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Research Article
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
Descrevemos aqui um baixo custo, rápida, o procedimento de fixação controlada e uniforme utilizando paraformaldeído a 4% perfundidos através do sistema vascular: através do coração do rato para se obter o melhor possível a preservação do cérebro.
O objetivo da fixação é rápida e uniformemente preservar o tecido em um estado de vida semelhante. Embora a colocação do tecido directamente em obras fixadoras bem para pequenos pedaços de tecido, os espécimes maiores, como o cérebro intacto representar um problema para a fixação de imersão porque o fixador não atinge todas as regiões do tecido com a mesma taxa 5,7. Muitas vezes, muda em resposta a hipoxia começar antes do tecido pode ser preservada 12. A vantagem de perfusão fixador diretamente através do sistema circulatório é que a química pode rapidamente chegar a todos os cantos do organismo, utilizando a rede natural vascular. A fim de utilizar o sistema circulatório de forma mais eficaz, deve ser tomado cuidado para coincidir com as pressões fisiológicas 3. É importante notar que as pressões fisiológicas são dependentes das espécies utilizadas. Técnicas para a fixação de perfusão variam, dependendo do tecido a ser fixado e como o tecido será processado fixação seguinte. Neste vídeo, Nós descrevemos um baixo custo, rápida, o procedimento de fixação controlada e uniforme utilizando paraformaldeído a 4% perfundidos através do sistema vascular: através do coração do rato para se obter o melhor possível a preservação do cérebro para imuno-histoquímica. A principal vantagem desta técnica (vs. alimentado pela gravidade sistemas) é que o sistema circulatório é utilizado mais eficazmente.
1. Preparar Fixador
(Veja tabela de Fixação e Buffers.)
2. Prepare Buffers de perfusão
(Veja tabela de Fixação e Buffers.)
3. Prepare Aparelhos e Anestesia
4. Cirurgia de perfusão

Clique aqui para ver maior figura .
5. Perfusão
6. Dissecção 4,11
7. Pós-fixação e armazenamento
8. Os resultados representativos
Um indicador do sucesso inicial da perfusão é a compensação das extremidades, como o nariz, orelhas e patas e órgãos internos, tais como a glândula timo e fígado (IHC Mundial).Inspeção bruta do cérebro revela o vazio vaso sanguíneo do sangue (branco a aparência amarelo-claro). Este será também verdade dentro das seções de tecido destinar para a coloração e imuno-histoquímica. O indicador final do resultado da perfusão é a condição de a ultraestrutura no tecido. 1,6,7,8
| Preparar Fixador: |
| Prepare estoque paraformaldeído 8% |
|
| Preparar 0,2 M tampão fosfato de sódio, pH 7,4 |
|
| Prepare fixadora paraformaldeído 4% |
|
| Prepare Perfusão e buffers de armazenamento: |
| Preparar tampão fosfato, pH 7,4 Solução Salina |
|
| HEPES Hanks Solution (HBHS) com pH 7,4 Sódio Azida |
|
Tabela 1. Preparação de fixador e tampões.

Figura 1.

Figura 2. Preparação da perfusão do Aparelho I. Comece com a linha de fixador. Lave o tubo de bolhas de ar e encha com tampão pela rápida expulsão e retirada do tampão para a seringa e através da linha. Fechar a válvula na extremidade da agulha fora. Coloque a linha fixador para a garrafa fixador sem a introdução de bolhas de ar.

Figura 3. Preparação da perfusão do Aparelho II. 1. Abrir a válvula na extremidade da agulha. 2. Gire a válvula tampão (azul) para a posição para o fluxo. 3. Lave o tubo de bolhas de ar e encha com tampão pela rápida expulsão e retirada do tampão com a seringa. 4. Fechar a válvula na extremidade da agulha. Coloque tubo dentro da garrafa buffer. Pressão de teste para garantir que o sistema é selado corretaly por bombeamento até o bulbo manômetro e observando o medidor. O aparelho está agora pronto para o procedimento de perfusão.

Figura 4. Aparelho de perfusão em posição para entrega tampão.

Figura 5. Perfusão Cirurgia I. a) Faça uma incisão lateral através do tegumento e da parede abdominal. b) Fazer uma incisão no diafragma e atravessam o diafragma expor o coração. Fazer cortes paralelos em ambos os lados das costelas até a clavícula. c) fixar a extremidade do esterno com o hemostato e colocar o hemostato sobre a cabeça.

Figura 6. Perfusion Cirurgia II. a) Passa a agulha de perfusão através do ventrículo corte na aorta ascendente. b) Assegurar operfusão agulha utilização um conjunto de hemostats para reprimir o coração. Um segundo conjunto de uma hemostato modificado pode também ser utilizado para fixar a aorta em torno da ponta da agulha para evitar fugas. Utilizando uma tesoura de íris fazer uma pequena incisão para a extremidade posterior do ventrículo esquerdo.

Figura 7. Perfusion com bomba tampão a lâmpada manómetro para criar pressão na linha. Abra a válvula (1) e anexar ao cubo da agulha. É fundamental certificar-se há bolhas de ar são introduzidas. Bombear a lâmpada manómetro para uma pressão de 80 mm Hg e manter esta pressão ao longo do período de infusão de tampão.

Figura 8. Perfusion com fixador Uma vez tampão está quase terminada (200 ml) alternar a válvula de tampão (1) para permitir o fixador de fluxo. A pressão pode ser gradualmente aumentada até ummáximo de 130 mm Hg.

Figura 9. I. Dissecção a) retirar a cabeça, usando um par de tesoura. b) fazer uma incisão na pele ao longo da linha média do pescoço para o nariz e expor o crânio. c) aparar o músculo do pescoço restante de modo que a base do crânio é exposta. Segure a cabeça para que a grande abertura na superfície do crânio (forame magno) é acessível. Introduza cuidadosamente a ponta afiada de um par de íris tesoura para o forame magno e fazer um corte. Repita a mesma manobra para o lado contralateral. Utilize os fórceps para limpar o crânio em torno do cerebelo.

Figura 10. Dissecção II. a) deslize cuidadosamente a tesoura ao longo da superfície interna do crânio. Levante a ponta como você está cortando para evitar danos ao cérebro. Repita a mesma paralado oposto. Use fórceps casca do crânio para longe do cérebro. b) ilustração com o crânio removido eo cérebro exposto. c) Utilização de uma espátula para cortar as lâmpadas olfactivas e conexões nervosas no local mais anterior do cérebro. Cuidadosamente orientar a ponta de espátula ao longo do lado de baixo do cérebro para cortar as ligações para a facilidade de remoção. Remover o cérebro e colocá-lo num frasco de fixador.
Os autores não têm nada a revelar.
Descrevemos aqui um baixo custo, rápida, o procedimento de fixação controlada e uniforme utilizando paraformaldeído a 4% perfundidos através do sistema vascular: através do coração do rato para se obter o melhor possível a preservação do cérebro.
Este trabalho foi financiado pelo Centro de Tecnologia de Comunicação Neural (CNCT), um Centro de Recursos P41 financiado pelo Instituto Nacional de Biomedical Imaging and Bioengineering (NIBIB, P41 EB002030) e apoiado pelo National Institutes of Health (NIH).
| Equipamento | Companhia | Número de catálogo | Comentários |
| Anestesia: | |||
| Cetamina / xilazina (mistura anestésica pode variar por laboratório / instituição) | Ketaset | NDC 0856-2013-01 | Frasco 10 ml |
| Cirurgia: | |||
| Ponta da agulha, 27 GA x 1,25 " | Serviços material | 25251 | |
| Grandes Blunt / sem corte tesoura curva (aprox. 14,5 cm) | Belas Ferramentas Ciência | 14519-14 | |
| Reta para íris tesoura | Belas Ferramentas Ciência | 14058-11 | |
| Belas Ferramentas Ciência | 11027-12 | ||
| Par de multa (zu) pinça | Belas Ferramentas Ciência | 11050-10 | |
| 1 pinça hemostática - grandes curvas ou retas (~ 19 cm) | surgicaltools.com | 17.21.51 | |
| 2 padrão pinça hemostática - em linha reta serrilhada (14 cm) | Belas Ferramentas Ciência | 13013-14 | |
| 1 hemostat modificado (com calibre 15 buracos arquivado através da ponta) | Belas Ferramentas Ciência | 13013-14 | |
| Calibre 15 com agulha romba ou azeite de ponta (agulha de perfusão) | Fisnar | 5601137 | |
| Perfusão: | |||
| Sistema de hiperperfusão ou equivalente </ Td> | |||
| Tamponada com fosfato, pH 7,4 salina | |||
| Paraformaldeído a 4% em tampão fosfato 0,1 M, pH 7,4 | |||
| Copo raso ou bandeja de plástico, cerca de 10 "x 10" | |||
| Gelo picado | |||
| Banho de água (37 ° C) | |||
| Cronômetro | |||
| 50 ml da seringa | Medline Industries | NPMJD50LZ | |
| Dissection: | |||
| Pari do padrão da Sharp / tesoura cega retas (~ 12 cm) | Belas Ferramentas Ciência | 14054-13 | |
| Medianas fórceps curvas ou retas (14-16 cm) ou alicates crânio remoção óssea | Belas Ferramentas Ciência | 16020-14 | |
| Reta para íris tesoura (~ 9 cm) | Belas Ferramentas Ciência | 14058-11 | |
| Micro-espátula (2 duplos "extremidades planas, um arredondado, uma reduzida para 1/8") | Belas Ferramentas Ciência | 10091-12 | |
| Pós-fixação e armazenamento: | |||
| 50 frasco de vidro ml | |||
| 40 ml de HEPES-Tamponada Hanks Solução (HBHS) com azida de sódio (90mg / l) |