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Coloração com vermelho do Nilo: uma técnica para detectar e quantificar lipídios neutros intracelulares em algas

8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Storms, Z. J. et al. Um protocolo simples e rápido para medir lipídios neutros em células de algas usando fluorescência. J. Vis. Exp. (2014)

Este vídeo demonstra um protocolo para detectar e quantificar lipídios neutros em células de algas, colorindo-as com corante vermelho do Nilo.

Protocolo

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1. Quantificação fluorométrica de lipídios neutros usando vermelho do Nilo

NOTA: Apenas 10 μl de uma suspensão de algas a 5 g/L são necessários para a leitura de fluorescência. Geralmente, o isolamento da biomassa de algas secas de 1,5 ml de caldo de cultura é mais do que suficiente. Além disso, a intensidade da luz da lâmpada no espectrofotômetro pode se degradar com o tempo. Recomenda-se incluir padrões em todos os experimentos para garantir que as variações no instrumento não adicionem erros desnecessários às medições.

  1. Preparar uma solução de vermelho do Nilo numa concentração de 10 μg/ml, dissolvida em etanol de grau álcool reagente. Conservar esta solução à escura a 4 °C.
  2. Preparar uma solução de etanol a 30% (v/v) em água desionizada e conservar a 4 °C.
  3. Preparar todas as amostras de algas com a mesma concentração de biomassa (recomenda-se 5 g/l) e da mesma forma que os padrões utilizados na medição. Faça isso suspendendo amostras pré-secas na quantidade apropriada de tampão fosfato (0,6 g/L de fosfato de potássio dibásico, 1,4 g/L de fosfato de potássio monobásico) ou ajustando a concentração de uma cultura de algas em crescimento para 5 g/L com tampão fosfato após medir a turbidez.
    NOTA: As medições realizadas em culturas de algas vivas geralmente apresentam erros maiores, dependendo da precisão da curva de calibração da turbidez. A ressuspensão de amostras secas pode exigir o uso de um homogeneizador para dispersar totalmente a biomassa.
  4. Para cada amostra, misture 80 μl da solução de etanol a 30%, 10 μl da solução de vermelho do Nilo e 10 μl de suspensão de algas em um único poço de uma placa de 96 poços. Para ter devidamente em conta a variabilidade da medição de fluorescência, realizar 5 réplicas de cada amostra.
  5. Execute uma curva de calibração de dois pontos com padrões para levar em conta as variações do dia-a-dia no instrumento e na preparação. Preparar os padrões para medição de fluorescência usando o mesmo procedimento das amostras.
    NOTA: Geralmente, dois pontos são suficientes para a recalibração do instrumento, três pontos podem ser executados para verificar a linearidade.
  6. Realize as medições de fluorescência em um espectrofotômetro leitor de placas de vários poços. As seguintes condições produziram os resultados mais consistentes:
    1. Agite a 1.200 rpm, orbite 3 mm, por 30 segundos.
    2. Incubar a 40 °C durante 10 min.
    3. Agite a 1.200 rpm, orbite 3 mm, por 30 segundos.
    4. Registre fluorescência, excitação a 530 nm, emissão a 604 nm.
  7. Converta as medições de fluorescência em teor de óleo usando os resultados dos padrões internos.

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Divulgações

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Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Pipetas descartáveis de 25 mlpescador 13-676-10K
Bulbo de pipeta pescador Telefone: 13-681-51
Tubos de microcentrífuga de 1,5 ml pescador 05-408-129
Tubos de centrifugação de 40 ml (FEP) pescador 05-562-16A Também pode usar tubos de vidro
Pipetas de vidro Pasteur pescador 13-678-20C
Nilo Vermelho sigma N3013-100MG
Etanol (grau reagente de álcool) pescador AC65109-0020
Microscópio Leica DMRXA2 (ou equivalente)Leica DMRXA2
Leitor de placas multipoços de fluorescência Sistemas de laboratório térmico Fluoroskan Ascen
Software leitor de fluorescência Sistemas de laboratório térmico Software de Ascensão 2.6
Placa de 96 poços COSTAR com fundo redondo pescador 06-443-2

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