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1) Administração Intragástrico de rotenona
- Pesar o animal.
- Calcular o volume total de rotenona / veículo solução necessária. Neste caso 0,01 ml por grama do peso do animal.
- Cobrar uma seringa de 1 mL com o volume calculado anteriormente de solução de rotenona (0,625 rotenona mg / mL, carboximetilcelulose 4% e 1,25% clorofórmio) ou solução veículo (carboximetilcelulose 4% e 1,25% clorofórmio). Neste caso, corresponde a uma dose rotenona 5 mg / kg.
- Pegue o mouse e, segurando o rabo do rato com uma mão, esticar a pele do pescoço, puxando-a com os dois primeiros dedos da outra mão.
- Uma vez que a cabeça é fixa entre os dois dedos, magra contra a palma da mão e transformá-lo de cabeça para baixo. Fixar a cauda usando o quarto e quinto dedos.
- Mantendo a cabeça para trás, pressione o palato a se abrirem a boca do rato. Suavemente introduzir a sonda na boca. É importante usar uma agulha gavagem e não uma agulha regular. Lentamente, mova o gavage na direção do estômago longe o suficiente. Isso irá evitar o material ficar nos pulmões.
- Administrar a solução rotenona ou veículo pressionando suavemente o êmbolo. Quando concluído, lentamente extrair o gavage.
- Coloque o animal em volta outra gaiola até que todos os animais de uma gaiola é feito.
2) Procedimentos imunocoloração
- Após o tratamento, os ratos são anestesiados com cetamina 100 mg / kg ip und Xylasina 10 mg / kg e intracardially perfundidos com paraformaldeído 4% em PBS.
- A coragem são, então, extraídos por dissecção, e colocados em sacarose 15% durante a noite. No dia seguinte, o tecido é transferido para 30% de sacarose e incubadas novamente durante a noite a 4 ° C.
- O tecido é então colocado em Tissue-tek e armazenados em um freezer -80 ° C até o uso.
- Utilizando um criostato, 20 micron intestino seções transversais são transferidos para slides Superfrost.
- Bloqueio e imunocoloração procedimentos usando anticorpos anti-tubulina βIII e anti-alfa-sinucleína são então realizados como descrito anteriormente 9.
3) Análise de Imagem alfa-sinucleína Inclusão
Recomenda-se que uma pessoa externa inconscientes de origem images 'executa a análise. Portanto, os dados deve ser codificada. Análise de imagens foi realizada utilizando software FIJI.
- Abra o arquivo de imagem confocal. Então, dividir os canais de modo que é possível trabalhar em cada canal independentemente.
- Feche os canais que não vai ser usado e selecione Análise> Definir Escala e definir o tamanho do pixel a 1. Definir a distância conhecida a 0,13 (isso vai depender do objetivo e da resolução utilizada) e clique em global. O tamanho da imagem será mostrada em microns.
- Selecione alfa-sinucleína canal e selecione gânglio, certifique-se que a seleção inclui o gânglio em todas as fatias.
- Image Press> Duplicar para duplicar a imagem. Com o gânglio selecionado, apenas uma imagem do tamanho do gânglio será duplicada.
- Prima Editar> Limpar Fora. A parte da imagem fora da região selecionada se tornará preto.
- Duplique a imagem novamente para determinar em etapas posteriores quão bem o procedimento foi. Imagens que tenham um sinal de alta relação ao ruído de fundo não deve ser usado para análise de imagem.
- Selecione Image> Adjust> Limiar e selecione MaxEntropy. Em seguida, passar as fatias na imagem cortada e original para garantir que o processo correu bem. O limite entrópico seleciona um nível de intensidade de sinal baseado no histograma da imagem e somente aqueles pixels com intensidades superiores a este limite será exibido em uma imagem branca sobre preto.
- Selecione Processar, em seguida, clique em Smooth. Esta etapa transforma as bordas pixeled das imagens em bordas lisas.
- Selecione Processar, em seguida, clique em binário, e escolha a opção Make Binary. A imagem será exibida como um negro sobre a imagem branca.
- Duplicate imagem para realizar o próximo passo na imagem duplicada.
- Clique em Analisar> Analisar partículas. Em seguida, selecione Show: Esboços e clique em Resumir. O resto das configurações deve ser em folhas padrão. Esta função reconhece o número total de pixels com um sinal e aqueles que são agrupados. A superfície total de pixels com sinal mais o número de grupos de pixels eo tamanho médio são relatados.
- Comparar e selecionar a maior fatia que se ajusta bem. A fatia será marcada.
- Cópia da tabela de dados com a superfície alfa-sinucleína total, o número de inclusões e do tamanho médio de partícula. Colar os dados em uma planilha excel ou anotado em outro lugar.
- Retornar para FIJI e encontrar a fatia selecionada anteriormente no canal β-tubulina, e selecioná-lo.
- Selecione área de gânglio e clique em Analisar em seguida, selecione Medida. Outra tabela é exibida com osuperfície total do gânglio.
- Extrair os dados da tabela para a folha de excel perto da medição alfa-sinucleína ou copiá-lo para baixo em outro lugar.
- Usando excel, divide os diferentes parâmetros obtidos na medição alfa-sinucleína pela superfície gânglio para obter total de alfa-sinucleína número superfície e inclusão normalizado pelo tamanho do gânglio.
4) Resultados Representante
Quando o protocolo de administração gavage é realizado corretamente os inconvenientes para o animal são mínimas. Tratamento com esta concentração de rotenona permite um efeito local da rotenona na ENS, sem níveis de rotenona em sangue e sem inibição dos músculos e cérebro complexo mitocondrial que, mesmo após 1,5 meses de tratamento (ver Figura 1). Se a análise de imagem é realizado corretamente uma análise rigorosa da alfa-sinucleína padrão deve ser possível. Dá dados confiáveis sobre a quantidade total de alfa-sinucleína (superfície total), alfa-sinucleína padrão no celular (número de inclusões) ea presença de alfa-sinucleína inclusões (tamanho inclusão) (Figura 2).

Figura 1. Disfunção motora em camundongos tratados com rotenona sem detecção de rotenona no sangue ou no CNS. Um padrão, (50 ng / mL) e cromatograma a partir de amostras do cérebro de 20, 10 e 5 mg / kg camundongos tratados. B e C, quantificação dos níveis de rotenona no sangue (B) e sistema nervoso central (C). B, os níveis sanguíneos 1 , 2 e 3 horas após o tratamento. Camundongos foram divididos em três grupos (n = 3) e tratados com 2,5, 5, 10 e 20 mg / kg rotenona (n = 3), 300 mL de sangue foi extraído horas 1, 2 e 3 após a administração de rotenona e agrupados para HPLC análise. C, os ratos foram tratados durante uma semana uma vez por dia com 5 (n = 3), 10 (n = 3) e 20 (n = 1) mg / kg rotenona cérebro e tronco cerebral foram extraídos 1 e 2 horas depois última administração e preparados para análise por HPLC. D, Complexo I mitocondrial atividade muscular e cerebral amostras de 1,5 meses camundongos tratados.

Figura 2. Rotenona administrado localmente induz fosforilação alfa-sinucleína, acumulação e agregação com gliose nos gânglios ENS. (Barras de escala de 20 mm). A, B, C, anti-tubulina βIII, alfa-sinucleína ea coloração DAPI no duodeno (B) e íleo ( A, C) seções. Seta na B, 1,5 meses de tratamento induziu um padrão de aumento da alfa-sinucleína punctate dentro gânglios do sistema nervoso entérico, quando comparado a 3 meses controles (A). Seta no C, 3 meses de tratamento formação induzida de maior alfa-sinucleína inclusões (ø> 6 mm). D, imunofluorescência usando anti-alfa-sinucleína, Thioflavine S e DAPI. Seta no D, apenas três meses camundongos tratados mostraram maior agregação desses alfa-sinucleína acumulações. E, E ', E'', imagem passos análise e quantificação. E, exemplo de imagem usada na quantificação mostrando um gânglio ENS imunocoradas contra alfa-sinucleína mostrando inclusões diferentes. E ', exemplo de imagem obtida após o protocolo de análise de imagem. E'', sobreposição entre algumas das inclusões original (verde) e da representação obtida após a realização do protocolo (linhas amarelas). FG, a quantificação do experimento mostrado na AC foi feito usando a segmentação automática e métodos baseados em entropia thresholding. Um único asterisco, F P <0,05, e dê um duplo asterisco, P <0,01., Cada coluna representa total de alfa-sinucleína superfície superfície / ganglionares. G, cada coluna representa o número total de alfa-sinucleína inclusões / superfície ganglionares. Todos os gráficos mostram média ± EPM