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Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.
1. Preparação de amostras para microdissecção por captura a laser
- Prepare soluções para coloração e desidratação.
- Coloque 45 mL de etanol a 80% em cada um dos três tubos de centrífuga de 50 mL no gelo. Rotule-os como # 1, # 2 e # 3. Diluir o etanol com água isenta de RNase/DNase.
- Coloque 45 mL de etanol a 95% em um tubo de centrífuga de 50 mL no gelo.
- Coloque 45 mL de etanol 100% em um tubo de centrífuga de 50 mL no gelo.
- Colocar 45 mL de xileno em um tubo de centrifugação de 50 mL em temperatura ambiente.
CUIDADO: O xileno deve ser usado em uma capela de exaustão.
- Descongele brevemente uma lâmina de membrana PEN colocando-a contra uma mão enluvada e, em seguida, lave duas vezes por 30 s cada em 45 mL de etanol a 80% (# 1 e # 2) com agitação em tubos de centrífuga de 50 mL para remover o OCT.
NOTA: É importante remover a OCT antes da coloração, para evitar que a OCT solta durante a coloração obscureça as seções. O fórceps pode ser usado para facilitar a remoção da OCT que não é lavada por agitação.
- Coloque o slide em uma folha de papel alumínio. Pipete 0,8 mL de violeta de cresil a 0,1% em etanol a 50% na lâmina e core por 30 s. Lave a lâmina em 45 mL de etanol a 80% (# 3) por 30 s e, em seguida, desidrate por passagem por 30 s cada através de 45 mL de etanol a 95%, etanol a 100% e xileno em tubos de centrífuga de 50 mL.
- Fique em pé em um limpador de tarefas delicadas por 5 min para drenar o xileno e as seções secas.