Artigo de método

Coloração de eosina de amostras de tecidos moles: um procedimento baseado em eosina para coloração de rim de camundongo inteiro para visualizar microestruturas de tecido específicas

8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Busse, M. et al., 3D Imagem de amostras de tecidos moles usando um método de coloração específico de raios-X e tomografia computadorizada nanoscópica.J. Vis. Exp.(2019)

Este vídeo demonstra o procedimento para a acidificação de todo o rim de camundongo com fixação seguida de coloração com Eosina Y. Este método de coloração de eosina específico do citoplasma ajuda a visualizar e identificar estruturas anatômicas no tecido.

Protocolo

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Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.

1. Protocolo de coloração de eosina

  1. Para fixar amostras de tecidos moles, encher um tubo de centrífuga de 50 mL com uma solução fixadora contendo 9,5 mL de solução de formaldeído (FA) a 4% (v/v) e 0,5 mL de ácido acético glacial (AA).
    nota: Prepare a solução de AG a partir de uma solução de AG isenta de ácido a 37% estabilizada com aproximadamente 10% de metanol. Dilua ainda mais a solução de FA com solução salina tamponada com fosfato de Dulbecco (DPBS). Escolha a SPB sem cálcio e magnésio. Manter a solução diluída de AG por um período não superior a um mês. Durante a acidificação, o pH da solução fixadora muda de neutro para aproximadamente 3,
    cuidado: Como a AF é tóxica aguda para órgãos, corrosiva e cancerígena, o uso de um exaustor é obrigatório e deve ser usado equipamento individual de proteção adequado.
    1. Adicione a amostra de tecido mole recém-removida a um tubo de centrífuga de 50 mL e leve à geladeira o tubo de centrífuga de 50 mL por 24-72h.
      nota: O protocolo pode ser pausado aqui.
    2. Lave a amostra de tecido mole com solução de DPBS por 1h.
  2. Para corar a amostra de tecido mole fixada (por exemplo, um rim de camundongo inteiro), coloque o tecido mole em 2 mL de solução de coloração Y de eosina e incube a amostra por 24 h. Mantenha a amostra em uma placa de agitação horizontal para um balanço suave (cerca de 60 rpm) durante o processo de incubação.
    nota: A solução de coloração Y de eosina tem uma concentração de 30% (p / v) em água destilada. Escolha o volume da solução de coloração de forma que a amostra seja completamente coberta pela solução de coloração e deixe a amostra se mover livremente dentro do recipiente de amostra. O tempo de incubação pode diferir para outras amostras e deve ser ajustado em conformidade.
  3. Após a coloração, remova a amostra de tecido mole cuidadosamente do recipiente de amostra.
    1. Remova cuidadosamente o excesso de agente de coloração com papel de seda de celulose.
    2. Coloque a amostra de tecido mole em um recipiente de amostra cônico acima de uma fase de vapor de etanol para armazenamento e uso posterior.
      nota: O recipiente de amostra cônico deve sempre conter algumas gotas de etanol a 70% (v/v) na parte inferior do tubo para manter a amostra de tecido mole úmida e evitar artefatos.

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Divulgações

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Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Tubo de centrífuga de 50 ml da FalconVWRRolamento 734-0453
Solução de formaldeído, 37%Carl RothCP10.2Sem ácido, estabilizado com ~ 10% de MeOH
Ácido acético glacialAlfa Aesar36289.AP
Sal dissódico de eosina YSigma-AldrichE4382Certificado pela Comissão de Manchas Biológicas
Solução salina tamponada com fosfato (PBS)MerckL1825Formação de Dulbecco, sem cálcio e magnésio
Tubos de amostra da NalgeneCarl RothATK5.1
Agitador de balanço ST5gatoNº 60281-0000
Papel tissue de celuloseVWR115-0600
Tubos de microcentrífuga da EppendorfVWR211-2120Fechadura de segurança, 2,0 ml
Etanol absoluto por Baker analisadoVWR80252500
Placa de Petri by Sterilin
Fórceps, por USBECK LaborgeräteVWR232-0096
Pipeta de pasteur em material plásticoCarl RothEA68.1Graduado, 1 ml

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