Artigo de método

Ensaio de placas para Norovirus Murine

58.3K vistas

⸱

DOI:

10.3791/4297

⸱

22 de agosto de 2012

 ,  , 
1Department of Microbiology and Immunology, University of Michigan, Ann Arbor

Neste artigo

Resumo

Descrevemos aqui um método para quantificar a partículas infecciosas de norovirus murino (MNV), que é o único que norovirus replica eficientemente em cultura celular. O ensaio de placas aproveita tropismo MNV por macrófagos murinos e pode ser adaptado para utilização com amostras biológicas ou ambientais que contenham MNV.

Resumo

Norovirus murino (MNV) é o único membro do género Norovirus que cresce de forma eficiente em cultura de tecido 1, 2. A lise celular e efeito citopático (CPE), são observados durante MNV-1 infecção de células dendríticas ou macrófagos murinos 1. Esta propriedade de MNV-1 pode ser utilizado para quantificar o número de partículas infecciosas de uma amostra dada pela realização de um ensaio de placas 1. O ensaio de placa depende da capacidade de MNV-1 para lisar as células e para formar buracos em uma monocamada confluente de células, as quais são chamadas placas 3.

Várias técnicas podem ser usadas para detectar infecções virais em culturas de tecidos, o tecido colhido, clínicas e amostras ambientais, mas não toda a medida do número de partículas infecciosas (por exemplo, qRT-PCR). Uma forma de quantificar partículas virais infecciosas é realizar um ensaio de placa 3, que será descrita em detalhe abaixo. Uma variação no ensaio de placa é o flúor MNVensaio de focagem escent, onde o antigénio é MNV imunocoradas em monocamadas de células 4. Este ensaio pode ser mais rápido, uma vez que a expressão do antigénio viral precede a formação de placa. Também é útil para a titulação de vírus incapazes de formar placas. No entanto, o ensaio de foco fluorescente exige recursos adicionais para além dos do ensaio de placa, tais como anticorpos e um microscópio para contagem de unidades formadoras de foco. Infecciosa MNV pode também ser quantificada por meio da determinação dos 50% Dose infecciosa em cultura de tecidos (TCID 50) 3. Este ensaio mede a quantidade de vírus necessária para produzir CPE em 50% das células de cultura de tecidos inoculadas por titulação de ponto de extremidade 5. No entanto, o seu limite de detecção é maior em comparação com um ensaio de placa 4.

Neste artigo, descreve-se um protocolo de ensaio de placa que podem ser usados ​​para determinar de forma eficaz o número de partículas infecciosas mnv presentes nas amostras biológicas ou ambientais 1, 4, 6. Este método é based sobre a preparação de diluições de 10 vezes em série de amostras contendo MNV, que são utilizados para inocular uma monocamada de células permissivas (células RAW 264.7 de macrófagos murinos). Vírus é permitido para anexar a monocamada de células durante um determinado período de tempo e, em seguida, aspirado antes de cobrir as células com uma mistura de agarose e meio de cultura celular. O agar permite a propagação da descendência virai de células vizinhas, enquanto limita a propagação de células distantemente localizado. Em consequência, as células infectadas são lisadas e os furos formam na monocamada conhecidos como placas. Após a propagação de vírus suficiente, as placas tornam-se visíveis após a coloração das células com corantes, como o vermelho neutro, azul de metileno ou violeta de cristal. Em diluições baixas, cada placa origina de uma partícula infecciosa viral e sua descendência, que se espalhou para as células vizinhas. Assim, a contagem do número de placas permite calcular unidades formadoras de placas (PFU) presentes na amostra não diluída 3.

Protocolo

1. A cultura da linha celular de macrófagos RAW 264.7

  1. Manter células RAW 264.7 (ATCC, catálogo # TIB-71) em meio DMEM-10 media, que consiste em glucose alta DMEM com 10% (v / v) de endotoxina baixa de soro fetal bovino (<10 EU / ml), Hepes 10 mM , 100 U / ml de penicilina, 100 ug / ml de estreptomicina, 1 mM de não-aminoácidos essenciais, 2 mM de L-glutamina. As células são normalmente mantidas em 175 cm 2 frascos de cultura de tecidos contendo 35 ml de meio por frasco e incubaram-se a 37 ° C e 5% de CO 2 num incubador de cultura de tecido. Contudo, qualquer tamanho de balão pode ser usado com um volume de meio que seja apropriado para o tamanho do frasco.
  2. Para dividir células: aspirar os meios velhos, adicionam-se 10 ml de DMEM fresco-10 media para as células e, em seguida, raspar as células a partir do fundo do balão, utilizando um raspador de células. Em seguida, voltar a suspender as células em uma solução homogénea através da elaboração de células para uma pipeta de 10 ml e com força pressionando as células através da ponta de pipeta prEssed contra o fundo do frasco. Repetir esta acção, pelo menos, 3 vezes de modo que as células já não clump juntos. Verificar por microscopia óptica que a suspensão de célula única foi gerada. Em seguida, transferir 1 ml (diluição de 1:10, ou ~ 1x10 7 células) - 2 ml (diluição 1:5 ou ~ 2x10 7 células) de suspensão de células para um novo 2 175 centímetros frasco, e perfazer um volume final de meio até 35 ml.
  3. Dividir células quando elas são quase confluente (~ 1x10 8 células total/175 cm 2 frascos): de três em três dias, se começando com uma diluição de 1:10, ou de dois em dois dias, se começando com uma diluição de 1:5. Use microscopia de luz para verificar a morfologia das células antes de divisão de células. A maioria das células deve olhar em volta e não ativado. Células ativadas têm grânulos e / ou prolongado, espigado morfologia com apêndices. Não deixe overgrow células como essas células não costumam formar placas. Mantenha o controle do número de passagens e freqüentemente começar de descongelamento por uma alíquota menor passagem de células. (Usamos passagem 30 como um ponto de corte).

2. Infectar células RAW 264.7 com MNV inóculo

  1. Semente células RAW 264.7 em placas de 6 poços (3,5 cm de diâmetro) a uma densidade de 1x10 6 células viáveis ​​/ ml em DMEM-10 media, e adicionar 2 ml desta suspensão a cada poço. É importante para distribuir uniformemente as células nos poços de placas, quer por balançar à mão, pelo menos, 10 vezes ou utilizando um aparelho de balanço para ~ 10 min. Não redemoinho as placas como isso vai fazer com que as células de agrupamento, no centro do poço. Colocar em placas de cultura de tecido (incubadora a 37 ° C e 5% CO 2). Permitir que as células fixar durante a noite ou durante pelo menos 4 horas a 37 ° C. As células devem ser 60 - 80% confluentes para o ensaio de placa e distribuídos uniformemente por todo o poço.
  2. No dia seguinte, preparar o inoculo de vírus, o que pode ser a partir de células infectadas com MNV em cultura de tecidos ou a partir de tecidos homogeneizados ou amostras de fezes de MNV camundongos infectados. Ao utilizar amostras de tecido, pi do tamanho de ervilhaECEs de tecidos são homogeneizados em 2 ml com tampa de rosca contendo contas de tubos estéreis de sílica em 1 mL de DMEM-10, utilizando um homogeneizador de tecidos (por exemplo, MagnaLyser; Roche). Para as amostras de fezes, não mais do que três pelotas fecais devem ser homogeneizadas em uma mídia ml. Todas as amostras são então congeladas (a -80 ° C) e descongelado uma vez antes de realizar o ensaio de placas fágicas.
  3. Preparar diluições de 10 vezes do inoculo de vírus em DMEM completo meio-5, que consiste em DMEM / concentração elevada de glucose, 5% (v / v) de endotoxina baixa de soro fetal bovino (<10 EU / ml), 10 mM de HEPES, 100 U / ml de penicilina, estreptomicina 100 ug / mL, 1 mM não-aminoácidos essenciais, 2 mM de L-glutamina.
  4. Dez diluições em série são preparados em placas de 24 poços: A pipeta repetidora é usada para dispensar 1,35 ml de meio em poços múltiplos, a diluição 10 -1 é feita por mistura de 1,35 ml de meio e 0,15 ml de vírus contendo amostra, e em seguida, 0,15 ml de uma diluição 10 -1 é adicionado 1,35 ml de meios para fazer a 10 -2 dilution e assim por diante. É importante mudar dicas cada vez que você faz uma nova diluição. Uma pipeta multicanal pode ser usado para fazer as diluições de amostras múltiplas de cada vez com duas pontas encaixe para um poço de uma placa de 24 poços a transferência de um volume total de 0,15 ml por poço (ver Figura 3A).
  5. Uma gama de diluição típico para homogenatos de tecido e conteúdos fecais é de 10 -1 a 10 -3. No entanto, as placas a partir dessas amostras tendem a ser menores em comparação com aqueles a partir de amostras de cultura de tecidos. Além disso, em alguns casos, uma diluição de 1:100 das amostras fecais é necessária para diluir suficientemente para fora quaisquer componentes tóxicos das fezes que podem perturbar a monocamada de células, impedindo assim a possibilidade de contar placas. A gama de diluição de lisados ​​de cultura de tecidos depende do ponto de tempo de interesse durante o ciclo de vida viral. Diluições que vão até 10 -9 pode ser necessária no pico da infecção.
  6. Após as diluições em série são preparados, rotular a placa de 6 poçoss contendo RAW 264,7 monocamadas (da seção 2.1) com o nome da amostra e diluições sendo banhado. Uma placa de cada vez, remova todas as mídias sacudindo-o ou aspirar ele. Imediatamente depois adicionar 0,5 ml de uma amostra diluída para um poço, em seguida, repita com uma duplicata bem, antes de proceder à diluição seguinte. Uma vez que todos os três diluições são adicionados a uma placa de inclinação da placa, e para trás com a mão para garantir que todas as células foram cobertas. Manipular uma placa de cada vez para assegurar que as células não sequem.
  7. Após a adição de 0,5 ml das diluições de cada poço, a pilha de placas de pé e incubar durante 1 hora à temperatura ambiente. Uma vez que o volume adicionado a cada poço, não é suficiente para cobrir completamente a monocamada, as placas têm de ser suavemente inclinada para trás e para a frente com a mão cada 10-15 minutos ou colocada num aparelho de balanço (~ 18 oscilações por minuto). Isso evita que as células de secagem.

3. Baixo ponto de fusão de agarose (SeaPlaque) Preparação Overlay

Nota: é aconselhável ter várias garrafas com autoclavado SeaPlaque agarose preparado antes do tempo. De agarose podem ser re-fundidas num forno de microondas antes de usar.

  1. Calcular a quantidade de sobreposição necessário para o volume total de placas, antes de 1 h de incubação estiver completa. O volume necessário é de 2 ml / cavidade ou 12 ml/6-well placa. Prepare agarose (ver secção 3.2) e media (ver secção 3.3) separadamente.
  2. Para preparar a agarose, suspender 3 g de agarose SeaPlaque, num volume total de 100 ml de água destilada (3% w / v) num frasco de vidro. Autoclave por 20-30 min. (Se agarose foi já preparado de antemão, re-fundida de agarose em microondas.) É importante equilibrar SeaPlaque agarose a 42 ° C num banho de água antes da sua utilização, porque se a agarose é muito quente, que vai matar as células. Certifique-se o nível de água é igual a ou superior ao nível de agarose a fim de evitar a solidificação indesejável.
  3. Para preparar os meios de comunicação: fazer 100 ml de 2x MEM mídia, que consiste em2x MEM, 10% (v / v) de endotoxina de soro fetal bovino baixo (<10 EU / ml), 10 mM de HEPES, 100 U / ml de penicilina, 100 ug de estreptomicina / ml, 4 mM de L-glutamina. Equilibre media a 37 ° C num banho de água.
  4. Misturar ambas a agarose SeaPlaque e os meios de comunicação MEM 2x juntos em um frasco estéril a uma razão de 1:1 imediatamente antes de sobrepor as monocamadas de células infectadas. Se houver mais do que 200 ml de sobreposição é necessário, o volume de divisão em várias garrafas e manter-se em 37 ° C banho de água até que esteja pronto para uso.
  5. No final da incubação de 1 hora (ver secção 2.7), aspirar o inoculo a partir de cada poço. Lentamente, adicionar 2 ml de sobreposição para a extremidade de cada poço, colocando a ponta da pipeta contra a parede de cada poço. Até 5 placas podem ser tratadas simultaneamente, sem células secar.
  6. Permitir a sobreposição de solidificar durante aproximadamente 10 min à temperatura ambiente, antes de colocar as placas na vertical para o tecido incubadora de cultura. Incubar as placas durante 48 horas a 37 ° C em 5% de CO 2.
  7. Depoiso período de incubação, as placas são fracamente visíveis a olho nu, de modo a verificar as placas não coradas para a presença de placas. Se não houver placas são visíveis, incubar por um adicional de 4 horas e verifique novamente. No entanto, o tempo máximo de incubação não deve exceder 72 horas.

4. A visualização das placas por coloração com vermelho neutro

  1. Para visualizar as placas, a solução de coloração de vermelho neutro é preparada por adição de 3 ml de vermelho neutro (0,33% w / v em DPBS; Sigma, catálogo # N2889) a cada ml 97 de 1x PBS (grau de cultura de tecidos, Mg 2 + -, Ca 2 + - livre; Gibco, catalogo 10010). Calcula-se o volume da solução de coloração de vermelho neutro necessário para a experiência: 12 ml de solução de coloração de vermelho neutro são necessários para cada placa de 6 poços. Em seguida, adicionar 2 ml a cada poço. Apesar de alguns protocolos de ensaio em placa requer a tomada de agarose para ser removido dos poços, neste protocolo a solução de coloração de vermelho neutro é adicionado directamente sobre a cobertura.
  2. Depois de uma hora um emcubation a 37 ° C, verifica se as placas são visíveis com solução de coloração de vermelho neutro ainda em poços. Se as placas não são facilmente visíveis, permita a coloração para continuar por mais um hora. Continuar a incubação até que as placas são visíveis. (Nota:. Staining durante mais de 3 horas não é o ideal e, se não placas são visíveis na amostra de controlo positivo, após 3 horas de coloração, o ensaio de placa não funcionar adequadamente) Após a coloração for completa, aspirar a solução de coloração de vermelho neutro , garantindo a ficha de agarose não é perturbada, e então proceder à contagem das placas.
  3. Conte placas colocando placa de cabeça para baixo em uma caixa de luz e marcando um ponto em placas contados para evitar contagens duplicadas. Escolher a diluição para contar placas em poços de placas, onde estão claramente separados (isto é, sem evidência visual de fusão placas em conjunto). Se possível, a contagem de placas, duas diluições. É importante notar que o tamanho da placa pode variar entre estirpes MNV, inoculo de vírus, e depende docondição das células RAW 264.7, durante o ensaio de placas fágicas.
  4. Se não houver placas são visíveis num poço, não houve qualquer vírus presente na amostra ou a quantidade de vírus foi abaixo do limite de detecção do ensaio de placas. Neste caso, os poços mancha vermelha com uma cor semelhante como outros placa contendo poços. Alternativamente, a ausência de placas é também observada quando existem demasiados partículas virais presentes em uma dada diluição. Isto leva à lise da monocamada inteiro e poços aparecer laranja / amarelo.
  5. Calcular os títulos virais. Adicionar o número de placas em ambos os poços com uma diluição única e multiplicar pelo factor de diluição (isto é, se 1 ml 2 poços estão infectados com 0,5 ml). O resultado será a quantidade de unidades formadoras de placas (PFU) no seu volume de inoculo de 1 ml. Por exemplo, na Figura 4, na diluição 10 -2, um poço (marcado "II") possui 14 placas e o outro bem (marcado "V") possui 17 placas. Assim, o título viral será de 14x10 2 + 2 = 17x10 3100 (3.1x10 3) pfu / ml.

5. Resultados representativos

Infecciosas MNV-1 partículas pode ser quantificada utilizando um ensaio de placas como descrito esquematicamente na Figura 1. Figura 2A mostra um poço com monocamada de células RAW 264.7 imediatamente antes da infecção, enquanto que a Figura 2B mostra três placas visíveis indicadas por números romanos I, II e III em um poço. Passos individuais do ensaio estão representados nas Figuras 3A a F. A Figura 3A mostra a preparação de diluições em série de 10 vezes de uma amostra contendo vírus. Figura 3B mostra a transferência de diluições em duplicado de uma placa de 6 poços. Figura 3C mostra o aparelho de balanço usado para incubar células RAW 264.7 com o inoculo à temperatura ambiente durante 1 hr a Figura 3D mostra células sendo sobreposto com o SeaPlaque:. MEMmistura. Figura 3E mostra uma placa à temperatura ambiente para permitir a sobreposição de solidificar, enquanto que a Figura 3F mostra células a ser coradas com uma solução de 0,01% de vermelho neutro 48 h mais tarde. Depois da coloração das células para hr 1-3 e aspirando a solução de coloração de vermelho neutro, placas são visíveis e podem ser contadas (Figura 4).

figure-protocol-1
Figura 1. Esquemática do protocolo de ensaio em placa MNV.

figure-protocol-2
Figura 2. Imagens representativas de um poço de uma monocamada antes da infecção e depois da formação de placas. A) células RAW 264.7 foram cultivadas durante a noite e fotografada com um microscópio de luz com ampliação de 20x. B) As células foram coradas com uma solução de 0,01% de vermelho neutro ao fim de 48 hr de infecção e visualizados sob um microscópio de luz com uma ampliação de 4x. Números romanos I, II, e III indicam três placas visíveis.

figure-protocol-3
Figura 3. Imagens representativas das diferentes etapas do ensaio de placa. A) MNV-1 inóculo é preparado em diluições de 10 vezes. B) O inoculo é adicionado a monocamadas de células em cavidades duplicadas. C) As células e de inoculo são incubadas por balançar durante 1 h à temperatura ambiente. D) As células são revestidas com uma mistura 1:1 de agarose SeaPlaque e MEM 2x media. E) As placas são incubadas durante 10 min à temperatura ambiente para permitir a sobreposição de solidificar. F) A coloração das células com a solução de coloração de vermelho neutro 48 h pós-infecção.

figure-protocol-4
Placas Figura 4. MNV-1 formas na célula monolAyers. Mostrado aqui é uma placa de ensaio representativo da placa 48 horas pós-infecção, mostrando as placas coradas com solução de coloração de vermelho neutro, após 1 h de incubação. A placa apresenta cavidades em duplicado de três diluições de 10 vezes. Wells rotulados com números romanos I e IV correspondem à diluição 10-1; II e V correspondem à diluição 10-2; III e VI correspondem à diluição 10-3. O título viral da amostra é indicado abaixo (ver Seção 4.5 para obter detalhes sobre o cálculo).

Discussão

O método de ensaio de placa para MNV-1 aqui apresentado é uma forma de quantificar partículas infecciosas MNV. Seguindo os passos de ensaio ilustrado na Figura 3, pode-se obter títulos virais reprodutíveis. O limite de detecção do ensaio depende da diluição de partida utilizado. Ao iniciar com uma diluição de 1:10 da amostra, tal como descrito acima, o limite de detecção do ensaio de placa é de 10 pfu (isto é, uma placa visível na diluição 10 -1). Uma vez que cada placa representa um único vírus, o ensaio de placa pode também ser utilizado para purificar as populações clonais de MNV escolhendo placas isoladas e propagando-los conforme descrito anteriormente 1. Além disso, a purificação de placas também pode ser usado para separar uma população de vírus individuais a partir de populações mistas de vírus. Uma limitação do uso de um ensaio de placas para a detecção de infecção MNV é que nem todas as estirpes mnv formar placas 4. No entanto, pode ser possível ultrapassar o inabilidade de algumas estirpes de MNV, isolados a partir de animais, para formar placas em série passaging destes vírus em cultura de tecido 7. Uma alternativa para o ensaio de placa é o de medir partículas infecciosas por meio da técnica de TCID 50 3, 4. Este ensaio quantifica a quantidade de vírus necessária para produzir CPE em 50% das células de cultura de tecidos inoculadas seguintes diluições de ponto de extremidade e leva 1 semana para completar para MNV 4. Além de ser mais lento do que um ensaio de placa, o ensaio de TCID 50 também não é tão sensível (limite de detecção = 200 TCID 50 / ml), devido à toxicidade de amostras de tecido de células RAW 264.7 4.

Embora passos críticos no âmbito do protocolo foram descritos ao longo do protocolo, a seção seguinte apresenta um resumo para facilitar a resolução de problemas. Os passos mais importantes do protocolo é o de assegurar que as células RAW 264.7 permanecem viáveis ​​ao longo do ensaio para suportar a replicação do vírus. Isto podeser monitorizado em cada fase do ensaio por meio de microscopia de luz. A viabilidade celular é assegurada de duas maneiras. Primeiro, deve ser tomado cuidado para não deixar secar as células durante o manuseio de placas. Assim, as placas são inoculadas um de cada vez, agitou durante o período de infecção, e devem permanecer fechadas quando não estão a ser tratadas. Em segundo lugar, as soluções adicionado em células devem ser equilibradas para ~ 37 ° C. Além disso, é essencial para a saúde geral das células RAW 264.7 de mantê-las em meio contendo soro de endotoxina baixa (<10 EU / ml), o que limita a activação de células. Além disso, observou-se uma maior taxa de falha do teste de placa quando são usadas células de passagem 30 ou superior. Embora isso provavelmente irá variar de laboratório para laboratório, é importante incluir um controlo positivo (por exemplo, uma amostra com um título conhecido viral) para assegurar títulos reprodutíveis, especialmente quando se utiliza mais elevadas de passagem células RAW 264.7. Para limitar a utilização de células mais elevadas de passagem, é aconselhável congelar frascos de Passa precocecélulas ge após o recebimento de células RAW 264.7 e iniciar uma nova cultura dos frascos congelados freqüência. Começando por cima, com culturas de células de passagem baixa também será útil quando as células apresentam características alteradas, tais como a incapacidade de aderir, as alterações na morfologia celular (por exemplo, de volta para espigado e espalhar-se), ou quando a contaminação por micoplasma foi detectado. Outro ponto importante a prestar atenção é para garantir que ponteiras são trocadas entre as amostras e durante diluições. Isto irá assegurar precisas diluições seriadas e evitar a contaminação cruzada entre as amostras. O primeiro passo no protocolo em que a ponta da pipeta mesmo pode ser utilizado de novo, quando é diluições em série de uma mesma amostra são adicionados aos poços. Nesse caso, a pessoa deve começar a partir do inóculo mais diluído para o mínimo, e vigorosamente pipetar cima e para baixo ao elaborar uma nova diluição.

O protocolo de ensaio de placa pode ser alterada a várias modificações. Uma modificação que pode ser feita quando taqui não são suficientes para a inoculação de células de poços em duplicado é apenas para inocular um único poço de cada diluição. No entanto, uma vez que o volume de inoculo é de 0,5 ml, o número de placas, em seguida, tem de ser multiplicado por um factor de 2 para normalizar a pfu / ml. O ensaio de placa pode também ser adaptado para utilização com qualquer linha celular aderente outro que é capaz de suportar a replicação de MNV, e esta tem sido descrita para a linha microglial murino BV-2 de 8 células. Outras modificações que podem ser aplicadas são as adaptações que foram descritas para os protocolos de ensaio de placas desenvolvidas em outros vírus. Em caso de MNV, as seguintes modificações já foram implementadas com sucesso, a utilização de celulose de metilo em vez de agarose Sea Plaque 9, e coloração das células com violeta de cristal ou azul de metileno em vez de vermelho neutro 10, 11.

No geral, este protocolo pode ser facilmente adaptado, conforme necessário para quantificar outros formadoras de placas de vírus ou utilizados para other vírus que causam infecções líticas em RAW 264,7 células, tornando-se uma ferramenta útil para quantificar partículas virais infecciosas em geral.

Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Agradecimentos

Agradecemos a membros do laboratório Wobus para comentários críticos e sugestões. Trabalhar no laboratório de CEW foi financiado por fundos de arranque da Universidade de Michigan, uma bolsa de desenvolvimento de carreira a partir do Centro NIH / NIAID Regional de Excelência para a Bio-defesa e Emergentes de Pesquisa de Doenças Infecciosas (RCE) Programa, Região V 'Grande RCE Lakes '(NIH prêmio 1-U54-AI-057153) e NIH R01 AI080611. MBG-H. foi financiado pelo Imunologia Experimental (NIH T32 A1007413-16) e os Mecanismos moleculares em Patogênese Microbiana (NIH T32 A1007528) bolsas de formação para a Universidade de Michigan. JBC foi financiado pela Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES), Brasília, Brasil.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Nome do reagente Companhia Número de catálogo
DMEM / glicose alta Hyclone SH30243.02
2x MEM Gibco 11935
100x penicilina e estreptomicina Hyclone SV30010
10 mM não-aminoácidos essenciais Hyclone SH30238.01
HEPES 1M Hyclone SH30237.01
200 mM (100x), L-glutamina Hyclone SH30034.01
Soro Fetal Bovino Gibco, Hyclone 10437, SH30070.02
Mar Plaque Agarose Lonza 50100
Neutral Red 0,33% Sigma N2889
1x PBS Gibco 10010
1,0 milímetros de zircônia / sílica contas Produtos Biospec 11079110z
Modelo Rocker Velocidade 35 Labnet S2035
Instrumento Lyser Magna Roche 03358968001
Linha de células RAW 264.7 ATCC TIB-71
De cultura de tecidos incubadora Sanyo MCO-18AIC

Referências

  1. Wobus, C. E. Replication of Norovirus in cell culture reveals a tropism for dendritic cells and macrophages. PLoS Biol. 2, e432(2004).
  2. Wobus, C. E., Thackray, L. B., Virgin, H. W. Murine norovirus: a model system to study norovirus biology and pathogenesis. Journal of virology. 80, 5104-5112 (2006).
  3. Condit, R. C. Ch. 2. Fields Virology. Knipe, D. M., Howley, P. M. 1, Lippincott Williams & Wilkins. 25-58 (2007).
  4. Thackray, L. B. Murine noroviruses comprising a single genogroup exhibit biological diversity despite limited sequence divergence. Journal of virology. 81, 10460-10473 (2007).
  5. Reed, L. J., Muench, H. A simple method for estimating 50% endpoints. American Journal of Hygiene. 27, 493-497 (1932).
  6. Chachu, K. A. Antibody is critical for the clearance of murine norovirus infection. Journal of virology. 82, 6610-6617 (2008).
  7. Barron, E. L. Diversity of murine norovirus strains isolated from asymptomatic mice of different genetic backgrounds within a single U.S. research institute. PLoS ONE. 6, e21435(2011).
  8. Cox, C., Cao, S., Lu, Y. Enhanced detection and study of murine norovirus-1 using a more efficient microglial cell line. Virology journal. 6, 196(2009).
  9. Cooper, P. D. The plaque assay of animal viruses. Adv. Virus Res. 8, 319-378 (1961).
  10. Hyde, J. L. Mouse norovirus replication is associated with virus-induced vesicle clusters originating from membranes derived from the secretory pathway. Journal of virology. 83, 9709-9719 (2009).
  11. Simmonds, P. Bioinformatic and functional analysis of RNA secondary structure elements among different genera of human and animal caliciviruses. Nucleic acids research. 36, 2530-2546 (2008).

Reimpressões e permissões

Solicitar permissão para reutilizar o texto ou as figuras deste artigo JoVE

Solicitar permissão

Etiquetas

Dilui o SeriadaC lulas RAW 264 7Colora o com Vermelho NeutroUnidades Formadoras de PlacasCultura de TecidosQuantifica o ViralCamada de AgaroseMonocamada Celular

Artigos relacionados