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Artigo de método

Modelagem de Xenoenxerto Derivado de Paciente: Uma Técnica para Gerar Modelos de Camundongos de Melanoma

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30 de abril de 2023

Neste artigo

Resumo

Fonte: Min Xiao et al. Um modelo de xenoenxerto derivado de paciente com melanoma. J. Vis. Exp. (2018)

Neste vídeo, células de melanoma derivadas de humanos são implantadas por via subcutânea na região do flanco de um camundongo imunocomprometido. O modelo PDX permite a investigação pré-clínica de células de melanoma que melhor recapitulam a heterogeneidade tumoral e a agressividade do melanoma observadas em condições in vivo.

Protocolo

Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.

1. Processamento de tecido tumoral para implantação em camundongos

  1. Excisão cirúrgica ou processamento de tecido de biópsia cirúrgica
    1. Transfira o tecido para uma placa de Petri estéril e separe o tecido tumoral do tecido normal circundante o máximo possível.
    2. Remova o tecido necrótico (geralmente identificado como tecido esbranquiçado pálido localizado centralmente dentro do tumor) do tumor remanescente o máximo possível.
    3. Use um bisturi para subdividir um pedaço inicial do tumor em pedaços aproximadamente iguais (~ 3 mm x 3 mm) para implante cirúrgico em camundongo (Figura 1).
    4. Opcionalmente, se houver tecido tumoral suficiente disponível, congele o tecido para ensaios a jusante (sequenciamento de RNA [RNASeq], sequenciamento completo do exoma [WES], etc.).
    5. Faça uma pasta tumoral picando o tecido tumoral usando uma técnica de lâmina cruzada com duas lâminas de bisturi. Pique os pedaços de tumor o mais finamente possível para formar uma pasta, que agora está pronta para implantação cirúrgica em camundongos.
    6. Alternativamente, se o tecido tumoral for muito duro para a dissociação mecânica, use um procedimento de dissociação da digestão para formar uma pasta semelhante a um gel e uma suspensão unicelular para implantação e / ou injeção.
      1. Pique os pedaços de tumor o mais finamente possível para formar uma pasta.
      2. Colocar a pasta num tubo de 50 ml com solução salina balanceada de Hank fria (HBSS)-/- (sem Ca++ e Mg++); em seguida, centrifugar o pellet a 220 x g durante 4 min a 4 °C.
      3. Ressuspenda a pasta em 10 mL de meio de digestão fresco aquecido (200 U / mL de colagenase IV + 5 mM CaCl2 + 50 U / mL DNase em HBSS - / -) por 1g de tecido tumoral.
      4. Coloque o tubo em banho-maria a 37 °C por 20 min e misture vigorosamente a cada 5 min com uma pipeta descartável.
      5. Lavar com até 50 ml de HBSS-/-; em seguida, centrifugar a 220 x g durante 4 min a 4 °C.
      6. Adicione 5 mL de TEG pré-aquecido (0,025% de tripsina + 40 μg/mL de etilenoglicol-bis(β-éter aminoetílico)-N,N,N',N'-ácido tetracético [EGTA] + 10 μg/mL de álcool polivinílico [PVA]) por 1 g de tecido tumoral, ressuspenda/agite suavemente e coloque o tubo a 37 °C por 2 min sem misturar.
      7. Adicione pelo menos 1 volume igual de meio de coloração a frio (albumina de soro bovino a 1% [BSA] + 10 mM de ácido 4-(2-hidroxietil)-1-piperazineetanossulfônico [HEPES] + 1x penicilina-estreptomicina em meio L15) para extinguir a tripsina e centrifugue a 220 x g por 4 min a 4 °C.
      8. Ressuspenda a amostra em 10 mL de meio de coloração por 1g de tecido tumoral e filtre-a através de um filtro de células de 40 μm para obter uma suspensão de célula única para injeção em camundongos (Figura 1).
      9. A pasta restante no topo do filtro de células também pode ser coletada para implantação cirúrgica em camundongos.
  2. Implantação e injeção de tumor em camundongos
    1. Implante de excisão cirúrgica ou biópsia cirúrgica de tecido
      nota: Certifique-se de que todos os instrumentos cirúrgicos sejam estéreis por autoclavagem ou uso de instrumentos descartáveis pré-esterilizados.
      1. Raspe o cabelo da parte inferior das costas de camundongos machos ou fêmeas NSG de 6 a 8 semanas, deixando uma área de aproximadamente 1,5 cm x 3 cm sem pelos. Anestesiar camundongos usando isoflurano e confirmar apertando suavemente o pé como um teste de capacidade de resposta. Use pomada veterinária nos olhos para evitar o ressecamento.
      2. Coloque os ratos individuais em uma almofada térmica no cone do nariz da máquina de anestesia, esfregue a área raspada com clorexidina. Em seguida, mergulhe com etanol 70% e deixe evaporar.
      3. Prepare pedaços ou divida a pasta tumoral em uma placa de Petri em montes individuais para implantação cirúrgica (ou seja, em três montes iguais, se for implantado em 3 camundongos).
      4. Usando a lâmina do bisturi, faça uma incisão de aproximadamente 5 mm de comprimento no centro das costas do mouse, pegue uma pinça e levante a pele do lado da incisão oposto ao operador.
      5. Pegue a tesoura na outra mão e separe a pele da camada muscular cortando suavemente a membrana fascial com pequenos cortes em tesoura, criando assim uma "bolsa" para o tecido tumoral.
      6. Pegue um pedaço de tumor ou um monte individual de tecido de pasta tumoral com a lâmina do bisturi e coloque suavemente o tecido na bolsa criada.
      7. Administre 100 μL de matriz extracelular artificial no monte de tecido tumoral na bolsa.
      8. Usando dois pares de pinças, puxe a incisão em ambas as extremidades para que as bordas da ferida se aproximem e feche a ferida aplicando um ou dois clipes de ferida.
      9. Injetar 1-5 mg/kg de meloxicam por via subcutânea como analgésico em ratinhos após a cirurgia.
      10. Retire o rato do cone do nariz e coloque-o de volta em sua gaiola original; observe o rato enquanto acorda. Não retorne a uma gaiola até que esteja totalmente recuperado.
      11. Remova os clipes da ferida após aproximadamente 7 dias. Se a cicatrização não estiver completa após 7 dias, deixe o clipe da ferida por mais um ou dois dias.
        nota: Se estiver usando uma suspensão de célula única de excisão cirúrgica ou processamento de tecido de biópsia cirúrgica, ela se misturará com matriz extracelular artificial (na proporção de 1:1) para injeção em camundongos.
    2. Injeção de PAAF ou tecido de biópsia central
      1. Coloque um mouse NSG em um rack de grade de aço, segure o mouse firmemente pela cauda e puxe suavemente o mouse para trás. Ele agarrará a grade com as patas dianteiras com firmeza. Alternativamente, prenda o mouse na mão não dominante e deixe a área do flanco visível.
      2. Desinfete a pele do flanco com cotonetes de preparação com álcool. Injete lenta e firmemente o conteúdo da seringa sob a pele do camundongo.
      3. Puxe a agulha e coloque o mouse de volta em sua gaiola.
  3. Monitore o crescimento do tumor
    1. Monitore os camundongos uma vez por semana para verificar se há tumores palpáveis.
    2. Quando os tumores estiverem em um tamanho mensurável (aproximadamente 50 mm3), use um paquímetro para registrar as dimensões do tumor. Use a seguinte fórmula para calcular os volumes do tumor: (largura x largura x comprimento) / 2.
    3. Colha o tumor assim que o volume do tumor atingir cerca de 1,5 cm3 (aproximadamente 4-10 semanas). O tumor agora é chamado de passagem de camundongo 1 (MP1).

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Resultados

figure-results-1
Figura 1: Métodos alternativos de implantação.(A) Os tumores podem ser processados em pedaços, uma suspensão de pasta ou como uma suspensão de célula única. (B) Todos os três métodos permitirão o crescimento de tumores in vivo. Aqui são mostrados camundongos implantados por via subcutânea com tumor e fotografados 12 dias após a implantação. (C) São m...

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
1 M HepesCORPORAÇÃO SIGMA-ALDRICHGato # H0887-100ML
100x PenStrep InvitrogenGato # 15140163
1x HBSS-/- (sem Ca++ ou Mg++)MedCat # MT21-023-CV
2,5% de tripsina CORPORAÇÃO SIGMA-ALDRICHGato # T4549-100MLAlíquotas de 10 mL armazenadas a –20 °C
BsaCORPORAÇÃO SIGMA-ALDRICHGato # A9418-500G
ClorexidinaFisher CientíficoGato # 50-118-0313
Colagenase IV (2.000 u/mL)Worthington Gato #4189maquiagem em HBSS-/- a partir de colágeno IV em pó (Worthington # 4189, u / mg indicado no frasco e varia com cada lote); congelar 1
DmsoCORPORAÇÃO SIGMA-ALDRICHGato # C6295-50ML
DNaseCORPORAÇÃO SIGMA-ALDRICHGato # D4527
EGTA (ácido etilenoglicol bis(éter 2-aminoetílico)-N,N,N'-tetracético)MerckGato # 324626.25
FBSTECNOLOGIAS INVITROGEN LIFEGato # 16000-044
Zona de fungosTECNOLOGIAS INVITROGEN LIFEGato # 15290-018
gentamicinaFISHER CIENTÍFICOGato # BW17518Z
IsofluranoHENRY SCHEIN SAÚDE ANIMALGato # 050031
Mídia L15 de Leibovitz InvitrogenGato # 21083027
MatrigelCorningGato # 354230Matriz extracelular artificial
MeloxicamHENRY SCHEIN SAÚDE ANIMALRequisição # ::Henry ScheinGato # 0251151-5mg/kg, como analgésico
Camundongos NOD/SCID/IL2-receptor nulo (NSG)Instituto Wistar, biotérioreprodução
PVA (álcool polivinílico)CORPORAÇÃO SIGMA-ALDRICHGato # P8136-250G
RPMI 1640 Médio (Mod.) 1X com L-GlutaminaFisher CientíficoGato # MT10041CM
bisturipenaGato # 2976-22
Clipes de feridaMikRonGato #427631

Etiquetas

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