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Artigo de método

Coloração Oil Red O: Uma Técnica para Coloração de Lipídios Neutros em Hepatócitos para Detecção de Esteatose Hepática In Vitro

10.3K vistas

8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

Fonte: Campos-Espinosa, A. et al., Um Modelo de Esteatose Experimental In Vitro: Cultura de Células de Hepatócitos em Meio Condicionado por Sobrecarga Lipídica. J. Vis. Exp. (2021)

Neste vídeo, demonstramos a coloração in vitro de lipídios neutros em hepatócitos para detectar esteatose hepática ou acúmulo excessivo de gordura no fígado. O excesso de gordura é acumulado nas células na forma de gotículas lipídicas. O óleo Red O é um corante lipossolúvel que se liga a lipídios neutros intracelulares nessas gotículas lipídicas. Quando observadas ao microscópio óptico, essas gotículas lipídicas intracelulares aparecem intensamente vermelhas.

Protocolo

1. Coloração lipídica com Oil-Red O

  1. Coloque uma lamínula de cultura de células em cada poço em uma placa de 24 poços.
  2. Semeie 100.000 células HepG2 por poço. Adicione 1 mL de RPMI 1640 padrão.
  3. Pré-incubar a 37 °C e 5% de CO2 por 24 h.
  4. Altere o meio RPMI 1640 padrão para o meio esteatogênico.
  5. Incubar por 24 h, 2 dias, 3 dias e 4 dias, refrescando o meio esteatogênico a cada 24 h.
  6. Após o tempo apropriado, descarte o sobrenadante.
  7. Lave com 1 mL de solução salina tamponada com fosfato (PBS). Descarte o sobrenadante.
  8. Fixe com 1 mL de paraformaldeído a 4% em PBS.
  9. Incubar durante 1 h à temperatura ambiente.
  10. Descarte o excesso de paraformaldeído.
  11. Enxágue as células com 1 mL de água destilada.
  12. Adicione 1 mL de isopropanol a 70% e incube por 5 min.
  13. Descarte o excesso de isopropanol. Uma lavagem PBS não é necessária neste momento.
  14. Adicione 1 mL de solução de óleo vermelho O e incube por 30 min.
  15. Descarte o excesso da solução de O vermelho-óleo.
  16. Enxágüe com 1 mL de água destilada.
  17. Adicione 500 μL de solução de hematoxilina. Incubar por 3 min.
  18. Descarte o excesso de solução de hematoxilina.
  19. Enxágüe com 1 mL de água destilada.
  20. Observe ao microscópio com uma ampliação de 400x (Objetiva 40x, Ocular 10x).

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Meios de cultura RPMI 1640ThermoFisher-Gibco, EUARolamento 31800-022-
Soro fetal bovino (FBS)ThermoFisher-Gibco, EUAA4766801-
Linhagem celular HepG2ATCC, EUAHB-8065Células humanas de carcinoma hepatocelular.
Incubadora umidificadaThermo Electronic Corporation, EUAModelo: 3110Temperatura (37 °C ± 1 °C), umidade (90% ± 5%), CO2 (5% ± 1%)
Microscópio invertido EclipseNIKON, JPNModelo: TE2000-S-
IsopropanolSigma-Aldrich, EUAI9030-4L-
Óleo Vermelho O KitAbcam, EUAAB150678Kit para visualização histológica da gordura neutra.
ParaformaldeídoSigma-Aldrich, EUARolamento P6148-500G-
Penicilina/estreptomicinaThermoFisher-Gibco, EUA15140-122Antibióticos 10.000 U/mL Penicilina, 10.000 μg/mL de estreptomicina
Solução salina tamponada com fosfatoThermoFisher-Gibco, EUA10010-023-
Pipetas sorológicasSarstedt, AUS86.1253.001Não pirogênico, estéril, 5 mL
Pipetas sorológicasSarstedt, AUSNº 86.1254.001Não pirogênico, estéril, 10 mL
bicarbonato de sódioSigma-Aldrich, EUAS5761-1KGPreparação de meios de cultura
Oleato de sódioSanta Cruz Biotechnology, EUAsc-215879A-
Palmitato de sódioSanta Cruz Biotechnology, EUASC-215881-
Tripsina 0,05% / EDTA 0,53 mMCorning, EUA25-052-CL-
Cluster de cultura de células de 24 poçosCorning, EUA3524Fundo plano com tampa. Cultura de tecidos tratada. Não pirogênico, poliestireno, estéril. 1/Pacote.

Etiquetas

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