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Encapsulation título celular por Droplets

DOI:

10.3791/316

October 1st, 2007

In This Article

Protocol

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NIH3T3 preparação células:

Células de A. de ejeção

  1. Trypsinize células, então diluir 1:1 com media de células, e transferência de um frasco T75 para um tubo Falcon 15 mL
  2. Spin down células em um pellet por centrifugação, aspirar o sobrenadante e lavar as células com DPBS
  3. Spin down células em uma pelota de novo, e aspirar o sobrenadante
  4. Ressuspender as células em meios de comunicação
  5. Determinar a densidade de células com hemocitômetro (~ 200 X 10 4 células / mL por frasco T75)
  6. Solução da célula centrífuga, aspirar o sobrenadante e ressuspender em quantidade adequada dos meios de comunicação para diferentes concentrações de células

B. Célula de ejeção

  1. Vortex células antes de usar para a ejeção
  2. Transferir 200 mL da solução de célula em seringa
  3. Definir o modo apropriado no gerador de pulso
    1. Para ejetar gotículas de única e gotículas múltiplas (rajadas), grupo gerador de pulso para "E. BUR" modo
    2. Para a ejeção de gotas contínuo, grupo gerador de pulso para "NORM" modo de
  4. Alterar as configurações de sinal
    1. Conjunto de alto nível e baixo nível de tensão de saída: LIS a 5 V e LOL para 0 V e certifique-se o "LIM" LED está ligado
    2. Definir como um sinal de pulso quadrado
    3. Alterar a quantidade de tempo que a válvula solenóide é aberta para a ejeção de gotas, alterando o valor para "WID" ou mudar ciclo ("dever")
    4. Mudar a freqüência de ejeção, alterando o valor para "PER"
    5. Alterar o número de gotículas ejetado em uma explosão, alterando o valor para "BUR"
  5. Solução da célula ejetar em substrato preparado para imagens com microscópio

Coloração C.

  1. Compõem solução corante com 0,5 mL calceína-AM e 2 homodímero de etídio mL por mL de DPBS
  2. Substrato preparado mergulhe em solução corante
  3. Deixar a amostra para incubar por 10 minutos a 37 ° C antes de imagem

Validação de experiência

  1. Em um microscópio Nikon Eclipse TE U-2000 Fluorescent
    1. Software ponto avançado (Diagnostics, Inc.)
    2. Live / Morto Assay

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Disclosures

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Os autores não têm nada a divulgar.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
FluorescenteNikon InstrumentsEclipse TE-2000 U
célula de válvula solenóideFrequência de operação: 1 KHz, 30psi, 50nl~0.5ul. Driver de válvula 12V: corrente de acionamento de 2,5 Amp Tanque
de ar portátil de 5 galõesColemanPowermate CT5Ar pressurizado: 30 PSI
Reguladores deMarsh Bellofram
Geradorde pulso HP8112AGeração de frequência de atuação: 50 MHz
Newmarkde estágiocom motor de passo: estágio xy de curso de 6 polegadas (NLS4-6-25), estágio z de curso de 2,5 polegadas (NLS4-2,5-25), controlador de 3 eixos (NSC-G3), resolução de 0,1um
NIH 3T3Fibroblastosde linha
TripsinaSolução a 0,05%
NIH 3T3 meio
DPBSBuffer
T75Frascos de cultura
Tubos cônicos de plástico15 ml, para cultura de tecidos
Microscópio Ejetor de pressão Sistemas XYZ celularcelularde tecidos

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Cell EncapsulationDroplet PrintingCell PrintingSolenoid ValveMotorized StageCell DensityHemocytometerLive Dead AssayCalcium AMEthidium Homodimer

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