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Coloração H&E de seções de tecido embebidas em parafina: uma técnica de coloração diferencial para visualizar seções de tecido hepático usando a combinação de corantes de hematoxilina e eosina

July 8th, 2025

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Abstract

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fonte: Ellis, J. L et al., Análises histológicas de lesão hepática alcoólica aguda em peixe-zebra. J. Vis. Exp. (2017).

Neste vídeo, descrevemos uma técnica de coloração de hematoxilina e eosina de cortes de tecido embebidos em parafina para estudar sua histologia. O procedimento inclui a desparafinização do tecido seguida de coloração das células do tecido. Após a coloração, o núcleo aparece distintamente azul e as proteínas no citoplasma exibem coloração rosa.

Protocol

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Preparação de soluções de coloração

  1. Filtre a solução estoque de hematoxilina Harris para remover quaisquer sólidos que tenham precipitado.
  2. Dobre um filtro de café ao meio para que o filtro crie um cone. Abra o painel lateral para que o líquido passe pelo filtro, permitindo que quaisquer detritos sejam capturados.
  3. Coloque o filtro dentro de um funil e o funil em uma garrafa de mídia de vidro. Despeje gradualmente a hematoxilina de estoque através do filtro.
    cuidado: A hematoxilina é perigosa em caso de contato com os olhos, ingestão e inalação. Sempre use jaleco e luvas e manuseie a solução de estoque com um capuz químico.
  4. Prepare 0,05% de HCl adicionando 125 μL de 12 N HCl a 250 mL de ddH2O.
  5. Prepare a mistura de solução de eosina Y-floxina B combinando 25 mL de eosina Y a 1% (aq), 2,5 mL de floxina B a 1% (aq), 195 mL de etanol a 95% e 1 mL de ácido acético glacial em um frasco de vidro. Misture bem girando e guarde na RT
    cuidado: A eosina Y é perigosa no caso de contato com os olhos, ingestão e inalação. Sempre use jaleco e luvas e manuseie a solução de estoque com um capuz químico.
  6. Prepare etanol a 2% adicionando 2 mL de álcool etílico puro a 98 mL de água de ovo.
    cuidado: O álcool etílico é irritante para os olhos. Sempre use equipamento de proteção adequado ao manusear álcool etílico. Também é inflamável e deve ser manuseado e armazenado de acordo.
    NOTA: Prepare etanol fresco a 2% de cada vez antes de realizar o tratamento agudo com etanol.

2. Coloração de hematoxilina e eosina de cortes de parafina

  1. Desparafinize as lâminas mergulhando-as em xileno 100% por 15 min; troque-as por xileno 100% fresco por mais 15 min.
  2. Reidrate as lâminas mergulhando-as na seguinte série de etanol graduado até que o líquido escorra limpo das lâminas. Para cada solução, mergulhe de 8 a 10 vezes, 2 s por mergulho: 100% etanol, 100% etanol, 95% etanol, 95% etanol, 70% etanol, 50% etanol, 30% etanol e água deionizada.
    nota: O protocolo pode ser interrompido aqui e os slides podem ser deixados em RT na água por várias horas. Se necessário, as lâminas podem ser armazenadas a 4 °C em água O/N.
  3. Coloque as lâminas em hematoxilina Harris 100% filtrada por 4 min. Transfira-as imediatamente de volta para o recipiente com água deionizada. Passe água deionizada no canto traseiro do recipiente mais distante das seções. Esvazie o recipiente periodicamente até que a água não fique mais roxa.
    nota: Não deixe a água correr diretamente para os escorregadores, pois as seções podem sair dos escorregadores.
  4. Verifique rapidamente a intensidade da hematoxilina em um microscópio de dissecação usando luzes pescoço de ganso; não deixe as lâminas secarem. Se a mancha atingiu a intensidade desejada, continue para a próxima etapa. Se a cor não estiver escura o suficiente, coloque as lâminas em hematoxilina 100% por 1 min e repita as lavagens com água antes de verificar novamente.
    nota: A hematoxilina precisa ser escura o suficiente para que a cor não seja perdida durante a coloração com eosina. No entanto, se a coloração de hematoxilina for observada no citoplasma, as seções serão supermarcadas.
  5. Mergulhe as lâminas duas vezes em HCl 0,05% e transfira-as imediatamente de volta para o recipiente com água deionizada limpa. Esvazie a água e encha novamente o recipiente com água duas vezes.
  6. Transfira as lâminas para etanol a 95% por 30 s e, em seguida, transfira-as para um novo recipiente com etanol a 95% por 30 s.
  7. Coloque as lâminas na solução de eosina Y-Phloxine B por 2 min. Transfira as lâminas de volta para o recipiente anterior de etanol a 95% e verifique rapidamente a intensidade da cor sob o microscópio de dissecação. Se a coloração for suficiente, prossiga para a próxima etapa. Caso contrário, retorne à solução de eosina por 30 s, verifique novamente e repita conforme necessário.
    nota: A coloração de eosina suficiente é rosa brilhante e aparece em contraste distinto com a coloração de hematoxilina. Certifique-se de limpar qualquer solução da parte de trás das lâminas ao verificar ao microscópio para que nenhuma cor falsa seja observada. Como a eosina é composta de etanol a 95%, períodos prolongados de tempo em etanol a 95% durante a verificação da intensidade da cor podem liberar um pouco da cor.
  8. Transfira as lâminas para 100% de isopropanol por 15 s. Substitua por 100% de isopropanol novo e coloque as lâminas de volta no isopropanol por mais 15 s. Repita este processo para um total de 6 lavagens de isopropanol.
    cuidado: O isopropanol é um irritante ocular e respiratório. Certifique-se sempre de usar equipamento de proteção adequado e evitar respingos. Também é altamente inflamável e deve ser armazenado e manuseado de acordo.
    nota: Para economizar em reagentes, descarte apenas a primeira lavagem de isopropanol (rosa). Mantenha as outras cinco soluções de lavagem em frascos numerados de 1 a 5, para serem reutilizadas na próxima coloração. Ao reutilizar lavagens, comece com o frasco numerado "1" e descarte após o uso. Depois de usar a lavagem "2", despeje-a na garrafa "1" e assim por diante. A lavagem final deve ser sempre isopropanol fresco.
  9. Coloque as lâminas em xilenos 100% por 3 min. Remova uma lâmina de cada vez e coloque uma lamínula.
    1. Adicione meio de montagem suficiente para cobrir as seções e mergulhe-as em 100% xileno.
      nota: Esta etapa suavizará a superfície do meio de montagem e removerá quaisquer bolhas.
    2. Aplique uma lamínula na parte inferior do slide.
      nota: O meio de montagem deve puxar o slide para a posição. Se a lamínula não estiver reta ou completamente assentada, bata suavemente no lugar.
    3. Seque qualquer excesso de meio de montagem em uma toalha de papel até que apenas uma linha fina seja vista. Mergulhe um lenço de papel no xileno e limpe a parte de trás da lâmina para remover qualquer meio que tenha pingado. Coloque o slide em uma superfície resistente, mas móvel, como um pedaço de papelão. Aplique uma lamínula em todos os slides restantes da mesma maneira. Deixe o xileno evaporar no exaustor por 10 min.
      nota: Quaisquer materiais contaminados com xileno devem ser removidos e descartados em um recipiente lacrado no capô para evitar que quaisquer vapores escapem.
  10. Deixe o meio de montagem endurecer em RT O/N.

3. Imagem e armazenamento de lâminas coradas

  1. Seções de imagem em um microscópio invertido composto.
    nota: As lâminas podem ser mantidas em temperatura ambiente indefinidamente.

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Disclosures

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Não há conflitos de interesse declarados.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Etanol 95% (EtOH) Decon Labs, Inc.Nº 2801inflamável
Slides carregados Fisher Científico 12-550-16
Microscópio de dissecação Leica BiosystemsLeica Mz 95
Conjunto de coloração de eosina-floxina Fornecimento para recém-chegados1082UMA
etanol Sigma-AldrichE7023inflamável
Hematoxilina de Harris Poly Scientific R&D Corp. S212 irritante
Ácido clorídrico (HCl) Fisher CientíficoResposta 144 irritante
Isopropanol Fornecimento para recém-chegados12094Einflamável
XilenosFisher Científico X3S-4irritante

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