Name: Laserowa indukcja ściśnięcia szyjki pęcherza z zastosowaniem lasera Holmium:YAG w modelu szczura (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-07-28T14:20:00.000+00:00
Duration: 5 min 23 s
Description: Poznaj model zwężenia szyjki pęcherza u szczura z zastosowaniem lasera Ho:YAG. Ta metoda umożliwia badanie patogenezy zwłóknienia i testowanie terapii przeciwzwłóknieniowych w urologii.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Praca ta została wspierana przez granty Narodowej Fundacji Nauk Przyrodniczych Chin (nr 82474255 dla H.R.) oraz Program Badań Administracji Prowincji Hebei ds. Tradycyjnej Medycyny Chińskiej (B2025018 dla H.R.).

Wszystkie eksperymenty na zwierzętach przeprowadzono zgodnie z protokołami zatwierdzonymi przez Komitet ds. Opieki nad Zwierzętami Instytucjonalnymi i ich Użytkowania Komitetu Etyki Opieki nad Zwierzętami Eksperymentalnymi Instytutu Medycyny Tradycyjnej Chin w Pekinie (Numer zgody BJTCM-R-2025-03-02). Zwierzęta przetrzymywano w standardowych warunkach z dostępem ad libitum do pokarmu i wody. W obecnym protokole użyto łącznie 16 szczurów, w tym 8 szczurów w grupie kontrolnej bez operacji i 8 szczurów w grupie leczonych laserem Ho:YAG. Dwa zwierzęta w grupie leczonych laserem Ho:YAG zmarły pooperacyjnie. Żadne dodatkowe zwierzęta nie zostały wykluczone z powodu perforacji, ciężkiego krwotoку lub niepowodzenia indukcji modelu.
1. Przygotowanie przedoperacyjne
<ol>
	<li>Przygotuj meloxicam w stopniu farmaceutycznym do przewlekania analgezji okołooperacyjnej (Rysunek 1A), małe urządzenie do znieczulenia inhalacyjnego (Rysunek 1B), system laserowy Ho:YAG z 200-mikrometrową włókną laserową (Rysunek 1C), sterylne mikrochirurgiczne narzędzia (Rysunek 1D), 8-0 absorbowalne warkocze (powlekane kwasem poliglikolinowym, PGA) do zamknięcia cystotomii, 4-0 absorbowalne warkocze z poliglaktyny 910 do zamknięcia skóry, sterylny roztwór soli fizjologicznej, sterylne prześcieradła, sterylne waciki, i sterylny smar (Rysunek 1E).</li>
	<li>Wywołać znieczulenie z 3%;4% izofluranem w tlenie w komorze indukcyjnej i podtrzymać znieczulenie z 1,5%;2,5% izofluranem przez rurkę nosową podczas operacji.</li>
	<li>Dostosować stężenie według częstości oddechów i zatwierdzonego protokołu instytucjonalnego dotyczącego zwierząt. Potwierdzić wystarczającą głębokość znieczulenia brakiem odruchu po szczypnięciu palca przed nacięciem i ponownie ocenić głębokość znieczulenia przez cały zabieg.</li>
	<li>Odstrzyżyć sierść szeroko z dolnej części brzucha, aby prześcieradło pokryło włosy, które pozostały i zapobiegłoby kontaktowi narządów z nieodstrzyżoną sierścią.</li>
	<li>Dezynfekować pole operacyjne naprzemiennie piaskowcami povidonu-jodu i 70% alkoholem izopropylowym; wykonaj trzy aplikacje każdego roztworu przed przykryciem.</li>
	<li>Umieść zwierzę w pozycji leżącej na plecach na poduszce grzewczej ustawionej na 37 °C i podtrzymuj sterylne warunki podczas całego zabiegu.</li>
	<li>Jeśli wymagane jest wypełnienie pęcherza lub śródoperacyjne zidentyfikowanie szyi pęcherza, wysmaruj małej sterylnej cewnik lub kanylu sterylnym smarem, delikatnie wsuń go przez ujście cewki moczowej do pęcherza i powoli wpraw sterylny roztwór soli fizjologicznej. Unikaj siłkowego wprowadzania lub nadmiernego wypełnienia. Usuń lub zabezpiecz cewnik zgodnie z planowanym narażeniem chirurgicznym.</li>
</ol>
2. Ekspozycja pęcherza
<ol>
	<li>Wykonaj 3-4 cm dolny środkowy nacięcie skóry w warunkach sterylnych (Rysunek 2A).</li>
	<li>Za pomocą szczypców o ostrych końcach i mikroskalpeli podziel tkankę podskórną i otwórz linię białą, aby wejść do jamy otrzewnej.</li>
	<li>Delikatnie ujawni pęcherz moczowy za pomocą bezpiecznych szczypiec (Rysunek 2B).</li>
	<li>Zidentyfikuj szyję pęcherza jako połączenie między podstawą pęcherza a proksymalną częścią cewki moczowej.</li>
	<li>Umieść tępy probnik pod szyją pęcherza, aby zapewnić delikatne wsparcie i ustabilizować docelowy obszar (Rysunek 2C).</li>
</ol>
3. Transwezykalna ablacja laserem Ho:YAG
<ol>
	<li>Rozcieńczyć pęcherz sterylnym roztworem soli fizjologicznej, aż ściana pęcherza stanie się umiarkowanie napięta. Unikać nadmiernego rozciągnięcia, które może zasłonić znamiona anatomiczne lub zwiększyć napięcie w miejscu cystotomii.</li>
	<li>Stwórz 0,5 cm podłużne cystotomię na przednim czubku pęcherza za pomocą drobnych mikroskalpelek (Rysunek 2D).</li>
	<li>Wprowadź przygotowaną 200-mikrometrową włóknę laserową Ho:YAG przez cystotomię do światła pęcherza.</li>
	<li>Za pomocą bezpośredniego widoku zasuń włókno do szyi pęcherza.</li>
	<li>Delikatnie umieść końcówkę włókna w bezpośrednim kontakcie ze śluzówką szyi pęcherza. Utrzymuj tryb kontaktowy bez widocznego wgniecenia tkanki; upewnij się, że odległość końcówka-tkanka wynosi około 0 mm przez cały czas dostarczania energii.</li>
	<li>Dostarcz energię laserową na poziomie 1,0 J i 10 Hz przez 5 s w położeniu 9 godzin (Rysunek 3A) i powtórz w położeniu 3 godzin (Rysunek 3B). To ustawienie dostarcza

<ol>
	<li>Wu Y, et al. Analysis of risk factors for bladder neck contracture after transurethral endoscopic surgery for benign prostatic hyperplasia. Aging Male. 2024;27(1):2429456.</li>
	<li>Rassweiler J, et al. Complications of transurethral resection of the prostate (TURP)--incidence, management, and prevention. Eur Urol. 2006;50(5):969-79; discussion 980.</li>
	<li>Simhan J, et al. Bladder neck contracture. Transl Androl Urol. 2014;3(2):214-20.</li>
	<li>Browne BM, Vanni AJ. Management of urethral stricture and bladder neck contracture following primary and salvage treatment of prostate cancer. Curr Urol Rep. 2017;18(10):76.</li>
	<li>Pakshir P, Hinz B. The big five in fibrosis: macrophages, myofibroblasts, matrix, mechanics, and miscommunication. Matrix Biol. 2018;68-69:81-93.</li>
	<li>Li L, Zhao Q, Kong W. Extracellular matrix remodeling and cardiac fibrosis. Matrix Biol. 2018;68-69:490-506.</li>
	<li>Ren Y, et al. Bladder neck contracture: incidence, mechanisms, and therapeutic advances. Ann Med Surg (Lond). 2025;87(11):7378-7389.</li>
	<li>Mattiasson A, Uvelius B. Changes in contractile properties in hypertrophic rat urinary bladder. J Urol. 1982;128(6):1340-2.</li>
	<li>Igawa Y, et al. A rat model for investigation of spinal mechanisms in detrusor instability associated with infravesical outflow obstruction. Urol Res. 1993;21(4):239-44.</li>
	<li>Varkarakis IM, et al. Comparison of erbium:yttrium-aluminum-garnet and holmium:yttrium-aluminum-garnet lasers for incision of urethra and bladder neck in an in vivo porcine model. Urology. 2005;65(1):191-5.</li>
	<li>Hu X, et al. Clinical comparison of TURP, PVP and HoLEP for small volume BPH. Sci Rep. 2025;15(1):34751.</li>
	<li>Kang D, et al. Morphological characterization of tissue destruction according to the distance between holmium:YAG laser tip and tissue surface. Int Neurourol J. 2024;28(3):196-206.</li>
	<li>Zhang SL, Wong AW. A novel technique for atraumatic transurethral catheterisation of male rats. Biol Open. 2024;13(9).</li>
	<li>Kendall RT, Feghali-Bostwick CA. Fibroblasts in fibrosis: novel roles and mediators. Front Pharmacol. 2014;5:123.</li>
	<li>Kitta T, et al. Benefits and limitations of animal models in partial bladder outlet obstruction for translational research. Int J Urol. 2018;25(1):36-44.</li>
	<li>Wang Y, et al. Urethral orifice hyaluronic acid injections: a novel animal model of bladder outlet obstruction. BMC Urol. 2015;15:8.</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

W tej pracy utworzyliśmy model szczura zwężenia włóknisto-fibrotycznego szyi pęcherza za pomocą transpęcherzowej ablacji laserem Ho:YAG. Główną zaletą tej metody jest to, że wytwarza kontrolowane uszkodzenie termiczne w miejscu anatomicznym szyi pęcherza, po którym następuje progresywna włóknista remodelacja. Różni się to od tradycyjnych modeli zewnątrzpęcherzowych zwężeń, które głównie powodują obturację poprzez zewnętrzne ściskanie, a nie wrodzone tworzenie blizny10. Ponieważ pooperacyjne zwężen...

Zwężenie szyjki pęcherza (BNC) to włókniste zwężenie szyjki pęcherza, które występuje często po zabiegach przezcewkowych, szczególnie TURP1,2,3. Jego podstawą patofizjologiczną jest nadmierny proces bliznowacenia i odkładanie kolagenu po urazie tkankowym oraz nieprawidłowym gojeniu się ran4,5,6. Ponieważ BNC może prowadzić do uporczywych zaburzeń opróżniania, nawracających interwencji i znacznej morbidytetu, potrzebny jest odtwarzalny model eksperymentalny do badania jego patogenezy i leczenia7.
Do badania obturacji ujścia pęcherza lub otaczającej moczowodu fibrozy stosowano kilka modeli zwierzęcych, w tym zewnątrzotrzewnowe związanie proksymalnego odcinku cewki moczowej8 oraz inne otwarte podejścia chirurgiczne9. Chociaż modele te mogą wywołać obturację dróg moczowych i przerost mięśnia zwieracz pęcherza, nie odtwarzają one specyficznie zlokalizowanego urazu termicznego, który jest uznawany za inicjujący pooperacyjne BNC po chirurgii endoskopowej. Ponadto często trudno jest standaryzować docelowy obszar anatomiczny i stopień urazu, co może zwiększyć zmienność między zwierzętami.
Idealny model związany z BNC powinien spełniać trzy kryteria: powinien mieć na celu anatomiczną szyjkę pęcherza, odtwarzać kontrolowane urazy termiczne podobne do tych wytwarzanych przez endoskopowe urządzenia energetyczne oraz niezawodnie powodować włókniste zwężenie przy dopuszczalnej złożoności chirurgicznej. Aby sprostać tym potrzebom, opracowałeśmy protokół oparty na laserze Ho:YAG przezcewkowym u szczurów samic. Wybrane zostały samice, aby ułatwić ekspozycję chirurgiczną i izolować uraz termiczny specyficzny dla szyjki pęcherza oraz przebudowę włókniącą bez ingerencji ze strony tkanki prostaty. Za pomocą bezpośredniej wizualizacji dopęcherzowej metoda ta umożliwia dokładne dostarczenie energii laserowej do błony śluzowej i podśluzówki szyjki pęcherza i powoduje występowanie powtarzalnego włóknistego zwężenia ujścia pęcherza.

<table><tbody><tr><td>Absorbable braided suture (coated PGA), 8-0</td><td>Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., Ltd., Shanghai, China</td><td>R831</td><td></td></tr><tr><td>Anti-collagen I antibody, mouse monoclonal</td><td>Proteintech Group, Inc., Wuhan, China</td><td>66761-1-Ig</td><td></td></tr><tr><td>Anti-collagen III antibody, mouse monoclonal</td><td>Proteintech Group, Inc., Wuhan, China</td><td>68320-1-Ig</td><td></td></tr><tr><td>Coated Vicryl Plus suture (polyglactin 910), 4-0</td><td>Ethicon, Inc. (Johnson &amp; Johnson)</td><td>VCP773D</td><td>SH 26 mm &frac12;-circle taper needle; violet braided; absorbable; Lot: RLMCJX</td></tr><tr><td>Hematoxylin and eosin (HE) staining kit</td><td>Servicebio, Wuhan, China</td><td>2310005</td><td></td></tr><tr><td>Holmium-YAG Laser System (LITHO)</td><td>Quanta System S.p.A, Italy</td><td>https://www.quantasystem.com/laser/litho/</td><td>1 J, 10 Hz, 10 W, 200 &mu;m fiber</td></tr><tr><td>HRP-conjugated goat anti-mouse IgG secondary antibody</td><td>Boster, Wuhan, China</td><td>BA1050</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>RWD</td><td>2025010601</td><td></td></tr><tr><td>Masson's trichrome staining kit</td><td>Zhuhai Baso Biotechnology Co., Ltd., Zhuhai, Guangdong, China</td><td>BA4079B</td><td></td></tr><tr><td>Meloxicam Injection</td><td>Qilu Animal Health, Shandong, China</td><td>E135H003</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyde (4%)</td><td>Servicebio, Wuhan, China</td><td>2510H0070148</td><td></td></tr><tr><td>Picrosirius red staining kit</td><td>Nanjing Senbeijia Biological Technology Co., Ltd., Nanjing, Jiangsu, China</td><td>20250228</td><td></td></tr><tr><td>Safety intravenous catheter, 24 G</td><td>Guangdong Lily Medical Technology Co., Ltd., Foshan, Guangdong, China</td><td>AD4-240827</td><td></td></tr><tr><td>Small-animal inhalation anesthesia system</td><td>RWD Life Science, Shenzhen, China</td><td>https://www.rwdstco.com/inhalation-anesthesia-solutions/</td><td>Induce with 3%&ndash;4% isoflurane in oxygen</td></tr></tbody></table>

laserowa indukcja ściśnięcia szyjki pęcherza z zastosowaniem lasera holmium:yag w modelu szczura

Holmium:YAG Laser-Assisted Induction of Bladder Neck Contracture in a Rat Model

Zwężenie szyi pęcherza (BNC) jest zwłóknionym zwężeniem otworu pęcherza i trudną powikłaniem po przezcewkowej resekcji prostaty (TURP). Istniejące modele zwierzęce często opierają się na zewnątrzmaziowej ligturze lub chemicznym kauteryzacji, które nie adekwatnie odtwarzają zwłóknienie wywołane obrażeniami termicznymi, które rozwijają się po zabiegu endoskopicznym i mogą wykazywać ograniczoną powtarzalność. Przedstawiamy tutaj model szczura zwłóknienia szyi pęcherza indukowanego przez przezcewkową ablacje szyi pęcherza laserem Holmium:YAG (laser Ho:YAG). Po małej środkowej laparotomii w dolnej części brzucha i cystotomii, 200-μm światłowód lasera Ho:YAG jest wprowadzany do światła pęcherza pod bezpośrednim widzeniem. Energia lasera jest dostarczana w trybie kontaktowym przy 1,0 J i 10 Hz przez 5 s na punkt w pozycjach 3 i 9 na zegarku szyi pęcherza, co odpowiada 50 J na punkt i 100 J na zwierzę. Cztery tygodnie później, u zwierząt leczonych rozwija się makroskopowe powiększenie pęcherza, zwężenie szyi pęcherza, pogrubienie ściany pęcherza oraz dowód histologiczny na zwłóknienie przebudowy, w tym zwiększone odkładanie kolagenu oraz zwiększone ekspresję kolagenu typu I i III. Ten protokół zapewnia praktyczny model, który naśladuje miejscowe blizny wywołane obrażeniami termicznymi w otworze pęcherza. Ponieważ używane są szczury płci żeńskiej, a funkcjonalne badanie urodynamiczne nie zostało przeprowadzone w obecnym badaniu, model ten jest najlepiej przystosowany do badania zwłóknienia szyi pęcherza i strukturalnej przebudowy, a nie do pełnego odtworzenia BNC po operacji gruczołu krokowego u mężczyzn. Model może być przydatny do badania mechanizmów zwłóknienia BNC oraz do przedklinicznej oceny interwencji przeciwzwłóknieniowych lub rekonstrukcyjnych.

Cztery tygodnie po zabiegu szczury poddane działaniu lasera Ho:YAG wykazały powtarzalne zmiany makroskopowe i histologiczne zgodne z włóknistym zwężeniem szyjki pęcherza moczowego. W badaniu grupa kontrolna bez operacji obejmowała 8 szczurów, a grupa leczona laserem Ho:YAG obejmowała 8 szczurów. U 6 z 8 zwierząt leczonych rozwinął się oczekiwany fenotyp; ubytki wynikały z 2 zgonów pooperacyjnych w grupie leczonej laserem Ho:YAG, bez dodatkowych wykluczeń. Makroskopowo pęcherze kontrolne miały prawidłową wielkość i gładką...

Ten protokół pokazuje ablacje laserem Ho:YAG przezpęcherzową w celu stworzenia możliwie najbardziej powtarzalnego modelu szczura z przewlekłym zapaleniem szyi pęcherza moczowego do badania nad remodelacją włóknień indukowaną obrażeniami termicznymi i interwencjami terapeutycznymi.

Laserowa indukcja ściśnięcia szyjki pęcherza z zastosowaniem lasera Holmium:YAG w modelu szczura

Bladder neck contracture (BNC) is a fibrotic narrowing of the bladder outlet and a challenging complication after transurethral resection of the prostate ...

Witam. W tym filmie demonstrujemy nowy i możliwy do powtórzenia model szczura na zwężenie szyi pęcherza, BNC, z użyciem lasera Holmium:YAG. Zwężenie szyi pęcherza jest wyzwaniem w postaci włóknistej powikłania po operacjach przezcewkowych. Ten ustanowiony model zapewnia niezawodną platformę in vivo do badania jego patogenezy i oceny potencjalnych terapii.Prosimy pamiętać, że wszystkie eksperymenty na zwierzętach i procedury przeprowadzone w tym badaniu zostały ściśle zatwierdzone przez Instytucjonalny Komitet ds. Opieki nad Zwierzętami i Wykorzystywania Zwierząt oraz Komitet Etyki Opieki nad Zwierzętami Doświadczalnymi Instytutu Tradycyjnej Medycyny Chińskiej w Pekinie. Rozpocznij procedurę od starannego zapisywania masy ciała szczura za pomocą skali elektronicznej. Umieść zwierzę w komorze indukcyjnej i wywołaj znieczulenie 3-4% desfluranem w tlenie.Dezynfekuj narażoną skórę dolnej części brzucha roztworem povidonu jodowego i przystąp do sterylnego przykrywania. W celu pooperacyjnego łagodzenia bólu podaj podskórnie. Wykonaj 3-5 centymetrową podłużną nacięcie w linii środkowej przez warstwy skóry i mięśni brzucha, aby wejść do jamy otrzewnej.Starannie odsłoń pęcherz i proksymalne

holmiumyag-laser-assisted-induction-bladder-neck-contracture-rat

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Guzy pęcherza moczowego u myszy żeńskich indukuje się w sposób małoinwazyjny poprzez cewnikowanie, lokalną kauteryzację oraz następującą po niej adhezję komórek raka do miejsc oparzeń.

Ortotopowy model mysiego raka pęcherza moczowego

Etapy chirurgiczne powiększenia pęcherza moczowego opisano z wykorzystaniem rusztowań 3-D w modelach mysich i szczurzych. W celu przetestowania skuteczności konfiguracji biomateriałów do zastosowania w powiększeniu pęcherza przedstawiono techniki cystometrii przeprowadzanej zarówno u zwierząt w stanie czuwania, jak i znieczulonych.

Ocena biomateriałów do augmentacji pęcherza moczowego z wykorzystaniem analiz cystometrycznych w różnych modelach gryzoni

Ustanowienie ortotopowego modelu nowotworu pęcherza moczowego w celu oceny efektów przeciwnowotworowych wewnątrz pęcherzowo podanego saRNA oraz monitorowanie wzrostu guza za pomocą ultradźwięków i obrazowania bioluminescencyjnego.

Ortotopowy model nowotworu pęcherza moczowego oraz ocena leczenia wewnątrz pęcherzowego za pomocą saRNA

Sprawdzona technika szczepienia pierwotnych inwazyjnych ksenoprzeszczepów raka ortotopowego pęcherza moczowego wymaga laparotomii i mobilizacji pęcherza. Procedura ta powoduje znaczną zachorowalność u myszy, jest technicznie trudna i czasochłonna. W związku z tym opracowaliśmy wysoce precyzyjne, przezskórne podejście wykorzystujące kontrolę ultrasonograficzną.

Małoinwazyjne założenie mysich ortotopowych ksenoprzeszczepów pęcherza moczowego

Tradycyjne modelowanie częściowej niedrożności ujścia pęcherza moczowego u gryzoni jest obarczone śmiertelnością zwierząt. Poważnym problemem jest również uraz odnerwienia spowodowany rozwarstwieniem wokół bliższej cewki moczowej i szyi pęcherza moczowego. Opracowaliśmy i oceniliśmy bezpieczny i niezawodny model niedrożności środkowej części cewki moczowej, unikając wad tradycyjnego modelu.

Oszczędzająca nerwy niedrożność środkowej cewki moczowej (NeMO) u samic małych gryzoni

W obecnym protokole opracowano indukcję zwężenia cewki moczowej u szczurów Wistar, a następnie rekonstrukcję cewki moczowej za pomocą przeszczepu błony śluzowej policzkowej. Wykonano retrogradację cewki i laserową ocenę Dopplera, potwierdzając rekonstrukcję cewki moczowej (po utworzeniu zwężenia) oraz umieszczenie przeszczepu.

Indukcja zwężenia cewki moczowej, a następnie przeszczep cewki policzkowej w modelu szczura

Model raka pęcherza moczowego wywołanego N-butylo-N-(4-hydroksybutylo)nitrozoaminą został opracowany u transgenicznych myszy ludzkich mucyny 1 (MUC1) w celu przetestowania immunoterapii ukierunkowanej na MUC1.  Po podaniu szczepionki peptydowej ukierunkowanej na MUC1 potwierdzono odpowiedź cytotoksycznych limfocytów T na MUC1 poprzez pomiar poziomu cytokin w surowicy i aktywności specyficznej dla limfocytów T.

Indukcja inwazyjnego raka przejściowokomórkowego pęcherza moczowego u nienaruszonych immunologicznie ludzkich myszy transgenicznych MUC1: model rozwoju immunoterapii

Około 3-8 milionów ludzi w Stanach Zjednoczonych cierpi na śródmiąższowe zapalenie pęcherza moczowego/zespół bólu pęcherza moczowego (IC/BPS), wyniszczający stan charakteryzujący się częściowo bólem miednicy. W celu zbadania udziału układu nerwowego w tym stanie, stosuje się fizjologiczny model bólu pęcherza moczowego u myszy i szczurów.

Wzdęcie pęcherza moczowego wywołało reakcje trzewnomotoryczne jako model bólu pęcherza moczowego u myszy

Ten artykuł opisuje nowatorski nonocklazyjny łącznik zespolenia wieńcowego w modelu pomostowania tętnic wieńcowych (OPCAB) u świń. Ten łatwy w użyciu łącznik wieńcowy ma wewnętrzny potencjał, aby ułatwić minimalnie inwazyjną operację OPCAB.

Ocena nowatorskiego łącznika zespolenia wieńcowego wspomaganego laserem - klipsa Trinity - w modelu pomostowania poza pompą u świń

To badanie opisuje inwazyjną procedurę indukcji przyspieszonej miażdżycy u myszy. W porównaniu z innymi metodami wykorzystującymi urazy wywołane elektrycznością lub kriogenicznością, uraz wywołany mechanicznie naśladuje ludzki stan restenozy po terapiach rewaskularyzacyjnych i jest idealny do badania zaangażowanych mechanizmów molekularnych.

Indukcja przyspieszonej miażdżycy u myszy: model "urazu drutowego"

Poznaj model zwężenia szyjki pęcherza u szczura z zastosowaniem lasera Ho:YAG. Ta metoda umożliwia badanie patogenezy zwłóknienia i testowanie terapii przeciwzwłóknieniowych w urologii.

Laserowa indukcja ściśnięcia szyjki pęcherza z zastosowaniem lasera Holmium:YAG w modelu szczura

Przeglądaj więcej filmów