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Dissecção do cerebelo e preparação de fatias: um método para gerar fatias de tecido a partir de cerebelo de camundongo

8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Thetiot, M. et al. Preparação e imunocoloração de culturas de fatias cerebelares organotípicas mielinizantes. J. Vis. Exp. (2019)

Este vídeo descreve um método para gerar fatias de tecido a partir do cerebelo do camundongo. As fatias cerebelares podem ser usadas para cultura organotípica que fornece informações sobre os mecanismos de neurodesenvolvimento, incluindo a dinâmica da mielinização.

Protocolo

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Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.

1. Dissecção do cerebelo e preparação de seções (tempo prático ≈ 15–20 min por animal)

  1. Coloque uma das placas de cultura de células de 60 mm contendo o meio de dissecção gelado sob o microscópio binocular e remova a placa superior.
  2. Limpe o pelo da cabeça com etanol 70% (evitando cuidadosamente tocar nos olhos do animal) e decapite o animal com tesouras grandes e afiadas, de acordo com o procedimento aprovado.
    NOTA: As fatias cerebelares são geradas a partir de camundongos P9-P10 sem qualquer viés específico de sexo ou cepa.
  3. Use uma tesoura pequena para cortar a pele ao longo da linha média da cabeça, começando no pescoço e subindo até o focinho do rato.
  4. Para segurar a cabeça e expor o crânio, dobre a pele ventralmente sob a cabeça e aperte as duas dobras de pele entre os dedos.
  5. Insira a tesoura pequena suavemente no forame magno e corte o crânio fazendo uma incisão lateral para o lado e, em seguida, corte ao redor do crânio da cabeça. Mantenha a ponta da tesoura o mais paralela e próxima possível do crânio durante o corte, para evitar danos ao tecido cerebral.
  6. Recupere a parte dorsal do crânio usando uma pinça fina e reta. Enquanto levanta cuidadosamente a parte dorsal do crânio, corte as meninges aderentes (membrana irrigada translúcida que envolve o tecido cerebral), se necessário, com uma tesoura pequena para evitar danificar o tecido cerebral.
  7. Introduza cuidadosamente uma pinça reta (ou, alternativamente, use uma espátula) entre o crânio ventral e o cérebro, vire suavemente o cérebro e corte os nervos óptico e trigêmeo com uma tesoura pequena.
  8. Ajude o cérebro a cair por gravidade na placa de cultura de células de 60 mm contendo meio de dissecção gelada, virando a cabeça de cabeça para baixo logo acima da placa e liberando as últimas aderências com uma tesoura pequena, se necessário.
  9. Usando uma pinça fina, oriente o cérebro com o lado dorsal voltado para o pesquisador e o lado ventral deitado no fundo do prato.
  10. Sob o microscópio binocular, use a pinça fina e reta para imobilizar o cérebro no lado do prosencéfalo e evite tocar no rombencéfalo, pois ele pode ser danificado. Separe o rombencéfalo do resto do cérebro (prosencéfalo e mesencéfalo, veja o esquema na Figura 1Aa), usando uma pinça fina e reta. Para separar o cerebelo do resto do rombencéfalo, use a pinça fina para cortar os pedúnculos cerebelares sob o cerebelo (veja o esquema na Figura 1Aa').
  11. Uma vez isolado o cerebelo, arranque cuidadosamente as meninges usando uma pinça fina e reta (veja o esquema na Figura 1Aa').
  12. Segure o cerebelo suavemente com a pinça curva fina e coloque-o com o lado dorsal para cima na plataforma de plástico perpendicularmente à lâmina de barbear do picador (veja o esquema na Figura 1Bb).
  13. Aspire qualquer excesso de meio de dissecção ao redor do cerebelo usando uma ponta de pipeta estéril de ponta fina adaptada em uma pipeta de 1 mL (ver esquema na Figura 1Bb).
  14. Certifique-se de que o cerebelo fique plano, mas não esticado, uma vez colocado na plataforma para obter cortes sagitais ideais durante o corte (consulte o esquema na Figura 1Bb).
  15. Corte seções sagitais de 300 μm de espessura do cerebelo com o picador de tecidos (veja o esquema na Figura 1Bb '). A força e a velocidade da lâmina devem ser otimizadas no local.
  16. Adicione delicadamente uma gota de meio de dissecção no cerebelo fatiado. Usando uma ponta de pipeta de calibre largo colocada em uma pipeta de 1 mL, aspire lentamente o cerebelo fatiado e transfira-o de volta para a placa de cultura de células de 60 mm contendo meio de dissecção gelado (veja o esquema na Figura 1Bb'').
  17. Limpe a plataforma de plástico do picador de tecidos com 100% de etanol entre cada corte de cerebelo. Deixe o etanol evaporar antes de colocar o próximo cerebelo na plataforma.
  18. Use duas pinças retas finas (ou, alternativamente, agulhas de titânio) para separar fatias individuais e selecione 6–8 fatias do vermis (veja o esquema na Figura 1Cc e 1Cc').
  19. Pegue uma placa de 6 poços com inserções de cultura e transfira até 4 fatias selecionadas para uma inserção de cultura junto com algum meio de dissecação, usando uma ponta de pipeta de furo largo adaptada em uma pipeta de 1 mL (veja o esquema na Figura 1Cc').
  20. Coloque as fatias no meio do inserto de cultura usando o meio de dissecção ou pinça para empurrá-las e puxá-las suavemente para o local correto, evitando que entrem em contato umas com as outras (veja o esquema na Figura 1Cc').
  21. Remova qualquer excesso de meio de dissecção ao redor das fatias usando uma ponta de pipeta de ponta fina. Certifique-se de que as fatias fiquem planas na membrana (veja o esquema na Figura 1Cc').
  22. Coloque a placa de 6 poços na incubadora imediatamente após adicionar as fatias na membrana.

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Resultados

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Figura 1: Ilustração da geração de fatias de cerebelo. A dissecção é dividida em três etapas principais. (A) O cerebelo é isolado e as meninges removidas (etapas 1.10 e 1.11). (B) O cerebelo é então transferido para a plataforma do picador e fatiado (etapas 1.12 a 1.16). (C) Por fim, as fatias são isoladas do vermis e colocadas em um...

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Divulgações

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Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
BME médioThermoFisher Scientific41010026
Solução salina balanceada de Hank (10x HBSS)ThermoFisher Scientific14180046
GlutaMAX (100x)ThermoFisher Scientific35050038
Soro de cavalo inativado por calorThermoFisher Scientific26050088
Penicilina-estreptomicina (10.000 UI/mL)ThermoFisher Scientific15140122
Solução salina balanceada de GeySigma AldrichG9779-500ML
Solução de D-glicose (45%)Sigma AldrichG8769-100ML
Paraformaldeído (PFA)Ciências da Microscopia EletrônicaRolamento 15714
Etanol absoluto (100% etanol)Produtos químicos da VWR20821.33
Tritão® X-100Sigma AldrichX100-500MLResfriado a -20 ° C
10% de soro de cabra normal (NGS)ThermoFisher Scientific500622
Solução tampão fosfatoEuroMEDEXET330-A
Picador de tecidosMcIlwainpH 7,4
Lâminas
Tesoura grandeF.S.T14101-14
Tesoura pequenaF.S.TRolamento 91500-09
Pinça reta finaF.S.T91150-20
Pinça curva finaF.S.TRolamento 11297-00
Placas de cultura de células (60 mm e 100 mm)TPP
Placas de cultura de 4 e 6 poçosTPP
Insertos de cultura de células milicelulares (0,4 μm, 30 mm de diâmetro)Merck MilliporePICM0RG50
Incubadora para cultura celular
Ponteiras de pipeta de ponta finaDutscher134000CL37°C, 5% CO2
Ponteiras de pipeta de diâmetro largoThermoFisher Scientific2079G
Seringa estérilTerumo Europa
Filtros de seringa estéreisTerumo Europa20 ou 50 mL
bisturiSwann-Morton5100,22 μm
escova
Lâminas de microscópioRS França
Lamínulas de vidroRS França76 mm x 26 mm x 1,1 mm
Limpadores de tecido Kimtech SciencesProfissional da Kimberly-ClarkRolamento 551122 mm x 22 mm
Microscópio binocular

Reimpressões e permissões

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Etiquetas

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