O perfurador de biópsia de pele obtida usando o procedimento padrão 3 (por exemplo, obtidos com instrumento redondo 4mm Visipunch) deve ser mantido em DMEM completo de 20% de FBS em meio de gelo. Assim que a amostra chegou no laboratório, o processo de biópsia o mais rapidamente possível.
1. Preparação da Pele da biópsia
PASSOS 1,1-1,3 devem ser realizados DENTRO DE UM GABINETE DE BIOSSEGURANÇA
- Prepara-se por avanço: Adicione 1 ml de gelatina a 0,1% a cada poço de uma placa de 6 poços. Colocou o prato de lado por 30-60 min. Aspirar a solução de gelatina e adicionar 800 mL de DMEM/20% de FBS completa meios a cada poço. Assegure-se que toda a superfície do poço é coberto com meios de comunicação.
- Inverter a tampa de uma estéril 10 centímetros prato de cultura de tecido e adicionar 1,5 ml de DMEM / 20% de FBS meios para o meio da tampa e espalhar-se a queda de meios de comunicação com a ponta da pipeta serológica.
- Usando uma pinça estéril, colocar tele biópsia da pele peça na mídia sobre o prato.
2. Dissecção da pele da biópsia
PASSOS 9 2,1-2,2 devem ser realizados DENTRO DE UM HORIZONTAL fluxo laminar HOOD
- Coloque a parte inferior da placa de 10 cm na tampa invertida, e transferir a biópsia da pele para o microscópio de dissecação na câmara de fluxo laminar.
- Dissecar uma rodada de biópsia de pele de 4 mm em 12-15 pedaços uniformemente porte, com bordas afiadas, cortando pedaços em metades iguais com um bisturi para realizar a biópsia no local eo segundo bisturi para cortar com um movimento de rolamento em uma direção. Peças com bordas irregulares contribuem para a má fixação / célula conseqüência.
3. Transferência de pele dissecado Biópsia Pieces em placas de cultura de tecido
PASSOS 3,1-3,6 devem ser realizados DENTRO DE UM GABINETE DE BIOSSEGURANÇA
- Coloque a porção inferior do prato de 10 centímetros de tecido de culturana parte superior da tampa invertida, e um prato de transferência de volta para o armário de biossegurança.
- Usando uma pinça de pontas, lugar 2-3 pedaços de biópsias em cada poço da placa de 6 poços contendo 800 ul preparada e não em poços secos. Use batendo ou movimento deslizante para conseguir as peças para fixar a parte inferior do poço. Um bisturi é útil para remover os pedaços de biópsia de fórceps.
- Colocar a placa de 6 poços em 37 ° C incubadora. Monitorar diariamente para garantir que há um filme de revestimento de meios de comunicação o fundo do poço, para a primeira semana, adicionar ~ 200 ul a cada 2 dias para substituir quaisquer meios evaporada.
- Após uma semana, aumentar a quantidade de material em 2 ml de completa DMEM/20% de FBS e meios de mudança a cada 2-3 dias.
- Uma vez que os fibroblastos são confluentes em cada poço para o ponto em que os fibroblastos são atingindo as bordas da placa de 6 poços bem, Trypsinize e passagem em 2X frascos T75 (passagem 1). Os pedaços de tecido pode ser transferido assim. Eles não vão ligar e ser lavado out durante a próxima mudança de mídia.
- Uma vez que os fibroblastos são confluentes, transferi-los para 3X T175 frascos de passagem (2), congelar em completa media DMEM acrescido de 10% DMSO a 1x10 6 células / ml por frasco.
4. Caracterização dos fibroblastos através Imunocoloração
- Fibroblastos de cultura em 8 de slides câmara bem revestidas com gelatina.
- Quando as células estão a 80% de confluência, o meio aspirado a partir de cada poço.
- Fixar as células em 4% de paraformaldeído durante 10 minutos à temperatura ambiente.
- Lavar os poços três vezes com 1X PBS.
- Permeabilizar as células com 150 uL de 0,3% de Triton X-100 (em PBS) durante 5 min à temperatura ambiente.
- Lavar os poços três vezes com 1X PBS.
- Adicionar 200 ul de solução de bloqueio (PBS + 5% de soro normal de cabra (Vector, S-1000)) durante 1 hora à temperatura ambiente.
- Prepara-se uma diluição de 1:250 de anti-SERPHIN-1 (anti-coelho, o MAB, Sigma, S5950-200 ul) em solução de bloqueio.
- Aspirate a solução de bloqueio e adicionar 150 ul da diluição de 1:250 AntiSERPINH-1. Incubar em 1-2 horas à temperatura ambiente ou a 4 ° C durante a noite.
- Lavar os poços três vezes com 1X PBS.
- Preparar um anticorpo monoclonal de cabra anti-coelho a 1:200 (Alexa Fluor de cabra anti-coelho IgG (H + L), Invitrogen, A11008) em solução de bloqueio.
- Adicionar 150 ul de 1:200 de anticorpo monoclonal de cabra anti-coelho a cada poço. Incubar durante 1 hora, no escuro, à temperatura ambiente.
- Lavar os poços uma vez com 1xPBS.
- Aspirar o PBS, e retire cuidadosamente as câmaras para revelar apenas o slide.
- Montar o slide com 2-3 gotas de meio de montagem contendo DAPI (Vector, H-1200).
- Analisar o deslizar sob um microscópio fluorescente.