1. Prepare frescos Soluções de Trabalho
- TBS: 0,05 M de Tris pH tamponada, solução salina 7,8 (TBS). Preparar 60 ml de TBS / microplaca.
- PPE: elastase pancreática porcina, tipo 1 (PPE) é fornecida como uma suspensão. Agitar bem e diluir PPE em TBS a cerca de 0,01 U / ml. Preparar 6 ml de solução de trabalho / microplaca).
- SA 3 NA: succinil-L-Ala-L-Ala-L-Ala-p-nitroanilida (SA 3 NA). Preparar 0,1 M estoque SA 3 solução de NA em sulfóxido de dimetilo (DMSO) e usar imediatamente ou armazenar a -20 ° C. Preparar solução de trabalho 6ml / microplaca, diluindo estoque SA 3 solução de NA 1/100 em TBS.
- Azul de Coomassie: Preparar uma solução-mãe de 10% de Coomassie Brilliant Blue R-250 (Azul de Coomassie) em TBS e usar imediatamente ou armazenar a -20 ° C. Preparar 6 ml de solução de trabalho por diluição de solução stock 1/1000 em TBS.
2. Prepare Saliva
- RECOLHA saliva: Na posição de pé, estimulam a exsudação soro em saliva colocando um sialogogo tal como ácido cítrico ou de goma de mascar na boca. Uma gota de limão sem açúcar é conveniente para os pacientes HIV-1 que são freqüentemente desdentada e incapaz de mascar chiclete. Engula como necessária para a 3 minutos em primeiro lugar, e coletar saliva boca inteira em um copo com tampa para a próxima 3 min. Isto irá fornecer cerca de 2 ml de saliva. Use imediatamente ou armazenar a -80 ° C.
- MANUSEAMENTO saliva: Se a amostra descongelamento congelado, a 37 ° C e colocar em gelo. Armazenar amostra fresca ou descongeladas a 2-4 ° C, não mais de 3 dias. Fazer a saliva não vórtice e evitar pipetagem mucina que não contém qualquer exsudado soro. Use precauções padrão ao manusear saliva http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/isolation/Isolation2007.pdf .
3. Microplaca Set-up
- BUFFER: As medições são realizadas em triplicata. A cada poço de uma placa de microtitulação é adicionado 130 uL de TBS.
- AMOSTRAS: Para cada poço de teste, é adicionado 20 uL de saliva para um volume final de 150 uL / poço. Misturar por pipetagem sem a introdução de bolhas.
- CONTROLE: O controle positivo contém PPE, mas não saliva. O controlo negativo contém saliva, mas não PPE.To o controlo positivo poço é adicionado 20 uL de TBS. Para o controlo negativo poço é adicionado 20 uL de saliva.
- INCUBAÇÃO PPE: Shake PPE solução funcionando bem. Adicionar 50 uL Solução de trabalho de PPE a cada poço excluindo os poços de controlo negativo. Para os poços de controlo negativo, adicionar 50 uL de TBS. Incubar 10 min a 23 ° C.
- Incubação do substrato: Adicionar 50 uL SA 3 solução de NA de trabalho para cada poço. Incubar 45 min a 23 ° C.
- Coomassie Blue:. Adicionar 50 mL solução Coomassie azul trabalho
- Leitura: Ler a absorbância em leitor de microplacas, A 405 nm para detectar SA 3 NA clivagem que representa ativa α 1 PI e A 595 nm para detectar Coomassie Azul, que representa o conteúdo de proteína.
4. Calcule α 1 Índice PI
- NORMALIZE média, um 405 nm e um nm 595: Para cada triplicado, calcular a média. Subtrair a média Controle Negativo a partir da média da amostra. Para minimizar placa para a chapa de variação, normalizar as médias por divisão de cada média da amostra pela média Controlo positivo como se segue:

- CÁLCULO DO α 1 PI INEX: Divida o normalizado A 405 nm pelos normalizados A 595 nm:

5. Os resultados representativos
Para determinar se o α-teste pode ser adequado para utilização como um teste de rastreio ponto-de-cuidado para monitorar CD4 em endémicas, de recursos limitados regiões, saliva estimulada foi recolhido a partir de 20 fêmeas e 11 machos HIV-1 clínica sujeitos assistir para cuidados de rotina em Camarões. Consistente com observações preliminares durante o desenvolvimento da α-teste usando saliva coletada em Nova York, a α 1 Índice de PI na saliva coletadas em Camarões correlacionados com contagem de CD4 (r 2 = 0,91, p <0,0001. N = 31). A relação foi definida por uma curva sigmoidal 3-parâmetro que é consistente com uma relação dose-resposta (Figura 2A). A confiança de 95% e intervalos de predição são representadas com linhas azuis e vermelhas, respectivamente (Figura 2B).
Emum estudo anterior, verificamos que células T CD4 + apresentam ciclismo sinusoidal com periodicidade de 23 ± 3,5 dias em indivíduos HIV-1 e em indivíduos com a versão herdada de α 1 PI deficiência (PiZZ) 3. Aqui apresentado é um exemplo representativo de computer-generated análise da curva de seno de CD4 de bicicleta em um non-HIV-1 controle saudável exibindo 27 periodicidade dia (Figura 3A).
Gerado por computador análise da curva de seno de as células CD4 + alterações das células T em 6 indivíduos rendeu valores para pico-a-pico de amplitude e eixo de oscilação 3. Como seria de esperar, o eixo de oscilação foi correlacionada com a amplitude (r 2 = 0,96, p = 0,009, n = 6) (Figura 3B). Em pacientes irão CD4 + T contagens de células, as alterações cíclicas na contagem de células CD4 T eram pequenos, e em pacientes com CD4 elevada contagem de células T, alterações cíclicas eram grandes.
Porque olinha de regressão representado na Figura 2 estima o eixo de oscilação eo eixo de oscilação é correlacionada com a amplitude, a amplitude pode ser calculado para a linha de regressão, assim, estimando como muito acima e abaixo das CD4 + de regressão da linha de células T que seria esperado a variar devido à ciclismo (Figura 3C). Sobrepondo a amplitude calculada na Figura 3C e do intervalo de confiança calculado na Figura 2B, verificou-se que a amplitude (linha verde) encontra-se dentro de 95% do intervalo de confiança (linha azul) (Figura 3D).

Figura 1. Resumo Procedimento: ácido cítrico Lugar na boca e coletar saliva. Adicionar saliva diluída a poços de uma microplaca em triplicado. Adicionar PPE a cada poço e incubar durante 15 min a 23 ° C. Adicionar o substrato PPE a cada poço e incubar durante 45 min a 23 ° C. Adicionar Azul de Coomassie e lida a 405 nm para detectar a actividade PPE e a 595 nm para a detecção da proteína.

Figura 2. Comparação da α-teste com o método padrão CD4 enumeração. A) O α-teste foi realizado por quantificação do α 1 Índice PI na saliva estimulada boca todo. Contagens de CD4 foram realizados por um laboratório independente médica por citometria de fluxo padrão. Sangue por citometria de fluxo e saliva foram coletadas na visita clínica mesmo. A relação entre o índice de α PI 1 e as contagens de CD4 foi definida por uma curva sigmoidal de 3 parâmetros (r 2 = 0,91, p <0,0001, n = 31). B) A confiança de 95% e intervalos de predição são descritos em azul e vermelho linhas, respectivamente.

Figura 3. Precisão de cálculo CD4 counts usando o Index.A α1PI) células T CD4 + exibiram ciclismo sinusoidal com 27 dias periodicidade de um controlo não-HIV-1 saudável. O eixo de oscilação é descrita (linha pontilhada vermelho). B) COMPUTADOR análise onda gerada seno de CD4 T ciclo celular foi usado para calcular a amplitude pico-a-pico eo eixo de oscilação em 4 de HIV-1, 1 sujeitos não-HIV -1 sujeito PiZZ, e do não-HIV-1 de controlo saudável representado na parte A. A relação entre T CD4 + amplitude da célula e do eixo de oscilação foi definida por 3-parâmetro curva sigmoidal (r 2 = 0,96, p = 0,009, n = 6). C) A relação entre a amplitude sigmoidal e eixo de oscilação derivado, em parte B) foi utilizada para calcular a amplitude esperado (linhas verdes) de pontos ao longo da linha de regressão (linha preta) a partir da Figura 2. D) A amplitude esperada intervalo (linhas verdes) foi significativamente diferente do intervalo de confiança de 95% (linhas azuis) tal como determinado pelo Teste de Soma de Mann Whitney Rank (com base numa comparação da diferença média entre o intervalo de confiança de 95% e linha de regressão (63 células / ml) ea diferença entre a linha mediana de amplitude e da linha de regressão (37 células / uL), p = 0,001).