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Coloração Cresyl Violet de Seções de Tecido: Um Procedimento de Coloração para Visualizar Cartilagem e Ossos em Seções de Embriões de Camundongos Congelados

8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Wu, Meng, et al., Microdissecção por captura a laser de cartilagem e osso embrionário de camundongo para análise de expressão gênica. J. Vis.(2019)

Este vídeo descreve o procedimento de coloração com violeta de cresil para visualizar ossos e cartilagens em cortes coronais de embriões de camundongos congelados. Essa técnica de coloração ajuda a diferenciar ossos e cartilagens com cores distintas dos tecidos circundantes.

Protocolo

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Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.

1. Preparação de amostras para microdissecção por captura a laser

  1. Prepare soluções para coloração e desidratação.
    1. Coloque 45 mL de etanol a 80% em cada um dos três tubos de centrífuga de 50 mL no gelo. Rotule-os como # 1, # 2 e # 3. Diluir o etanol com água isenta de RNase/DNase.
    2. Coloque 45 mL de etanol a 95% em um tubo de centrífuga de 50 mL no gelo.
    3. Coloque 45 mL de etanol 100% em um tubo de centrífuga de 50 mL no gelo.
    4. Colocar 45 mL de xileno em um tubo de centrifugação de 50 mL em temperatura ambiente.
      CUIDADO: O xileno deve ser usado em uma capela de exaustão.
  2. Descongele brevemente uma lâmina de membrana PEN colocando-a contra uma mão enluvada e, em seguida, lave duas vezes por 30 s cada em 45 mL de etanol a 80% (# 1 e # 2) com agitação em tubos de centrífuga de 50 mL para remover o OCT.
    NOTA: É importante remover a OCT antes da coloração, para evitar que a OCT solta durante a coloração obscureça as seções. O fórceps pode ser usado para facilitar a remoção da OCT que não é lavada por agitação.
  3. Coloque o slide em uma folha de papel alumínio. Pipete 0,8 mL de violeta de cresil a 0,1% em etanol a 50% na lâmina e core por 30 s. Lave a lâmina em 45 mL de etanol a 80% (# 3) por 30 s e, em seguida, desidrate por passagem por 30 s cada através de 45 mL de etanol a 95%, etanol a 100% e xileno em tubos de centrífuga de 50 mL.
  4. Fique em pé em um limpador de tarefas delicadas por 5 min para drenar o xileno e as seções secas.

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Divulgações

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Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Tubo de centrífugaThermoFisher Scientific339653Tubos de centrífuga cônicos estéreis de polipropileno, 50 mL
Acetato de violeta cresilSigma-AldrichC5042
Limpador de tarefas delicadasThermoFisher ScientificTelefone: 06-666
água destiladaInvitrogenRolamento 10977-015Livre de DNase/RNase
Etanol absoluto (200 provas)ThermoFisher ScientificBP2818Grau de biologia molecular
Lâmina de membrana PEN de vidroLeica Microsystems11505158
Composto de OCTCiências da Microscopia EletrônicaRolamento 102094-106
Agente de descontaminação RNaseSigma-AldrichR2020Agente descontaminante RNase para limpeza de superfícies
xilenoSigma-Aldrich214736

Reimpressões e permissões

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Etiquetas

Cresyl Violet StainingTissue Section StainingFrozen Mouse EmbryoCartilage VisualizationBone VisualizationEthanol DehydrationXylene ClearingLight MicroscopyProteoglycan StainingPhosphate Group Binding

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