynamic microfluidic chip system.</a> Lab Chip. 13 (14), 2693-2700 (2013).</li>
<li>La Sala, L., Mrakic-Sposta, S., Micheloni, S., Prattichizzo, F., Ceriello, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glucose-sensing+microRNA-21+disrupts+ROS+homeostasis+and+impairs+antioxidant+responses+in+cellular+glucose+variability%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc+Diabetol%22%5BJournal%5D)">Glucose-sensing microRNA-21 disrupts ROS homeostasis and impairs antioxidant responses in cellular glucose variability.</a> Cardiovasc Diabetol. 17 (1), 105(2018).</li>
<li>Alpural, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+review+on+the+role+of+microfluidic+platforms+in+advancing+scalable+and+precise+microbial+bioprocessing%5BTitle%5D)+AND+%22Eng+Life+Sci%22%5BJournal%5D)">Systematic review on the role of microfluidic platforms in advancing scalable and precise microbial bioprocessing.</a> Eng Life Sci. 25 (9), e70034(2025).</li>
<li>Chen, Z. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advanced+microfluidic+devices+for+fabricating+multi-structural+hydrogel+microsphere%5BTitle%5D)+AND+%22Exploration%22%5BJournal%5D)">Advanced microfluidic devices for fabricating multi-structural hydrogel microsphere.</a> Exploration. 1 (3), 20210036(2021).</li>
<li>Hao, S. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Periosteum+Organoid%3A+Biomimetic+Design+Inspired+From+the+Bone+Healing+Process%5BTitle%5D)+AND+%22Exploration%22%5BJournal%5D)">Periosteum Organoid: Biomimetic Design Inspired From the Bone Healing Process.</a> Exploration. 5 (6), 20240298(2025).</li>
<li>Chen, Z. Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+microfluidic+device+with+spatiotemporal+wall+shear+stress+and+ATP+signals+to+investigate+the+intracellular+calcium+dynamics+in+vascular+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biomech+Model+Mechanobiol%22%5BJournal%5D)">A microfluidic device with spatiotemporal wall shear stress and ATP signals to investigate the intracellular calcium dynamics in vascular endothelial cells.</a> Biomech Model Mechanobiol. 18 (1), 189-202 (2019).</li>
<li>Chen, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Importance+of+mitochondrial+calcium+uniporter+in+high+glucose-induced+endothelial+cell+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Diab+Vasc+Dis+Res%22%5BJournal%5D)">Importance of mitochondrial calcium uniporter in high glucose-induced endothelial cell dysfunction.</a> Diab Vasc Dis Res. 14 (6), 494-501 (2017).</li>
<li>Hu, S. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+integrated+shear-glucose+system+to+study+how+shear+stress+repairs+oscillating+glucose-induced+endothelial+cell+damage+via+ROS%2FCa2%2B%2FeNOS+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Microchemical+Journal%22%5BJournal%5D)">An integrated shear-glucose system to study how shear stress repairs oscillating glucose-induced endothelial cell damage via ROS/Ca2+/eNOS signaling.</a> Microchemical Journal. 215, 114415(2025).</li>
<li>Maeda, M., Hayashi, T., Mizuno, N., Hattori, Y., Kuzuya, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intermittent+high+glucose+implements+stress-induced+senescence+in+human+vascular+endothelial+cells%3A+Role+of+superoxide+production+by+NADPH+oxidase%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Intermittent high glucose implements stress-induced senescence in human vascular endothelial cells: Role of superoxide production by NADPH oxidase.</a> PLoS One. 10 (4), e0123169(2015).</li>
<li>Na, J. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabricating+a+multi-component+microfluidic+system+for+exercise-induced+endothelial+cell+mechanobiology+guided+by+hemodynamic+similarity%5BTitle%5D)+AND+%22Talanta%22%5BJournal%5D)">Fabricating a multi-component microfluidic system for exercise-induced endothelial cell mechanobiology guided by hemodynamic similarity.</a> Talanta. 253, 123933(2023).</li>
<li>Na, J. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+microfluidic+system+for+precisely+reproducing+physiological+blood+pressure+and+wall+shear+stress+to+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Analyst%22%5BJournal%5D)">A microfluidic system for precisely reproducing physiological blood pressure and wall shear stress to endothelial cells.</a> Analyst. 146 (19), 5913-5922 (2021).</li>
<li>Pereiro, I., Fomitcheva Khartchenko, A., Petrini, L., Kaigala, G. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nip+the+bubble+in+the+bud%3A+A+guide+to+avoid+gas+nucleation+in+microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Nip the bubble in the bud: A guide to avoid gas nucleation in microfluidics.</a> Lab Chip. 19 (14), 2296-2314 (2019).</li>
<li>Aragona, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mechanical+checkpoint+controls+multicellular+growth+through+YAP%2FTAZ+regulation+by+actin-processing+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">A mechanical checkpoint controls multicellular growth through YAP/TAZ regulation by actin-processing factors.</a> Cell. 154 (5), 1047-1059 (2013).</li>
<li>Sahin, M. A., Shehzad, M., Destgeer, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stopping+microfluidic+flow%5BTitle%5D)+AND+%22Small%22%5BJournal%5D)">Stopping microfluidic flow.</a> Small. 20 (20), e2307956(2024).</li>
<li>Sullender, C. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+pressure-driven+flow+systems+to+evaluate+laser+speckle+contrast+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Opt%22%5BJournal%5D)">Using pressure-driven flow systems to evaluate laser speckle contrast imaging.</a> J Biomed Opt. 28 (3), 036003(2023).</li>
<li>Toma, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oscillating+glucose+induces+the+increase+in+inflammatory+stress+through+Ninjurin-1+up-regulation+and+stimulation+of+transport+proteins+in+human+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biomolecules%22%5BJournal%5D)">Oscillating glucose induces the increase in inflammatory stress through Ninjurin-1 up-regulation and stimulation of transport proteins in human endothelial cells.</a> Biomolecules. 13 (4), 626(2023).</li>
<li>Wu, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+blood+glucose+fluctuation+enhances+rat+aorta+endothelial+cell+apoptosis%2C+oxidative+stress+and+pro-inflammatory+cytokine+expression+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc+Diabetol%22%5BJournal%5D)">Acute blood glucose fluctuation enhances rat aorta endothelial cell apoptosis, oxidative stress and pro-inflammatory cytokine expression in vivo.</a> Cardiovasc Diabetol. 15 (1), 109(2016).</li>
<li>Gao, J., Pan, H., Guo, X., Huang, Y., Luo, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+Kruppel-like+factor+2%2F4%3A+Regulation+and+function+in+cardiovascular+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Signal%22%5BJournal%5D)">Endothelial Kruppel-like factor 2/4: Regulation and function in cardiovascular diseases.</a> Cell Signal. 130, 111699(2025).</li>
<li>He, L., Zhang, C. L., Chen, Q., Wang, L., Huang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+shear+stress+signal+transduction+and+atherogenesis%3A+From+mechanisms+to+therapeutics%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol+Ther%22%5BJournal%5D)">Endothelial shear stress signal transduction and atherogenesis: From mechanisms to therapeutics.</a> Pharmacol Ther. 235, 108152(2022).</li>
<li>Han, Y., Huang, K., Yao, Q. P., Jiang, Z. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanobiology+in+vascular+remodeling%5BTitle%5D)+AND+%22National+Science+Review%22%5BJournal%5D)">Mechanobiology in vascular remodeling.</a> National Science Review. 5 (6), 933-946 (2018).</li>
<li>Cheng, C. K., Wang, N., Wang, L., Huang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biophysical+and+biochemical+roles+of+shear+stress+on+endothelium%3A+A+revisit+and+new+insights%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Biophysical and biochemical roles of shear stress on endothelium: A revisit and new insights.</a> Circ Res. 136 (7), 752-772 (2025).</li>
<li>Tovar-Lopez, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+microfluidic+system+for+studying+the+effects+of+disturbed+flow+on+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Bioeng+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">A microfluidic system for studying the effects of disturbed flow on endothelial cells.</a> Front Bioeng Biotechnol. 7, 81(2019).</li>
<li>Estrada, R., Giridharan, G. A., Nguyen, M. D., Prabhu, S. D., Sethu, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+endothelial+cell+culture+model+to+replicate+disturbed+flow+conditions+seen+in+atherosclerosis+susceptible+regions%5BTitle%5D)+AND+%22Biomicrofluidics%22%5BJournal%5D)">Microfluidic endothelial cell culture model to replicate disturbed flow conditions seen in atherosclerosis susceptible regions.</a> Biomicrofluidics. 5 (3), 032006(2011).</li>
<li>Van Engeland, N. C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+biomimetic+microfluidic+model+to+study+signalling+between+endothelial+and+vascular+smooth+muscle+cells+under+hemodynamic+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">A biomimetic microfluidic model to study signalling between endothelial and vascular smooth muscle cells under hemodynamic conditions.</a> Lab Chip. 18 (11), 1607-1620 (2018).</li>
<li>Ma, Q., Ma, H., Xu, F., Wang, X., Sun, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidics+in+cardiovascular+disease+research%3A+State+of+the+art+and+future+outlook%5BTitle%5D)+AND+%22Microsyst+Nanoeng%22%5BJournal%5D)">Microfluidics in cardiovascular disease research: State of the art and future outlook.</a> Microsyst Nanoeng. 7, 19(2021).</li>
</ol>

Autorzy deklarują brak konfliktu interesów.

Opisany tutaj system mikrofluidyczny zapewnia niezawodną i fizjologicznie istotną platformę do badania zintegrowanych efektów działania OG i PSS na funkcję komórek śródbłonka. Główną zaletą tej metody jest jej zdolność do precyzyjnego kontrolowania i rozłączania bodźców mechanicznych i biochemicznych w zdefiniowanym mikrośrodowisku. W przeciwieństwie do konwencjonalnych kultur statycznych, które nie posiadają sił hemodynamicznych, lub modeli zwierzęcych, które często zasłaniają sygnały na poziomie komórkowym<sup class="x...

Niedostateczność śródbłonka jest krytycznym wczesnym wydarzeniem w rozwoju powikłań naczyniowych cukrzycy, napędzanym zarówno zaburzeniami metabolicznymi, jak i nieprawidłowymi siłami hemodynamicznymi1,2. Poziom glukozy oscylacyjnej, a nie tylko utrzymywana hiperglikemia, są coraz częściej rozpoznawane jako silne induktory stresu oksydacyjnego i sygnalizacji zapalnej w komórkach śródbłonka, prowadzące do uszkodzenia naczyń i upośledzonej homeostazy3,4,5. Jednocześnie, siłę ścinającą hemodynamiczną można uznać za główny czynnik decydujący o fenotypie śródbłonka, przy czym PSS w warunkach fizjologicznego wysiłku promuje produkcję tlenku azotu, obronę przeciwutleniającą i ochronę naczyń6,7,8. Dlatego zrozumienie zintegrowanych efektów oscylacji hiperglikemicznych i stymulacji hemodynamicznej jest niezbędne do wyjaśnienia mechanizmów niedostateczności śródbłonka.
Konwencjonalne modele in vitro, które często polegają na statycznych warunkach wysokiej glukozy lub uproszczonym przepływie warstwowym, nie radzą sobie z odtwarzaniem złożonej, dynamicznej interakcji między wskazaniami metabolicznymi i mechanicznymi obecnymi in vivo9,10,11. Podczas gdy modele zwierzęce uwzględniają układowe aspekty cukrzycy, brakuje im rozdzielczości na poziomie komórkowym potrzebnej do analizy sygnalizacji w kontrolowanych warunkach mikrośrodowiska12. Technologia mikrofluidyczna oferuje skuteczną alternatywę, zapewniając precyzyjną kontrolę przestrzenno-czasową biochemicznych i biomechanicznych bodźców w fizjologicznie odpowiednich geometriach13 i wpłynęła na znaczące ostatnie osiągnięcia w różnych innowacyjnych zastosowaniach biomedycznych14,15. Na przykład Chen i in.16 zaprojektowali urządzenie mikrofluidyczne z przestrzennym i czasowym stresem ścinającym ściany i sygnalizacją ATP do badania dynamiki wapnia wewnątrzkomórkowego w komórkach śródbłonka. Yu i in.11 opracowały mikrofluidyczny system czypów hemodynamicznych do wykrywania reakcji komórkowych w różnych kombinacjach fizjologicznego PSS i wysokich stężeń glukozy. Chociaż systemy te były używane do badania reakcji śródbłonka na stres ścinający lub pojedyncze czynniki zakłóceń metabolicznych, niewiele z nich z powodzeniem zintegrowało zarówno oscylacje glukozy, jak i PSS w jednym systemie. Dlatego brakuje znormalizowanego, możliwego do powtórzenia protokołu, który synchronizuje oba czynniki w kontrolowanym środowisku mikrofluidycznym.
Ta metoda wypełnia tę lukę, ustanawiając możliwe do powtórzenia mikrofluidyczne systemy zdolne do dostarczania powiązanego OG i PSS. Głównym celem tego podejścia jest modelowanie stresu oksydacyjnego, upośledzonej żywotności komórek i reakcji mechanobiologicznych leżących u podstaw niedostateczności śródbłonka w sposób fizjologicznie odpowiedni. W przeciwieństwie do statycznej kultury lub konwencjonalnych komór perfuzji, to podejście poprawia istniejące modele, umożliwiając jednoczesną i kontrolowaną modulacje zarówno bodźców metabolicznych, jak i mechanicznych, bliżej przybliżające diabetyczne mikrośrodowisko naczyniowe. Ponadto system jest zgodny z obrazowaniem żywych komórek, monitorowaniem w czasie rzeczywistym i analizą molekularną, co sprawia, że nadaje się do szerokiego zakresu zastosowań, w tym badań mechanizmu, modelowania chorób i przesiewowych badań leków na funkcjonowanie i uszkodzenia śródbłonka.

<table><tbody><tr><td>0.25% Trypsin-EDTA</td><td>NEST Biotechnology Co., Ltd.</td><td>211052</td><td>Dysocjacja komórek</td></tr><tr><td>1 mL strzykawka</td><td>Shanghai Zhengbang Medical Science Co., Ltd.</td><td>1mL</td><td>Wstrzykiwanie płynu</td></tr><tr><td>60 mm naczynie hodowlanowe</td><td>NEST Biotechnology Co., Ltd.</td><td>705001</td><td>Hodowla komórek</td></tr><tr><td>90&deg; kątowy stalowy złącze</td><td>Luoyang Mayer Trading Co.,Ltd.</td><td>1.3 mm</td><td>Urządzenie uszczelniające adapter</td></tr><tr><td>Oprogramowanie AutoCAD</td><td>Autodesk</td><td>RRID:SCR_014981</td><td>Oprogramowanie do wspomagania projektowania</td></tr><tr><td>Szkło boroszklane</td><td>Hunan Aidete Scientific Instruments Co., Ltd.</td><td>Double-pass 100mL</td><td>Zbiornik</td></tr><tr><td>Zestaw Calcein-AM/PI</td><td>Beyotime</td><td>byt-c2015</td><td>Barwienie</td></tr><tr><td>Inkubator komórkowy</td><td>ESCO</td><td>Esco CelMate</td><td>Hodowla komórek</td></tr><tr><td>CellROX Deep Red</td><td>Invitrogen</td><td>C10422</td><td>Barwienie</td></tr><tr><td>D-glukoza</td><td>Sigma Aldrich</td><td>47249</td><td>Glukoza</td></tr><tr><td>D-mannitol</td><td>Macklin</td><td>M813423</td><td>Równoważenie ciśnienia osmotycznego</td></tr><tr><td>DynamicStudio</td><td>Dantec Dynamics</td><td>V8.6</td><td>Oprogramowanie do analizy PIV</td></tr><tr><td>Surowiца cielęca płodowa (FBS)</td><td>Gibco</td><td>14190-094</td><td>Środek</td></tr><tr><td>Fibronektyna</td><td>Sigma Aldrich</td><td>F-2006</td><td>Adhezja komórek</td></tr><tr><td>Fluorescencyjne mikrocząsteczki</td><td>Thermo Scientific</td><td>G0100</td><td>Mikro-PIV</td></tr><tr><td>Pokrzywka szklana</td><td>Citotest Scientific Co.,Ltd.</td><td>#1</td><td>Układ mikrofluidyczny</td></tr><tr><td>Środek DMEM z wysoką zawartością glukozy</td><td>Solarbio</td><td>12100</td><td>Środek</td></tr><tr><td>Wysokoszybkowa kamera</td><td>Dantec Dynamics</td><td>FlowSense EO</td><td>Mikro-PIV</td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>NIH</td><td>RRID:SCR_003070</td><td>Oprogramowanie do przetwarzania obrazów</td></tr><tr><td>Mikroskop fluorescencyjny odwrócony</td><td>Olympus</td><td>IX73</td><td>Żywotność komórek</td></tr><tr><td>Mikroskop fluorescencyjny odwrócony</td><td>Olympus</td><td>IX83</td><td>Obserwacja i akwizycja</td></tr><tr><td>Środek DMEM z niską zawartością glukozy</td><td>Solarbio</td><td>31600</td><td>Środek</td></tr><tr><td>Origin</td><td>OriginLab</td><td>RRID:SCR_014212</td><td>Oprogramowanie do analizy danych i tworzenia wykresów</td></tr><tr><td>PDMS</td><td>Dow lnc.</td><td>184</td><td>Układ mikrofluidyczny</td></tr><tr><td>Penicylina/streptomycyna (P/S)</td><td>NEST Biotechnology Co., Ltd.</td><td>211092</td><td>Środek</td></tr><tr><td>Bufor fosforanowy (PBS)</td><td>NEST Biotechnology Co., Ltd.</td><td>211031</td><td>Hodowla komórek</td></tr><tr><td>Oczyszczacz plazmowy</td><td>Jiarun Wanfeng Technology Co., Ltd.</td><td>PC-6D</td><td>Układ mikrofluidyczny</td></tr><tr><td>Programowalny system sterowania ciśnieniem</td><td>Elvesys</td><td>OB1 MK4</td><td>Kontrola przepływu</td></tr><tr><td>Silikonowa rura</td><td>Nanjing Runze Fluid Control Equipment Co., Ltd.</td><td>96410</td><td>1mm*3mm</td></tr><tr><td>Forma SU-8</td><td>Boao Biology Group Co. Ltd.</td><td>N/A</td><td>Układ mikrofluidyczny</td></tr><tr><td>Sterownik zaworu</td><td>Elvesys</td><td>MUX Wire V3</td><td>Kontrola przepływu</td></tr></tbody></table>

system mikrofluidyczny do modelowania dysfunkcji endotelialnych w warunkach połączonego fizjologicznego pulsującego stresu ścinającego i oscylacyjnej hiperglikemii

A Microfluidic System for Modeling Endothelial Dysfunction under Combined Physiological Pulsatile Shear Stress and Oscillatory Hyperglycemia

Niedostateczność śródbłonka w powikłaniach naczyniowych cukrzycy obejmuje złożone interakcje między zaburzeniami metabolicznymi, szczególnie oscylującym poziomem glukozy (OG) i pulsującym stresem ścinającym (PSS). Chociaż czynniki te były badane osobno, konwencjonalne modele nadal ograniczają się do statycznego wysokiego poziomu glukozy lub uproszczonego laminarnego przepływu, nie mając zdolności do naśladowania zintegrowanego czasoprzestrzennego sprzężenia występującego w naczyniach krwionośnych osób z cukrzycą. Dzięki wykorzystaniu programowalnej platformy mikrofluidalnej, ten protokół zapewnia cenne narzędzie do badania zintegrowanych efektów zsynchronizowanej oscylującej hiperglikemii i fizjologicznego PSS na komórkach śródbłonka. Ten protokół ma na celu modelowanie niedostateczności śródbłonka w warunkach fizjologicznie istotnego sprzężenia metabolicznego i mechanicznego. Zastosowanie chipu z polidimetylosilokanu (PDMS) w połączeniu z systemem sterowania napędzanym ciśnieniem pozwala na precyzyjną, niezależną modulacje wzorców przepływu i profili stężenia glukozy. Wiarygodność hemodynamiczna systemu jest zweryfikowana przez Mikro-PIV (Mikro-Przepływomierz Obrazowy Cząstek), podczas gdy reakcja komórkowa jest ilościowo charakteryzowana poprzez monitorowanie poziomu reaktywnych form tlenu (ROS) wewnątrzkomórkowych i żywotności komórek. Wyniki reprezentatywne pokazują, że fizjologiczny PSS skutecznie łagodzi uszkodzenie oksydacyjne indukowane przez OG. Efekt ten jest wykazany poprzez zmniejszenie poziomu ROS wewnątrzkomórkowych i poprawę żywotności komórek w warunkach połączonej stymulacji. W zależności od pytania badawczego, parametry takie jak wzorce stresu ścinającego, częstotliwości oscylacji glukozy i geometrie kanałów mogą być dostosowane. Ta metoda służy jako wszechstronne narzędzie do badań mechanistycznych ścieżek mechanobiologicznych i przesiewowych badań leków w terapii chorób naczyniowych cukrzycowych.

Weryfikacja za pomocą Micro-PIV pola przepływu w mikrokanałowym kanale 
Rysunek 1D przedstawia przegląd platformy mikrofluidalnej wykorzystanej do badania reakcji endotelialnych na połączoną stymulację metaboliczną i mechaniczną. System integruje prostokątny mikrofluidalny chip PDMS z modułem sterowania przepływem napędzanym ciśnieniem, umożliwiając zastosowanie warunków OG wraz z fizjologicznym PSS. Zastosowano programowalną strategię przełączania zaworów, aby wygenero...

Przedstawiamy tutaj protokół do wytworzenia i obsługi układu mikrofluidalnego, który naraża komórki śródbłonka na zsynchronizowany oscylatorny hiperglikemię i pulsujące naprężenia ścinające. Takie podejście zapewnia fizjologicznie istotny in vitro model do badania cukrzycowej dysfunkcji śródbłonka. Ten protokół umożliwia ilościowe pomiary stresu oksydacyjnego i reakcji komórek śródbłonka.

System mikrofluidyczny do modelowania dysfunkcji endotelialnych w warunkach połączonego fizjologicznego pulsującego stresu ścinającego i oscylacyjnej hiperglikemii

Endothelial dysfunction in diabetic vascular complications involves complex interactions between metabolic disturbances, specifically oscillatory glucose ...

Niniejsze badanie bada, jak zsynchronizowane oscylatorowe hiperglikemia i pulsujące naprężenie ścinające razem powodują dysfunkcję śródbłonka w cukrzycowej chorobie naczyń. Istniejące modele wykorzystują wysoki początkowy poziom glukozy lub stały laminarny przepływ. Badamy, jak pulsujące naprężenie ścinające przeciwdziała oscylatorowemu uszkodzeniu glukozy.Na początek użyj oprogramowania do wspomaganego komputerowo projektowania, aby zaprojektować strukturę mikroczipu. Wykonaj master formy SU-8 poprzez komercyjną firmę. W czystym kubku mieszania wymieszaj środek utwardzający i prepolimer polidimetyloksylan w stosunku 10:1 wagowym i energicznie mieszaj ręcznie przez pięć minut.Następnie umieść pojemnik w komorze próżniowej przy ciśnieniu 0,08 megapaskala przez co najmniej 15 minut, aby usunąć pęcherzyki powietrza uwięzione podczas mieszania. Wlej polidimetyloksylan na wafer umieszczony w szklanej miseczce Petriego. Odgazuj polidimetyloksylan wlewaną na wafer w egzaleratorze przez kolejne 15 minut, aby usunąć wszelkie bąbelki powstałe podczas odlewania.Umieść miseczkę Petriego zawierającą formę i polimer w piekarniku ustawionym na 80 stopni Celsjusza na dwie godziny. Za pomocą skalpela ostrożnie zdejmij stwardniały polimer z master formy. Za pomocą narzędzia do wybijania rdzeni stwórz porty wlotowe i wylotowe na wyznaczonych końcach kanałów na polimerze.Wyczyść szklany pokrywający szlifowane szkło i wzorowaną powierzchnię polimeru za pomocą taśmy klejącej. Następnie traktuj zarówno polimer, jak i szklany pokrywający szlifowane szkło czyszczarką plazmową z mocą 65 watów w zwykłym powietrzu przez 60 sekund. Natychmiast wyrównaj powierzchnię kanału polimeru z traktowaną stroną szklanego pokrywającego szlifowane szkło.Następnie delikatnie dociśnij, aby stworzyć trwale zamknięty mikrokanałowy chip. Umieść związany mikrokanałowy chip w borowanej szklanej butelce wypełnionej zjonizowaną wodą. Wysterylizuj przez autoklawowanie w temperaturze 121 stopni Celsjusza i 15 funtów na cal kwadratowy przez 20 minut.Umieść wysterylizowany chip w 60-milimetrowej miseczce kulturalnej wypełnionej równomolowym mieszaniem PBS i DMEM z niską zawartością glukozy. Następnie za pomocą strzykawki o pojemności jednego mililitra wprowadź 100 mikrogramów na mililitr fibronektyny do kanału i inkubatoruj w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez cztery godziny. Następnie dodaj 24,5 milimolarnego demanitol do DMEM z niską zawartością glukozy, aby podnieść ciśnienie osmotyczne.Dodaj pięć milimolarnego D-glukozy do DMEM z wysoką zawartością glukozy, aby uzyskać końcową koncentrację 30 milimolarnego glukozy. Przygotuj normalne środowisko kulturowe z glukozą i środowisko kulturowe z wysoką zawartością glukozy uzupełnione o 20%FBS i 1% penicylinę i streptomycynę. Następnie rozgrzej PBS, trypsynę, normalne środowisko kulturowe z glukozą i środowisko kulturowe z wysoką zawartością glukozy w kąpieli wodnej w temperaturze 37 stopni Celsjusza.Zbierz komórki śródbłonka żyły pępowinowej człowieka z miseczki kulturalnej w 90% zagęszczeniu. Odłącz komórki za pomocą 0,25% roztworu trypsyny-EDTA. Po inkubacji komórek w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 30 sekund, zlicz zebrane komórki i ponownie zawieś je osobno w normalnym środowisku z glukozą i wysokim środowisku z glukozą w stężeniu 1 razy 10 do potęgi 6 komórek na mililitr.Za pomocą strzykawki o pojemności jednego mililitra wstrzyknij 100 mikrolitem zawiesiny komórek do portu wlotowego mikrokanałowego chipu z normalnym środowiskiem z glukozą dla grupy kontrolnej i wysokim środowiskiem z glukozą dla grupy eksperymentalnej. Umieść mikrokanałowe chipsy w inkubatorze umiarkowanym w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 5% dwutlenkiem węgla przez 48 godzin. Oblicz przepływ wymagany do osiągnięcia docelowego pulsującego naprężenia ścinającego za pomocą przedstawionego równania.Podłącz źródło ciśnienia do kontrolera ciśnienia. Następnie połącz kontroler ciśnienia z kontrolerem zaworów podłączonym do komputera w celu zautomatyzowanego sterowania formami fal ciśnienia. Napełnij dwa zbiorniki po 100 mililitrów, jeden normalnym środowiskiem kulturowym z glukozą, a drugi wysokim środowiskiem kulturowym z glukozą.Podłącz zbiorniki do odpowiednich kanałów kontrolera ciśnienia. Następnie połącz zbiorniki i dwuosiowy trójdrożny magnetyczny zawór za pomocą silikonowych węży. Ustaw docelowe fizjologiczne pulsujące naprężenie ścinające odpowiadające przepływowi około 200 mikrolitrów na minutę.Zaprogramuj programowalną pompę powietrza, aby wygenerować funkcję fali sinusoidalnej, aby utrzymać pulsujące naprężenie ścinające. Następnie zaprogramuj kontroler zaworów, aby przełączać kanały co pięć minut, aby wygenerować kwadratową falę oscylacja glukozy podczas dynamicznej stymulacji. Podłącz dwuosiowy trójdrożny magnetyczny zawór i mikrokanałowy chip za pomocą silikonowych węży.Następnie uruchom programowalny system pomp, aby napełnić węże. Następnie, używając 9

a-microfluidic-system-for-modeling-endothelial-dysfunction-under

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioinżynieria

Opisano metodę hodowli monowarstwy komórek śródbłonka na całej wewnętrznej powierzchni 3D urządzenia mikrofluidycznego z kanałami o rozmiarze mikro-naczyniowym (&lt;30 μm). Ten model mikro-naczyniowy in vitro umożliwia badanie interakcji biofizycznych między komórkami krwi, komórkami śródbłonka a czynnikami rozpuszczalnymi w chorobach hematologicznych.

Endotelializowane układy mikrofluidyczne do badania oddziaływań naczyniowych w chorobach hematologicznych

Mikrofluidyczne komory przepływowe, wytrawione metodą fotolitografii i wykonane z PDMS, są stosowane do badania wyników funkcjonalnych związanych z dysfunkcją EC i stanem zapalnym. W reprezentatywnym eksperymencie wykazano zdolność różnicowego naprężenia ścinającego do modulowania adhezji komórek monocytarnych do monowarstw EC aktywowanych cytokinami.

Fenotypowanie zapalne śródbłonka na chipie

Ten protokół replikuje fizjologiczny lub patologiczny przepływ krwi in vitro, aby pomóc w określeniu odpowiedzi komórek w patologiach chorobowych. Wprowadzając komorę tłumiącą ciśnienie za pompą krwi, przepływ krwi przez naczynia krwionośne może zostać ponownie podsumowany i nałożony na monowarstwę śródbłonka naczyniowego lub kokulturę mimetyczną.

In vitro Model fizjologicznego i patologicznego przepływu krwi z zastosowaniem do badań przebudowy komórek naczyniowych

Pierwotne ludzkie komórki śródbłonka żyły pępowinowej (HUVEC) zostały wyhodowane do zbiegu w mikroprzepływowym urządzeniu sieciowym. Zilustrowano połączenie komórkowe śródbłonka i rozkład F-aktyny, a zmiany w wewnątrzkomórkowym stężeniu wapnia i produkcji tlenku azotu w odpowiedzi na adenozynotrójfosforan (ATP) określono ilościowo w czasie rzeczywistym na poszczególnych poziomach komórek.

Opracowanie i charakterystyka sieci mikronaczyń in vitro oraz pomiary ilościowe produkcji śródbłonka [Ca2+]i i tlenku azotu

Ten manuskrypt przedstawia metodę formowania wtryskowego do inżynierii mikronaczyń, które podsumowują fizjologiczne właściwości śródbłonka. Proces oparty na mikroprzepływach tworzy opatentowane sieci naczyniowe 3D z dostosowanymi warunkami, takimi jak przepływ, skład komórkowy, geometria i gradienty biochemiczne. Opisano proces wytwarzania i przykłady potencjalnych zastosowań.

Mikrowzorowanie i montaż trójwymiarowych mikonaczyń

Różne poziomy i wzorce ścinania płynu są znane z modulowania ekspresji genów śródbłonka, fenotypu i podatności na choroby. Omawiamy montaż i zastosowanie "pierścieni ścinających": modelu, który wytwarza jednokierunkowe, okresowe wzorce naprężeń ścinających. Pierścienie ścinane są proste w montażu, ekonomiczne i mogą wytwarzać wysoką wydajność ogniw.

Montaż i zastosowanie "pierścieni ścinających": nowy model śródbłonka dla orbitalnego, jednokierunkowego i okresowego przepływu płynów oraz naprężeń ścinających

Prezentujemy model choroby naczyniowej in vitro do zbadania interakcji krwi pełnej ze śródbłonkiem pochodzącym od pacjenta. System ten pozwala na badanie właściwości trombogennych pierwotnych komórek śródbłonka w różnych okolicznościach. Metoda ta jest szczególnie przydatna do oceny trombogenności in situ i terapii przeciwzakrzepowej w różnych fazach krzepnięcia.

Model choroby mikroprzepływowej in vitro do badania interakcji krew pełna - śródbłonek i dynamiki zakrzepów krwi w czasie rzeczywistym

Tutaj dostarczamy chip mikroprzepływowy i automatycznie sterowany, wysoce wydajny system mikroprzepływowy krążenia, który podsumowuje początkowe mikrośrodowisko neowaskularyzacji, umożliwiając stymulację komórek śródbłonka (EC) przez wysokie naprężenie ścinające światło, fizjologiczny poziom przepływu przezśródbłonkowego i rozkład różnych czynników wzrostu śródbłonka naczyniowego (VEGF) jednocześnie.

Model mikroprzepływowy naśladujący początkowe zdarzenie neowaskularyzacji

W tym protokole, do badania interakcji między komórkami leukocytów w chorobie zapalnej stosuje się biomimetyczne badanie mikropłynów, które może odtworzyć fizjologicznie istotne środowisko mikrokrążenia i odtworzyć całą kaskadę adhezji/migracji leukocytów.

System mikrofizjologiczny do badania interakcji między leukocytami a komórkami śródbłonka podczas stanu zapalnego

Ten protokół opisuje rekonfigurowalną platformę hodowli komórkowych opartą na membranie, która integruje format otwartej studni z możliwościami przepływu płynów. Platforma ta jest kompatybilna ze standardowymi protokołami i umożliwia odwracalne przejścia między trybem hodowli w studni otwartej a mikroprzepływowym, dostosowując się do potrzeb zarówno laboratoriów inżynieryjnych, jak i biologicznych.

Przekształcanie statycznych modeli tkanek barierowych w dynamiczne systemy mikrofizjologiczne

Odkryj mikrofluidyczną platformę do modelowania dysfunkcji endotelialnych przy oscylacyjnej hiperglikemii i pulsującym stresie ścinającym. To narzędzie umożliwia badania mechanizmów i przesiewowe testy leków w chorobach naczyniowych cukrzycy.

System mikrofluidyczny do modelowania dysfunkcji endotelialnych w warunkach połączonego fizjologicznego pulsującego stresu ścinającego i oscylacyjnej hiperglikemii (Wideo) | JoVE Journal

System mikrofluidyczny do modelowania dysfunkcji endotelialnych w warunkach połączonego fizjologicznego pulsującego stresu ścinającego i oscylacyjnej hiperglikemii

Przeglądaj więcej filmów