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Artigo de método

Medidas eletrofisiológicas partir de um sistema olfativo Traça

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DOI:

10.3791/2489

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29 de março de 2011

Neste artigo

Resumo

Inseto sistemas olfativos fornecem oportunidades únicas para a gravação odorant induzida por respostas nas formas de electroantennograms (EAG) e gravações sensillum simples (SSR), que são somadas as respostas de todos os neurônios olfativos receptor (ORNS), localizado na antena e daqueles alojados em individuais sensilla, respectivamente.

Resumo

Inseto sistemas olfativos fornecem oportunidades únicas para a gravação odorant induzida por respostas nas formas de electroantennograms (EAG) e gravações sensillum simples (SSR), que são somadas as respostas de todos os neurônios olfativos receptor (ORNS), localizado na antena e daqueles alojados em individuais sensilla, respectivamente. Essas abordagens têm sido exploradas para obter uma melhor compreensão da comunicação química de insetos. Os estímulos identificados podem ser usados ​​tanto como atrativos ou repelentes nas estratégias de gestão para pragas de insetos.

Protocolo

1. Insetos

  1. Umbigo orangeworm, Amyelois transitella (Walker) (Lepidoptera: Pyralidae) colônia em nosso laboratório originado de mariposas coletadas de amendoeiras em Fresno, CA. Nossa colônia de insetos são mantidos em câmaras climáticas (Percival Inc, IA) a 28 ± 2 ° C, 75 ± 10% de umidade relativa, e sob 16:08 h (luz: escuro) foto regime.
  2. Mariposas emergentes são coletados diariamente, sexados e transferidos para caixas de plástico (669 mL lancheira, 13 x 13 cm, altura, 4,5 cm, Rubbermaid) fornecido com até 10 camadas de toalhas de papel embebido de água (Thirsty Ultra Absorvente, 27,9 x 27,9 cm ; Safeway). Tampas de caixas são perfurada....

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Discussão

Esse novo método desenvolvido para dominar um live umbigo traça orangeworm para medir sinais olfativos provou ser robusto e muito confiável. Empregamos rotineiramente este método para isolar e identificar atrativos romance a partir de substratos como hospedeiro natural amêndoas e pistache.

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Agradecimentos

Apoiada por USDA-NIFA/AFRI 2010-65105-20582, NSF 0918177, e Incorporação de Pesquisa Bedoukian.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Nome do material Catálogo # / Modelo Companhia Comentário
Microscópio BX51WI modelo Olympus, EUA
Microscópio estéreo MZ75 Leica Microsystems Inc. EUA
1,0 milímetros tubos capilares de borosilicato com filamento 1B100F-3 WPI Inc, FL
Micropipeta extrator P-97 Sutter Instruments, CA
Estímulo controlador CS-55 modelo Syntech, Alemanha
Impedância alta pré-amplificadores
(Sonda Único Universal terminou)
Syntech, Alemanha
Amplificador / sistema de aquisição de dados (USB-IDAC) Syntech, Alemanha
Micromanipulador EAG MP-12 Syntech, Alemanha
(Z, Z) -11,13-hexadecadienal Bedoukian Research Inc, CT.
Papel de filtro Whatman 1001070 Whatman EUA
Seringa de 5 mL de polipropileno 309633 Seringas BD, NJ
pipeta ponta (200 mL) 1111-0806 EUA Scientific Inc
669 mL lancheira, 13 x 13 cm, altura, 4,5 cm, Rubbermaid
Sede Ultra Absorvente, 27,9 x 27,9 cm Safeway
Não-secagem de argila 18150 Claytoon, Van Aken International, CA
Câmara ambiental I-30BLL modelo

Referências

  1. Sattelle, D. B., Hall, L. M., Hildebrand, J. G. Insect olfactory sensilla: structural, chemical and electrical aspects of the functional organization. Receptors for Neurotransmitters. Hormones and Pheromones in Insects. , Elsevier North-Holland. Amsterdam. 261-282 (1980).
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Reimpressões e permissões

Etiquetas

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