Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE
1. Preparação de um inóculo
- Despeje 10 mL de caldo LB em um frasco cônico de 50 mL com uma rolha de espuma.
- Transferir uma colónia de P. aeruginosa estirpe PAO1 ou estirpe PA14 de uma placa de ágar fresco e incubar a 37 °C durante 3-4 h até que as bactérias estejam na fase intermediária
.
- Transfira a cultura de bactérias para um tubo de 50 mL e centrifugue a 3.000 x g por 5 min. Remova o sobrenadante e ressuspenda o pellet celular em PBS.
- Repita a etapa 1.3 mais duas vezes para lavar as células. Ressuspenda o pellet da célula em PBS e ajuste a densidade óptica em 600 nm para aproximadamente 0,6 usando PBS estéril como um branco.
2. Infectando o botão corneoescleral
- Remova o meio da placa de Petri e enxágue as córneas duas vezes com 1 mL de PBS estéril.
- Aperte suavemente a pinça enquanto segura a córnea no meio. Use um bisturi 10A para fazer quatro cortes - dois verticais, dois horizontais - na seção central do botão corneoescleral através da camada epitelial até o estroma subjacente.
- Coloque um molde de vidro estéril em uma placa de 6 poços com a parte larga para cima e coloque a córnea no meio do molde de vidro, com o lado do epitélio voltado para baixo. Faça o corte bem no centro da parte inferior do molde de vidro.
- ETAPA CRÍTICA: Despeje 1 mL de ágar de baixo ponto de fusão a 1% (p / v) dissolvido em DMEM para preencher completamente o molde de vidro com córnea.
- Deixe o ágar-ágar endurecer e, em seguida, inverta o molde de vidro para que o epitélio da córnea fique voltado para cima.
- Pipete 15 μL da cultura bacteriana com OD600nm = 0,6 (para P. aeruginosa, isso equivale a aproximadamente 1 x 107 unidades formadoras de colônias (UFC) em 15 μL) diretamente em uma área de corte e, em seguida, adicione 85 μL de PBS ao topo para manter o epitélio da córnea úmido. Dilua a cultura bacteriana restante e coloque em ágar para contar as unidades formadoras de colônias para o inóculo.
- Adicione 1 mL de DMEM sem antibióticos no fundo de cada poço com o molde de vidro. Incube a placa de 6 poços com os botões corneoesclerais infectados em uma incubadora umidificada a 37 ° C com 5% de CO2 por até 24 h.
- Configure a córnea de controle não infectada ao lado de cada experimento. Para configurar o controle não infectado, substitua os 15 μL de cultura bacteriana na etapa 2.6 por PBS estéril.