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Artigo de método

Estágio de fígado de camundongo com suporte de dispositivo de imagem para visualização vascular baseada em microscopia multifotônica: uma técnica de imagem assistida por dispositivo de estabilização para obter imagens multidimensionais de vasos sanguíneos no fígado de camundongo

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8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

Fonte: Rongrong, W. et al. Observação microscópica multifotônica de vasos no tecido hepático de camundongos. J. Vis. Exp. (2021)

Este vídeo descreve um procedimento de imagem para observar e estudar a dinâmica intravascular de um tecido hepático de camundongo usando microscopia multifotônica após a estabilização do órgão. A microscopia multifotônica permite a imagem de tecido biológico em alta resolução espacial in vivo.

Protocolo

Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.

1. Preparação do mouse

  1. Anestesiar o mouse
    1. Prepare pentobarbital sódico (50 mg/kg) em uma seringa.
    2. Pegue o rato (macho C57BL/6 de 8 semanas) com a mão esquerda de modo que sua barriga fique voltada para cima e sua cabeça fique mais baixa que sua cauda. Desinfete a pele abdominal com álcool 75%.
    3. Segurando a seringa com a mão direita, perfure a linha branca do abdômen com a agulha ligeiramente para o lado direito da pele em 3–5 mm. Certifique-se de que a agulha da seringa e a pele estejam em um ângulo de 45°, injete o pentobarbital lentamente na cavidade abdominal. Após o barbear, desinfete ao redor do local da incisão do camundongo 3 vezes alternadamente com álcool a 75% e solução de clorexidina.
    4. Verifique se a anestesia foi bem-sucedida pela falta de reflexo de endireitamento.
  2. Injete isotiocianato-dextrano de rodamina B na veia caudal.
    1. Prepare 100 μL de isotiocianato de rodamina B a 10 mg / mL em uma seringa.
    2. Limpe a cauda do rato com álcool 75%.
    3. Segure a cauda com a mão esquerda, segure a seringa com a mão direita com a agulha paralela à veia e injete o corante de 100 μL.
    4. Pare o sangramento com um cotonete após a injeção.
  3. Mergulhe o pelo abdominal do rato com gaze umedecida com água estéril e raspe o abdômen do rato com uma navalha, fazendo movimentos na direção do pelo. Após o barbear, desinfeta ao redor do local da incisão do camundongo 3 vezes alternadamente com álcool a 75% e solução de clorexidina.
  4. Depois de limpar uma almofada de aquecimento com álcool 75%, abra a almofada de aquecimento e coloque o mouse de costas na almofada de aquecimento para manter a temperatura corporal a 37 °C.

2. Fixando o fígado do camundongo com o quadro de imagem de órgãos do corpo

NOTA: O quadro comercial de imagens de órgãos ainda não foi lançado.

  1. Coloque uma ventosa limpa em uma posição fixa.
  2. Instale um dispositivo de imagem de órgãos (Figura 1) e limpe a almofada de aquecimento e a ventosa com álcool a 75%.
  3. Conecte a ventosa (5 mm de diâmetro) à mangueira da bomba de vácuo e ligue a bomba de vácuo.
  4. Em uma mesa estéril esterilizada com álcool 75%, desinfeta ao redor do local da incisão do camundongo 3 vezes alternadamente com álcool 75% e solução de clorexidina, depois desinfeta ao redor do local da incisão do camundongo 3 vezes alternadamente com álcool 75% e solução de clorexidina, em seguida, use uma tesoura cirúrgica para cortar 2 cm de pele da borda esternal inferior do camundongo e expor o fígado.
  5. Coloque o mouse junto com a almofada de aquecimento na base do suporte.
  6. Ajuste o acessório de imagem do órgão para que a ventosa segure o fígado. Em seguida, use uma pressão negativa de 30–35 kPa para sucção para que o fígado se prenda à ventosa (Figura 2).

3. Ajustando o microscópio de varredura a laser multifotônico

  1. Ligue o microscópio multifotônico e selecione a objetiva de 60x/1,00 W.
  2. Fixe a moldura e o mouse sob a lente objetiva.
  3. Adicione uma gota de solução salina normal que possa cobrir toda a lente, que é o centro da ventosa, e ajuste a lente objetiva para apenas tocar a solução salina normal.
  4. Clique duas vezes no ícone do computador para ligar o software do laser e ligar o interruptor. Em seguida, pressione e segure o botão liga/desliga e o obturador por 3 s.
  5. Defina o comprimento de onda para 800 nm.
  6. Inicie o software operacional do microscópio usando o computador.
  7. Para a configuração de aquisição, defina Laser 800.

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Resultados

figure-results-1
Figura 1: Quadro de imagem de órgãos do corpo.(a) Almofada de aquecimento: Mantém a temperatura corporal do mouse. (b) Suporte: Pode fornecer uma base para colocar o mouse e a posição ajustável da ventosa com botões. (c) Ventosa: É fixada pelo suporte. A pressão negativa fornecida pela bomba de pressão negativa faz com que o fígado ad...

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Seringa de 1 ml x 2 Tecnologia de Dispositivos Médicos Hunan Pinan YA0551
Almofada de aquecimento de 5 WTecnologia BiolinkOpticsBL336
75% de etanol absolutoGuangdong Guanghua Sci-TechRolamento 1.17113.023
Bola de algodão absorventeReino do Saneamento Saudável
Instrumento cirúrgico para camundongosRWD Ciências da VidaSP0001-GIncluindo tesouras e pinças
Microscopia multifotônicaOlimpoFV1200MPE
Dispositivo de imagem de órgãosTecnologia BiolinkOpticsBL336Incluindo ventosa, mangueira, bomba de pressão negativa e suporte
Isotiocianato de rodamina B-dextranosigmaR9379
Pentobarbital sódico sigma Rolamento P3761-25G
Máquina de barbearLei WaRE-3201

Etiquetas

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