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Artigo de método

Cultura do Segmento Ocular Anterior: Um Método para Cultura de Córnea com Segmento Anterior do Olho Suíno

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8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

Fonte: Boice, E. N., Snider, E. J. Plataforma de Cultura de Órgãos do Segmento Anterior para Rastreamento de Lesões do Globo Aberto e Desempenho Terapêutico. J. Vis. Exp. (2021).

Neste vídeo, demonstramos o método de cultura de um segmento ocular anterior com córnea de um olho suíno. Este sistema de cultura serve como um modelo experimental para estudar lesões oculares.

Protocolo

Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.

1. Configurando segmentos anteriores em placas de cultura de órgãos

  1. Coloque um único segmento anterior (AS) em uma placa de Petri com AS invertido (copo para cima). Usando um cotonete, molhe a mídia e passe suavemente no centro da córnea para remover qualquer pigmento. Usando uma pinça para segurar o olho e o mesmo cotonete, limpe o cotonete ao redor da esclera para remover o pigmento extra.
  2. Inverta o AS e coloque em cima da parte inferior do prato sobre a região elevada, centralizando a córnea sobre a região elevada do prato. Coloque o clampanel em cima do AS recém-colocado.
  3. Coloque quatro parafusos nos orifícios correspondentes para manter o anel no lugar com o AS sob o anel. Aperte suavemente os parafusos com a chave L.
    nota: A etapa de aperto acontecerá diariamente durante todo o experimento, portanto, o objetivo do aperto inicial aqui é garantir que a mídia não vaze, evitando quebrar o anel de fixação.
  4. Com um conjunto de placas de Petri estéreis, coloque a parte superior sobre a placa e inverta a configuração. Fixe o suporte para pratos. Conecte os conectores fluídicos com anéis de vedação às portas rosqueadas na parte inferior do prato.
  5. Em um conector fluídico, conecte um cubo de agulha dobrado de 18 G 90 °, um pedaço de tubo, um cubo de agulha de 18 G, um filtro de seringa de nylon, uma válvula de três vias e uma seringa de 20 mL cheia de meio.
  6. Ao segundo conector fluídico, conecte um cubo de agulha dobrado de 18 G a 90 ° graus, comprimento do tubo, um cubo de agulha de 18 G, uma válvula de três vias e a parte cilíndrica de uma seringa estéril de 10 mL (isso atuará como um reservatório para capturar líquido e bolhas do ASOC).
  7. Com as válvulas de três vias abertas adequadamente para as seringas, empurre suavemente o meio através do sistema usando a porta do conector de fluidos identificada na etapa 1.5 para inflar o AS, encher o meio na tubulação e, eventualmente, o reservatório.
    nota: Se o meio vazar para o prato ASOC, o AS não está preso com força suficiente com o anel de fixação.
  8. Remova as bolhas empurrando suavemente a mídia para dentro do prato e invertendo o prato para empurrar as bolhas para dentro do reservatório.
  9. Coloque o prato e fique em pé. Coloque a parte inferior de uma placa de Petri embaixo dos pés do suporte, com cuidado para não enroscar no tubo.

2. Iniciando a cultura de órgãos do segmento anterior

  1. O ASOC agora está pronto para incubação. Coloque a placa ASOC na incubadora de cultura de células (37 °C, 5% CO2). Certifique-se de que a altura do prato ASOC na incubadora acima dos transdutores de pressão seja conhecida e contabilizada para calcular a pressão intraocular (PIO) com precisão.
  2. Direcione as tubulações para fora pela parte inferior da porta da incubadora a 37 °C, 5% de CO2 para que não interfiram na abertura e fechamento da porta. Conecte a seringa de 20 mL à bomba de seringa ajustada para 2.5 μL / min.
  3. Posicione a tubulação com o reservatório no instrumento do transdutor de pressão. Conecte a válvula lateral de 3 vias à configuração do transdutor de pressão enquanto flui PBS através da linha para evitar que bolhas de ar entrem nas linhas de tubulação.
    nota: Esvazie o PBS dos reservatórios após a configuração do sistema para reduzir a probabilidade de contaminação do reservatório com crescimento microbiano durante a cultura de órgãos.
  4. Inicie a coleta de dados IOP garantindo primeiro a presença de um cartão microSD para salvar arquivos de dados. Em seguida, ligue a configuração do transdutor de pressão para iniciar a coleta de dados.

3. Manutenção diária do ASOC

  1. Após 24 h de equilíbrio do ASOC, retirar as placas da incubadora de CO2 a 37 °C, 5% e colocá-las no gabinete de Biossegurança (BSC) II.
    nota: Na aquisição de dados de pressão, esses períodos de tempo parecem picos à medida que os ASOCs são removidos da incubadora (mudança de altura) e ajustados no gabinete.
  2. Verifique se há vazamentos sob cada prato na placa de Petri. Se houver, verifique se há conexões fluídicas apertadas sob o prato e reaperte se necessário. Verifique se há vazamentos no tampo do prato usando uma chave L estéril para apertar os parafusos no anel de fixação.
    nota: O tecido da esclera AS comprimirá e reduzirá a espessura em 24 h, e o anel de fixação precisará ser apertado.
  3. Aspire bem o meio do prato.
    nota: A malha trabecular está filtrando o fluido do meio que está sendo bombeado para o ASOC. Portanto, a mídia estará presente no prato ASOC ao longo das bordas.
  4. Repita as etapas 1.7 e 1.8 para remover quaisquer bolhas de ar presas.
  5. Reabasteça as seringas nas bombas de seringa, certifique-se de que as bombas de seringa estejam funcionando e confirme o alinhamento das válvulas de perfusão no ASOC. Retorne a placa ASOC para a incubadora de CO2 a 37 °C, 5%.
    nota: Idealmente, essas etapas devem ser executadas diariamente. No entanto, o uso de um volume inicial de 20 mL de meio, o volume do poço do prato ASOC e uma taxa de bombeamento de 2.5 μL/min deve ser suficiente para permitir que o sistema funcione por vários dias sem perturbações.

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
10-32 Plugue reto de policarbonato, conector de tubo com rosca machoMcMaster-Carr51525K431
10-32 Parafuso de cabeça cilíndrica, 1/2"McMaster-CarrRolamento 92196A269
Seringa de 10 mLBd302995
Seringa de 20 mLBdRolamento 302830
Anti-AntiGibco15240-096
Tecla L da extremidade esféricaMcMaster-Carr5020A25
Tubulação BD Intramedic PE 160Fisher Científico14-170-12E
Cotonetespuritano25-8061WC
Mídia DMEMATCC30-2002
FBSATCC30-2020
Pinça finaInstrumentos de precisão mundiaisRolamento 15914
GlutamamaxGibcoRolamento 35050-061
O-ring de silicone de alta temperatura, 2 mm de largura, 4 mm de diâmetro internoMcMaster-CarrRolamento 5233T47
Prego (objeto de perfuração)McMaster-CarrRolamento 97808A503
Filtros de seringa de nylonpescador09-719C
PbsGibco10010-023
Policarbonato, de três vias, torneira com trava luer machopescadorNC9593742
Agulha dispensadora de ângulo de 90 graus de aço inoxidável 18 GMcMaster-CarrRolamento 75165A81
Agulha dispensadora de aço inoxidável 18 G reta de 1/2 ''McMaster-CarrRolamento 75165A675

Etiquetas

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