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Injeção de Microbolhas em Embriões de Camundongos Isolados: Uma Técnica para Entregar Agentes de Contraste de Microbolhas na Vasculatura de Embriões Murinos Vivos

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

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Fonte: Denbeigh, J. M. et al. Imagem de contraste em embriões de camundongos usando ultrassom de alta frequência. J. Vis. Exp. (2015)

Este vídeo demonstra um procedimento para injetar agentes de contraste de microbolhas em um embrião de camundongo isolado em estágio de gestação tardia. A imagem de ultrassom baseada em agente de contraste de microbolhas ajuda a visualizar e caracterizar o ambiente vascular do embrião.

Protocol

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Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.

1. Preparação de microbolhas

  1. Preparação de microbolhas para injeção
    nota: O assistente executa esta etapa quando a 'Injeção de Microbolhas (MB) em Embriões' é iniciada. Cada embrião é injetado uma vez, com o tipo de microbolhas escolhido para cada injeção a ser selecionado aleatoriamente pelo assistente, de modo que todos os tipos de microbolhas sejam distribuídos uniformemente ao longo do procedimento, mas administrados em ordem aleatória. Certifique-se de que o cirurgião esteja cego para o tipo de bolha que está sendo injetada.
    1. Determinar o volume de solução de bolha de reserva necessário para produzir uma concentração final de 1 x 10,8 MB/ml num volume de 400 μL (calcular o volume utilizando as concentrações de reserva). Alíquota do volume correspondente de solução salina para um tubo de microcentrífuga vazio.
    2. Agite suavemente o frasco de microbolhas selecionado e retire um volume excessivo (~ 50 μL maior que o calculado acima) da solução para uma seringa de 1 mL usando a agulha de 21 G. Injete as microbolhas em um tubo de microcentrífuga vazio.
    3. Pipetar o volume necessário de solução-mãe de microbolhas e adicionar à alíquota de soro fisiológico. Misture mexendo delicadamente com a ponta da pipeta.
    4. Aspire a solução diluída de microbolhas para uma seringa limpa usando a agulha de 21 G. Removendo a agulha, elimine quaisquer bolhas de ar da seringa e conecte o luer e o tubo. Empurre lentamente a solução até o final da tubulação, certificando-se de não gerar bolhas de ar.
    5. Insira a seringa em uma bomba de infusão de seringa ajustada para dispensar as microbolhas a uma taxa de 20 μL / min para um volume total de 20 μL. Conecte uma agulha de vidro puxada na extremidade do tubo. Aproxime a bomba do estágio de injeção.

2. Injeção de microbolhas em embriões

  1. Selecione e remova aleatoriamente (com colher perfurada) um embrião do prato de mídia refrigerado. Coloque em placa de dissecção localizada no estágio de ultrassom sob o estereoscópio e remova o saco vitelino e as membranas amnióticas com a pinça fina, cortando/rasgando do lado que parece menos vascularizado (o lado antimesometrial). Isso é mais facilmente conseguido perfurando uma área adjacente à região da cabeça.
    1. Corte o suficiente para remover o embrião de dentro, mas não mais. Estabilize as placas de dissecação usando pequenos pedaços de plasticina.
  2. Manobre suavemente o saco ao redor do embrião. Posicione o embrião de lado, com a placenta e os vasos umbilicais na frente. Usando os alfinetes de insetos, prenda o saco vitelino (recomenda-se 4 alfinetes) e as bordas da placenta conforme necessário para fixar no lugar. Evite grandes embarcações.
  3. Lave o embrião com PBS pré-aquecido a 45 ° C até que o embrião reviva. Identifique a veia umbilical e sua rede vascular associada. Posicione o prato de forma que a injeção possa ser feita confortavelmente.
    nota: Uma vez aquecido, o sangue no embrião começará a fluir, bombeando visivelmente na artéria umbilical. Quando o fluxo começa, as veias ficam vermelhas brilhantes, com o sangue em ambos os vasos parecendo rapidamente idêntico. Os ramos que surgem da veia umbilical geralmente se sobrepõem aos da artéria umbilical na superfície placentária.
  4. Depois que o embrião reviver, cubra-o (mas não a placenta) com gel de US pré-aquecido, certificando-se de remover delicadamente quaisquer bolhas de ar (usando a pinça fina) ao redor do embrião. Complete o prato com PBS pré-aquecido.
    nota: Fique de olho no nível de solução nas seringas PBS e gel e adicione seringas de backup ao copo de aquecimento conforme necessário.
  5. Monte a agulha de vidro em uma grande bola de plasticina na borda do prato de dissecação e insira a extremidade da agulha no PBS. Escolhendo uma veia na superfície coriônica do disco placentário, o mais longe possível do ramo principal, apare a ponta no tamanho certo com uma tesoura. A injeção é mais fácil se a ponta for cortada em um pequeno ângulo. Remova todas as bordas irregulares do vidro usando a borda da tesoura de mola.
  6. Usando a bomba de seringa, injete lentamente a solução de microbolhas a 20 μL / min na agulha de vidro até que todo o ar seja expelido da ponta da agulha e as microbolhas possam fluir livremente para o PBS. Pare a bomba e reinicie para um volume de injeção de 20 μL. Não permita que o ar entre no sistema vascular do embrião durante a injeção.
  7. Insira a ponta da agulha de vidro suavemente em uma das veias da placenta e certifique-se de que ela esteja imóvel. Afaste a cabeça do estereoscópio e posicione o transdutor acima do embrião. Inicie a imagem.

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Disclosures

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Não há conflitos de interesse declarados.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
gelo
Cloreto de sódio a 0,9% (solução salina)HospiraTelefone: 0409-7984-11
Solução salina tamponada com fosfato [1x] sigmaD85371x, sem cloreto de cálcio & cloreto de magnésio
Agente de contraste de ultrassom, alvo pronto e não direcionadoMicromarcador; VisualSonics Inc.
Gel ultrassônico (Aquasonic 100, incolor)CSP MédicoRolamento 133-1009
Balde de geloCole ParmerRK 06274-01
Plataforma de imagemVisualSonics Inc.Sistema ferroviário integrado
Fonte de luz, fibra ópticaFisher Científico12-562-36Idealmente tem braços ajustáveis
Luers (12), rosca fêmea farpada de polipropileno 1/4-28 UNFCole ParmerRolamento 45500-30
Sistema de micro-ultrassom de alta frequênciaVisualSonics Inc.Vevo2100
Agulhas, calibre 21 (1")VWR305165
Colher perfurada (Moria)Ferramentas de Belas CiênciasMC 17 10373-17
Pinos (6), minúcia anodizada preta 0,15 mmFerramentas de Belas CiênciasRolamento 26002-15
Seringas, 1 mL NormjectpescadorTelefone: 14-817-25
Bomba de infusão de seringa Bio-lince NE-1000
Pipetadores [2-20 μL, 20-200 μL, 100-1.000 μL]EppendorfPesquisa Plus ajustável
3120000038;
3120000054;
3120000062
Ponteiras pipetadoras [2-200 μL, 50-1.000 μL]EppendorfepT.I.P.S.
22491334;
022491351
tesoura
Capilares de vidro, 1 x 90 mm GD-1 com filamentoNarishigeGD-1
Extrator de agulhas de vidroNarishigePN-30
Tubos EppendorfVWR20170-577
Suportes tubulares (3)VWR82024-462
Placa quenteVWR89090-994
Seringas (10), 30 mLVWRCA64000-041
Transdutor de ultrassom, 20 MHzVisualSonics Inc.MS250

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Microbubble InjectionMouse EmbryosUltrasound ImagingContrast AgentsVascular DeliverySyringe PumpGlass NeedleEndothelial TargetingHigh frequency UltrasoundPlacental Disc

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