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Artigo de método

Detecção de ROS com coloração DCFH-DA: Medindo ROS totais em linhagens de células de câncer colorretal

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30 de abril de 2023

Neste artigo

Resumo

Fonte: Kim, H., et al. Detecção de espécies reativas totais de oxigênio em células aderentes por coloração de diacetato de 2',7'-diclorodihidrofluoresceína. J. Vis. Exp. (2020).

Este vídeo descreve o protocolo para detecção de espécies reativas de oxigênio (ROS) celulares totais usando diacetato de 2',7'-diclorodihidrofluoresceína (DCFH-DA). Este método ajuda a visualizar a localização de ROS nas células aderentes usando um microscópio de fluorescência e quantificar ainda mais a intensidade de ROS com um leitor de placa de fluorescência.

Protocolo

1. Semeadura celular

  1. Semeie 2 x 105 células de câncer colorretal HCT116 por poço em uma placa de 24 poços e mantenha as células no meio Eagle modificado de Dulbecco (DMEM) durante a noite a 37 ° C.
  2. Substituir o meio de cultura por ou sem meio contendo sulfato ferroso (FS) 100 μM ou doxorrubicina 10 μM (DOX) e incubar durante 24 h.

2. Preparação da solução DCFH-DA

  1. Dissolva 4,85 mg de DCFH-DA em 1 mL de dimetilsulfóxido (DMSO) para fazer uma solução estoque de 10 mM.
  2. Dilua a solução de estoque com DMEM pré-aquecido em uma solução de trabalho de 10 μM antes de adicioná-la aos poços.
  3. Vórtice a solução de trabalho por 10 s.

3. Coloração DCFH-DA

  1. Remova o meio que contém o medicamento e lave uma vez com DMEM.
  2. Adicione 500 μL da solução de trabalho DCFH-DA em cada poço e incube a 37 °C por 30 min.
  3. Remova a solução de trabalho DCFH-DA. Lave uma vez com DMEM e 2x com 1x solução salina tamponada com fosfato (PBS).
  4. Adicione 500 μL de 1x PBS a cada poço.

4. Aquisição de imagens e medição de intensidade

  1. Tire imagens fluorescentes representativas para cada poço usando o canal de proteína fluorescente verde (GFP) em um microscópio de fluorescência.
  2. Depois de tirar as imagens, remova o PBS e adicione 200 μL de tampão de ensaio de radioimunoprecipitação (RIPA) a cada poço.
  3. Incube no gelo por 5 min e, em seguida, colete o lisado celular em tubos de 1,5 mL.
  4. Centrifugar a 21.130 x g durante 10 min a 4 °C.
  5. Transferir 100 μL do sobrenadante para uma placa preta de 96 poços e medir a intensidade de fluorescência utilizando um leitor de microplacas de fluorescência a um comprimento de onda de excitação de 485 nm e um comprimento de onda de emissão de 530 nm.
  6. Transfira 1 μL do sobrenadante para uma placa transparente de 96 poços contendo 100 μL de solução de ensaio de proteína 1x para medir a concentração de proteína usando o ensaio de Bradford.
  7. Normalize as intensidades de fluorescência com concentrações de proteínas.

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Diacetato de 2',7'-diclorofluoresceínaCayman Chemical, Ann Arbor, MI20656
Cloridrato de doxorrubicinaTCI América, Portland, ORD4193-25MG
Meio Eagle Modificado de DulbeccoCorning, Corning, NYRolamento 45000-304
Sistema de imagem automática Invitrogen EVOS FLThermo Fisher Scientific Waltham, MAAMAFD1000ou qualquer outro microscópio de fluorescência
Solução de Bradford para ensaio de proteínasBio-Rad, Hércules, CA5000001
Leitor de microplacas SpectraMax M2Dispositivos Moleculares, Radnor, PA89429-532ou qualquer outro leitor de microplacas de fluorescência
Sulfato ferroso heptahidratadoVWR, Radnor, PARolamento 97061-542

Etiquetas

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