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Coloração hFTAA de depósitos amilóides: uma técnica para visualizar fibrilas amilóides usando corante à base de oligotiofeno para imagens de fluorescência em seções de tecido

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8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

Fonte: Nyström, S. et al., Imaging Tecidos amilóides corados com oligotiofenos conjugados luminescentes por microscopia confocal hiperespectral e imagem de fluorescência ao longo da vida. J. Vis. Exp. (2017).

Este vídeo descreve uma técnica para corar amilóides em seções de tecido usando um corante oligotiofeno conjugado luminescente - ácido heptamer-formil tiofeno acético ou hFTAA - para imagens de fluorescência. Os amilóides são agregados de proteínas anormais ricos em β folhas. Sua detecção em amostras de tecido é útil no diagnóstico e tratamento de doenças associadas à amilóide ou proteinopatias.

Protocolo

1. Solução de coloração LCO

NOTA: Se o hFTAA for adquirido de um fornecedor comercial, siga as instruções do fornecedor em vez da seção 1.

  1. Ressuspenda o hFTAA liofilizado em NaOH 2 mM para preparar uma solução estoque de 1 mg / mL. Conservar a massa num frasco para injetáveis de vidro a 4 °C. O estoque pode ser armazenado por um ano.
  2. No dia da coloração, prepare uma solução de trabalho diluindo o estoque 1:10.000 em solução salina tamponada com fosfato (PBS).

2. Preparação de Amostras de Tecido

NOTA: Muitos tipos de tecido podem ser visualizados usando hFTAA como marcador amilóide. Veja a Figura 1 para exemplos. hFTAA é sensível à conformação agregada. A coloração deve, portanto, ser realizada preferencialmente em agregados ininterruptos sem exposição de epítopos. A qualidade espectral ideal é alcançada se a fixação do tecido for mantida no mínimo. Portanto, o material fresco congelado, suavemente fixado em etanol no momento da coloração, é preferido. No entanto, é possível detectar depósitos de amilóide também no tecido que foi fixado com, por exemplo, formalina. A hFTAA geralmente penetra bem no tecido. Selecione uma espessura de amostra compatível com a técnica de imagem pretendida.

  1. Se forem usadas seções fixadas em formalina e embebidas em parafina, desparafinizadas em xileno durante a noite. Mergulhe as seções em banhos consecutivos de etanol 99%, etanol 70%, dH2O e PBS, 10 min em cada. Deixe as seções de tecido secarem em condições ambientais. Cuidado: O xileno é sempre manuseado em uma capela de exaustão química. O xileno e outros solventes orgânicos são prejudiciais.
    1. Descongele as criossecções em temperatura ambiente. Fixe as seções de tecido em formalina a 10% durante a noite e reidrate-as mergulhando-as em banhos consecutivos de etanol a 99%, etanol a 70%, dH2O e PBS, 10 min em cada. Deixe as seções de tecido secarem em condições ambientais.
  2. Adicione gotículas da solução de trabalho hFTAA (aproximadamente 200 μL) às seções de tecido para cobri-la. A gota deve permanecer no lugar por tensão superficial. Incube por 30 min em temperatura ambiente para coloração.
  3. Enxágue a solução de coloração com 500 μL de PBS usando uma pipeta e, em seguida, mergulhe a lâmina no banho de PBS por 10 min. Deixe a seção secar em condições ambientais.
  4. Monte usando o meio de montagem de fluorescência. Deixe o meio de montagem assentar durante a noite.
    NOTA: A coloração hFTAA pode ser realizada em combinação com outros métodos de coloração, como imunofluorescência, marcadores específicos de células ou organelas, etc. Para realizar a cocoloração, execute o protocolo de coloração completo de sua escolha e adicione a coloração hFTAA no final, a partir da etapa 2.2. Veja a Figura 2 para exemplos. Para imunofluorescência, selecione preferencialmente um anticorpo secundário que seja excitado a 640 nm ou mais. Nesta faixa de comprimento de onda, hFTAA não absorve e, portanto, não pode ser excitado e não fluoresce. Isso garante que nenhum sangramento seja observado entre hFTAA e anticorpo.

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Resultados

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Figura 1: Vários tipos de tecidos e agregados de proteínas mostrando coloração h-FTAA de: (a) corpos de Mallory-Denk consistindo de agregados de queratina em um fígado (contracorados com DAPI), (b) inclusões r positivas para p62 no tecido muscular esporádico de miosite de corpos de inclusão (s-IBM), (c) amilóide do polipeptídeo amilóide das ilhotas no pâncreas humano, (d

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
hFTAA/Amytracker545 Ebba Biotech
Meio de montagem de fluorescene DakoTecnologias Agilent GM304
LeicaDM6000 Leica
Lúmen 200 prévio
Sistema Spectraview Imagem espectral ASI

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