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1. Injeções de animais
Antes da injeção intravenosa cauda veia, a pele da cauda devem ser limpas com álcool isopropílico esfrega para fins de esterilização. Ratos deve então ser injetado com 0,2 g de um mL/20 20 mg agente de contraste de iodo / mL iodado bloodpool (AIE 160XL; Binito Biomédica, Inc. Ottawa, ON, Canadá) através da veia da cauda distal utilizando o espaço morto baixo ½ CC U -100 28G ½ seringas de insulina (Produto # 329461, Becton Dickinson e companhia, NJ, EUA).
2. Preparação dos animais
Após 10 minutos da injeção, os animais devem estar preparados para microCT imagem. Primeiro, o animal deve ser anestesiado em uma caixa com 2% de isoflurano em oxigênio a 100% a taxa de 2,5 litros por minuto. Uma pomada lubrificante ocular deve ser aplicado para evitar ressecamento das córneas durante a anestesia. Temperatura corporal deve ser mantida a 37 ° C por um almofadas de calor.
3. MicroCT Imagem
Camundongos, em seguida, devem ser verificados em uma unidade microCT capaz de realizar exames de animais vivos. Para minimizar artefatos de movimento e estabilidade, os camundongos podem ser colocados em uma câmara comercialmente disponível modalidade multi (Numira Biosciences, Salt Lake City, UT), com possibilidade de ar e exaustão. Para evitar um episódio de hipotermia no animal durante as varreduras microCT, Pads Gel (Brace Terapia Hot Fria, CVS Pharmacy Woonsocket, RI), Toe Warmer (Fábrica de calor, Vista, CA) ou Pads Barro Thermipaq (Thermionics, Springfield, IL) pode ser utilizada. Coloque essas almofadas de aquecimento debaixo da cama de espuma para manter o rato a 37 ° C, evitando contato direto com o animal. Sinais vitais do animal, tais como a temperatura corporal, respiração e os batimentos cardíacos devem ser monitorados usando o Monitoramento de Pequenos Animais e Sistemas Gating como SA Instruments (Stony Brook, NY).
O protocolo de imagem a seguir pode ser usado como um guia para ajudar a determinar os parâmetros de análise apropriada para qualquer microCT unidades. Os animais utilizados neste experimento foram digitalizadas em resolução de 93 mM em um scanner CT volumétrica GE explorar Locus (GE Healthcare, London, Ontario). Este scanner volumétrica usa um 3500 x 1750 detector CCD para Feldkamp reconstrução cone-beam. Os parâmetros plataforma independente do tempo de tensão, corrente e exposição foram mantidas constantes a 450 mA, 80 kVp e 100 ms, respectivamente. Os parâmetros padrão do tempo de exposição, frames per-view e número de pontos de vista pode ser variada e pode ser de 100 ms, 5-8 e 360-720, respectivamente, com tempo de varredura total de aproximadamente 20 minutos. As imagens foram reconstruídas com o software do fabricante EVSBeam proprietários.
4. Renderização de Imagem
Os dados microCT reconstruída pode ser usado para avançados isosuperfície, unidimensional ou bidimensional transferência Imagens função de renderização usando o software de processamento de imagem Seg3D (Seg3D, http://www.sci.utah.edu/cibc/software ).
5. Resultados representante
Por favor, veja a figura em anexo de um rato do tipo selvagem digitalizados com eXIA160XL com as definições mencionadas na seção métodos.

Figura 1. Two-Dimensional Função de Transferência de imagem de renderização (2DTF) de um rato do tipo selvagem criado usando software de processamento de imagem Seg3D (Seg3D, http://www.sci.utah.edu/cibc/software ). O animal foi injetado com eXIA160XL e 10 minutos depois microCT digitalizados em 93 mM resolução isométrica com os ajustes mencionados na secção métodos.
Vídeo 1. Two-Dimensional Função de Transferência de renderização (2DTF) com base 360 º Filme da rotação de um rato do tipo selvagem criado usando software de processamento de imagem Imagevis3D (Imagevis3D, http://www.sci.utah.edu/cibc/software). O animal foi injetado com eXIA160XL e 10 minutos depois microCT digitalizados em 93 mM resolução isométrica com os ajustes mencionados na secção métodos.
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