July 3rd, 2026
Oporność na antybiotyki wśród szczepów Escherichia coli adhezywno-inwazyjnych stanowi wyzwanie dla oceny inwazji bakteryjnej przy użyciu tradycyjnego testu ochrony gentamycyną. Opisano ulepszoną metodę oceny ilościowej inwazji bakteryjnej poprzez liczenie jednostek tworzących kolonie i oceny jakościowej poprzez wizualizację zakażonych komórek za pomocą konfokalnej mikroskopii immunofluorescencyjnej.
Koncentrujemy się na charakteryzowaniu mechanizmów inwazji E.coli na komórki nabłonka jelitowego oraz identyfikacji czynników bakteryjnych, które przyczyniają się do tego procesu. Izolaty odporne na gentamycynę ograniczają tradycyjne testy inwazji. Ten protokół oparty na amikacynie pozwala na dokładne określenie liczby bakterii wewnątrzkomórkowych.
Na początek, zbierz wszystkie reagenty i media potrzebne do testu inwazji. Następnie, odzyskaj zamrożony zasobnik glicerolowy szczepu Escharicia colli, czyli AIEC, z zamrażarki 80 stopni Celsjusza. Używając sterylnego patyczka drewnianego lub końcówki pipety, delikatnie zetrzyj bakterie ze szypułki i rozmazuj na płytce Luria-Bertani, czyli LB, aby uzyskać pojedyncze kolonie.
Inkubator płytki w 37 stopniach Celsjusza przez noc. Następnego dnia, używając sterylnego patyczka drewnianego lub końcówki pipety, wybierz pojedynczą kolonię z płytki. Zakaż kolonię w 3 mililitrach bulionu LB i inkubator kultury w 37 stopniach Celsjusza przy 200 obrotach na minutę przez noc.
Następnie wykonaj rozcieńczenie 1 do 10 kultury nocnej w 1 mililitru bulionu LB. Zmierzyć gęstość optyczną na 600 nanometrach rozcieńczonej kultury za pomocą spektrofotometru. Przenieś 100 mikrolitrów kultury nocnej do mikrocentryfugowej probówki 1,5 mililitra i wyśrodkuj przez 10 minut przy 6 000 G i 4 stopniach Celsjusza.
Odstaw nadstan nadstanu ostrożnie, nie zakłócając osadu komórkowego i ponownie zawieś osad w 1 mililitru serum oraz media bez antybiotyków i antymykotyków. Oblicz wymaganą objętość zawiesiny bakteryjnej, aby osiągnąć wielokrotność zakażenia lub MOI 10, używając podanego wzoru. Aby przygotować media infekcyjne, przenieś obliczoną objętość zawiesiny bakteryjnej do sterylnej mikrocentryfugowej probówki 1,5 mililitra i uzupełnij objętość do 1 mililitra serum i media bez antybiotyków i antymykotyków.
Delikatnie wymieszaj pipetą poprzez kilkukrotne podnoszenie i opuszczanie. Przygotuj płytę 96-dołkową, aby określić liczbę formujących kolonie jednostek na mililitr rozcieńczonej kultury bakterii nocnej, wykonując dziesięciokrotne rozcieńczenia szeregowe w sterylnym 1X PBS. Przenieś 200 mikrolitrów rozcieńczonej kultury nocnej do pierwszego dołka płytki.
Pipetą przenieś 20 mikrolitrów kultury do następnego rzędu zawierającego 180 mikrolitrów 1X PBS. Mieszaj pipetą poprzez dziesięciokrotne podnoszenie i opuszczanie i powtórz proces rozcieńczania, aż osiągniesz 10 do potęgi 6, używając za każdym razem świeżej końcówki pipety. Teraz rozłóż po 10 mikrolitrów kropli rozcieńczeń w trzech powtórzeniach z 10 do potęgi 2 do 10 do potęgi 6 na płytkach LB auger.
Pozwól, aby kropki wchłonęły się w augerze w pobliżu płomienia. Inkubator płytki przez noc w 27 do 30 stopniach Celsjusza, aby zapobiec przerostowi kolonii i uzyskać jasne pojedyncze kolonie. Wyjmij z inkubatora zdrowe, jednolite monowarstwy komórek nabłonkowych Caco-2 hodowanych na pokrytej kolagenową płytce kulturalnej 24-dołkowej i odstaw pełne media z każdego dołka.
Pipetą przenieś jeden mililitr serum oraz media bez antybiotyków i antymykotyków do każdego dołka. Odstaw media, aby usunąć ślady mediów i powtórz mycie jeszcze raz, łącznie dwa razy. Teraz dodaj jeden mililitr wcześniej przygotowanego media infekcyjnego zawierającego AIEC do każdego dołka płytki 24-dołkowej zawierającej komórki Caco-2.
Wyśrodkuj płytkę 24-dołkową przy 500G przez 15 minut w temperaturze pokojowej, aby zsynchronizować kontakt bakteryjny z monowarstwą nabłonkową i inkubator płytki w 37 stopniach Celsjusza z 5% dwutlenkiem węgla przez trzy godziny, aby umożliwić inwazję bakteryjną. Przygotuj media zawierające antybiotyki, dodając 240 mikrogramów na mililitr amikacyny do wstępnie podgrzanego serum i media bez antybiotyków i antymykotyków. Po okresie infekcji, odstaw media z monowarstwy komórek Caco-2 i przepłucz każdy dołek 1 mililitr serum i media bez antybiotyków i antymykotyków.
Odstaw media i powtórz mycie jeszcze raz, łącznie dwa razy. Następnie pipetą przenieś jeden mililitr media zawierającego 240 mikrogramów na mililitr amikacyny do każdego dołka. Równolegle, lecz inny zestaw komórek 100 mikrogramami na mililitr gentamycyny w celu porównania i inkubator komórek w 37 stopniach Celsjusza z 5% dwutlenkiem węgla przez 1 godzinę, aby wyeliminować bakterie pozakomórkowe.
Po inkubacji, odstaw media z każdego dołka. Dodaj 1 mililitr PBS, aby zmyć bakterie przywierające. Odstaw PBS i powtórz mycie jeszcze raz, łącznie dwa razy.
Teraz dodaj 200 mikrolitrów 1% Triton X100 rozcieńczonego w PBS do każdego dołka i inkubator na orbitowym miksowniku z 90 obrotów na minutę przez 10 minut, aby lizysować komórki nabłonkowe. Pipetą podnieś i opuszczaj około 30 razy na dołek, aby oddzielić kom
This article presents an alternative amikacin-based protection assay for quantifying and visualizing epithelial cell invasion by adherent-invasive Escherichia coli (AIEC) and other multidrug-resistant pathogens. The method addresses limitations of the traditional gentamicin protection assay, particularly in the context of antibiotic-resistant isolates from inflammatory bowel disease (IBD) patients.
Quantifying epithelial cell invasion by multidrug-resistant Escherichia coli is critical for target validation and mechanistic de-risking in infectious disease research. The amikacin protection assay enables reliable phenotypic classification and comparative analysis of invasive potential, especially in the context of antibiotic resistance. This capability supports translational continuity from discovery through preclinical pathogen characterization and portfolio triage.
The amikacin protection assay fits within the early discovery to preclinical continuum, supporting both hypothesis testing and downstream screening of multidrug-resistant pathogens.