Todos os procedimentos envolvendo participantes humanos foram realizados em conformidade com as diretrizes institucionais, nacionais e internacionais para o bem-estar humano e foram revisados pelo conselho de revisão institucional local.
1. Isolamento de queratinócitos da pele humana
- Comece fazendo as seguintes soluções: 50 mL de solução de tripsina a 0,25% e glicose a 0,1% em DPBS. Misture e filtre e esterilize (0,2 μm) a solução. Prepare 10 mL de RPMI-1640 + solução de FBS a 2%, 50 mL de DPBS e meio livre de soro de queratinócitos (KSFM). Adicione suplementos de KSFM e 250 μL de gentamicina a 500 mL de KSFM. Pré-aqueça as soluções a 37 °C antes de usar.
- Colete a pele de voluntários adultos saudáveis submetidos a cirurgia plástica. As amostras de pele utilizadas têm aproximadamente 10 cm x 15 cm, mas podem variar em tamanho. Mantenha a pele fresca durante o transporte, transportando as amostras de pele em uma caixa de isopor contendo um elemento de resfriamento. Se necessário, a amostra de pele pode ser armazenada a 4 °C durante a noite.
- Remova a gordura de baixo da seção de pele usando tesouras, bisturis e pinças esterilizadas.
- Aperte a seção de pele (aproximadamente 10 cm x 15 cm) em uma capa estéril em cima de um prato usando agulhas. Primeiro, limpe a pele com uma gaze esterilizada seca. Em seguida, limpe a pele usando uma gaze esterilizada com etanol 70%.
- Usando uma plaina de pé, corte a camada superior (epiderme) da seção da pele e coloque-a em uma placa de Petri de 9 cm. Em seguida, adicione imediatamente 25 mL da solução de DPBS/tripsina/glicose (preparada na etapa 1.1) à placa de Petri. Incubar durante 30 min a 37 °C.
- Usando uma pipeta, remova a solução de DPBS/tripsina/glicose da placa de Petri e adicione 10 mL de RPMI-1640 + 2% de FBS para inativar a tripsina.
- Usando duas pinças, agora libere as células epidérmicas no meio, raspando e agitando suavemente o compartimento epidérmico e dérmico das seções da pele.
- Filtrar a suspensão de células epidérmicas através de um filtro metálico (tamanho de orifício de 1 mm) e recolher num tubo de 50 ml. Adicione as seções de pele restantes a um tubo de 50 mL contendo 10 mL de RPMI-1640 sem FBS e vórtice por 10 s. Filtre a suspensão através do filtro metálico para um tubo de 50 ml contendo a suspensão de células epidérmicas. Adicione DPBS a um volume total de 50 mL.
- Centrifugue a suspensão da célula por 10 min a 450 x g à temperatura ambiente.
- Remover o sobrenadante e ressuspender o sedimento de células epidérmicas em aproximadamente 10 ml de KSFM a 37 °C, dependendo do tamanho do sedimento celular. Conte as células usando o método de coloração Trypan Blue ao microscópio. O número de células obtidas de uma seção de pele de 10 cm x 15 cm é de aproximadamente 50-100 x 106 células. Para cada balão de culturade 75 cm 2, transferir 8 x 106 células juntamente com 12 ml de KSFM a 37 °C. Agitar suavemente os frascos de cultura para assegurar uma distribuição uniforme das células.
- Incubar os queratinócitos em uma incubadora a 37 °C com 100% de umidade e 5% de CO2. Troque o meio após 2 dias e três vezes por semana. Células de passagem quando a cultura é 70-80% confluente, o que leva aproximadamente 2 semanas, dependendo da taxa de proliferação dos queratinócitos.