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Artigo de método

Um novo procedimento para avaliar as propriedades de reforço de Tastants em laboratório ratos: Intraoral auto-administração operante

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DOI:

10.3791/50956

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6 de fevereiro de 2014

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Psychology, University of Guelph

Neste artigo

Resumo

O presente estudo avalia um novo procedimento para avaliar os efeitos de reforço de soluções palatáveis ​​em ratos de laboratório: a auto-administração intra-oral. Para este fim, respondendo operante (isto é, a pressão da alavanca) para infusões intra-orais de soluções doces em diferentes concentrações foi medido em rácios contínuos e progressivos esquemas de reforço.

Resumo

Este artigo descreve um novo método para estudar a base de bio-comportamental da dependência de alimentos. Este método combina a componente cirúrgica de sabor reactividade com os aspectos do comportamento de auto-administração de drogas operante. Sob anestesia geral breve, os ratos são implantados com uma cânula intra-oral (IO), que permite a administração de soluções de teste directamente na cavidade oral. Os animais são então testados em câmaras de auto-administração operante através do qual eles podem pressionar uma alavanca para receber infusões de IO de soluções de teste. IO auto-administração tem várias vantagens sobre os procedimentos experimentais que envolvem a beber uma solução a partir de um bico ou responder operante para pastilhas ou soluções entregues num recipiente sólido. Aqui, mostramos que a IO auto-administração pode ser utilizada para estudar a auto-administração de xarope de milho rico em frutose (HFCS). Os ratos foram testados para a auto-administração em uma (PR) esquema de razão progressiva, que avalia a quantidade máxima de opcomportamento rante que será emitido para diferentes concentrações de HFCS (isto é, 8%, 25% e 50%). Após este teste, os ratos auto-administrados estas concentrações em uma programação contínua de reforço (ou seja, uma infusão para cada imprensa alavanca) por 10 dias consecutivos (1 sessão / dia, cada um com duração de 3 horas), e em seguida, eles foram novamente testados no cronograma PR . No esquema de reforço contínuo, os ratos levou menos infusões de concentrações mais elevadas, embora a concentração mais baixa de HFCS (8%) mantida a auto-administração de mais variável. Além disso, os testes de RP revelaram que 8% tinha um valor de reforço inferior a 25% e 50%. Estes resultados indicam que a IO auto-administração pode ser empregada para o estudo de aquisição e de manutenção da resposta de soluções doces. A sensibilidade de resposta operante a diferenças na concentração e esquema de reforço torna IO auto-administração de um processo ideal para investigar a neurobiologia da ingestão voluntária of doces.

Introdução

O estudo da base neurobiológica e comportamental de dependência de alimentos baseia-se nas observações de que, à semelhança de drogas de abuso, o consumo excessivo de alimentos palatáveis ​​promove dependência comportamental 1-4 e induz alterações em circuitos de recompensa do cérebro em humanos 5-6 e laboratório animais 7-8. Mas, enquanto existem vários protocolos e procedimentos para estudar as propriedades de dependência de drogas de abuso em ratos de laboratório, adaptando os métodos para avaliar comportamentos "viciantes" induzidas por alimentos apresenta desafios únicos. O objetivo do presente estudo foi o de aplicar princípios de administração intravenosa (IV) de drogas auto-administração operante para a investigação de auto-administração operante de soluções doces entregues por infusão intra-oral (IO). O doce utilizado foi o xarope de milho rico em frutose (HFCS), porque, apesar de controversa, há evidências de que a HFCS pode ser ligada à epidemia moderna de obesidade 9-12.

Tradicionalmente, as infusões de IO são entregues para estudar a palatabilidade de saborizantes em experiências reactividade gustativas 13. Resumidamente, uma cânula de IO é implantado cirurgicamente no mordente de ratos e infusões IO de várias soluções são passivamente entregues 14. O objetivo é estudar as reações orofaciais dos animais aos tastants. No entanto, cânulas IO também foram implantados cronicamente no palato de ratos para determinar se eles iriam aprender a pressionar uma alavanca para soluções de auto-infundir diretamente em sua cavidade oral, daí o termo IO auto-injeção 15-17. No presente estudo, descrevemos um procedimento que utiliza uma pequena cirurgia e que permite o teste de auto-administração operante longo prazo. Este procedimento tem várias vantagens significativas sobre os processos tradicionais que envolvem a beber uma solução a partir de um bico (a), ou responder operante para peletes sólidos (b), ou responder operante de gotas de fluido entregues num receptáculo(C).

Em comparação com a (a), IO auto-administração envolve uma resposta operante (isto é, pressionando uma alavanca) e, por conseguinte, é possível modificar a programação regulando a relação entre resposta e requisitos de entrega de infusões IO. Por exemplo, através do emprego de uma razão progressiva (PR) cronograma, segundo o qual as respostas necessárias para infusões sucessivas aumentam exponencialmente dentro de uma sessão de 18, é possível avaliar o quanto um animal "quer" a próxima infusão 19. Este importante aspecto de "buscar" o comportamento não pode ser avaliado quando os animais beber uma solução de uma bica, a menos que um aparelho especial que controla a oferta de líquidos e monitora as respostas é empregado 20. Além disso, IO auto-administração proporciona um meio de comparar os comportamentos motivados por diferentes estímulos de reforço. Ou seja, é possível comparar responder operante mantidas por doces e outros reforços, tais como drogas de abuso emos chamados "estudos de substituição."

Em comparação com (b), IO auto-administração permite o teste de qualquer concentração e qualquer quantidade de qualquer aditivo alimentar solúvel em água. Isso é fundamental para estudar o comportamento motivado por doces como HFCS, porque, com o melhor de nosso conhecimento, não há pastilhas disponíveis comercialmente sólidos de frutose, frutose ou combinações de glicose, em diferentes proporções, que seria adequado para câmaras operantes. Além disso, a importância de controlar e manipular índices de concentração / volume é obrigatório em experimentos onde o consumo pode ser modulada tanto pelo valor calórico de uma solução (que leva à saciedade específicas de nutrientes) e pela quantidade de solução que podem ser consumidos dentro de um determinado período de tempo (isto é, plenitude) 21. IO auto-administração também reduz o atraso entre a resposta operante e a entrega do reforço primário, um factor que desempenha um papel importante na aquisição e manutençãotenção do comportamento operante 16,22-23.

Finalmente, em comparação com (c), IO auto-administração permite a entrega de infusões passivos IO de quantidades controladas de solução de teste, e isso faz com que seja possível medir as respostas orofaciais de "gosto" (reação hedônica objetivo como protuberâncias da língua 24 -25) e se estas respostas mudar durante IO auto-administração. Além disso, a capacidade de administrar infusões passivos IO tem aplicações importantes para o estudo da recaída de procura de alimentos. Ou seja, em estudos de IV droga auto-administração, após períodos de extinção, primos de drogas (ou seja, a administração de uma pequena dose da droga 26) podem "restaurar" responder 27-28. Portanto, a capacidade de entregar infusões IO sem qualquer ação por parte do animal pode ser usado para estudar "cru" preparado reintegração, assim como o potencial de reintegração cruzamento entre alimentos edrogas de abuso.

IO auto-administração de soluções doces também é preferível para IV e auto-administração intra-gástrica. De facto, apesar de infusões IV de frutose em seres humanos e em animais de laboratório produz efeitos fisiológicos similares aos observados após ingestão oral, 29-31, este é um modelo pobre de como doces são normalmente consumido (isto é, por via oral). Além disso, os sinais gustativos produzidos por mastigação conferem informação importante sobre o paladar dos alimentos, e quando esta fase do processo de digestão é omitido, o desenvolvimento de comportamentos adaptativos, tais como excesso de comida é reduzida 32-33.

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Protocolo

1. Animal Care e Habitação

Todos os experimentos foram aprovados pelo Comitê Animal Care, da Universidade de Guelph, e são realizadas de acordo com as recomendações do Conselho Canadense de Cuidados Animal. O estudo inclui 22 adultos machos Sprague-Dawley (Charles River, QC) pesando 200-225 g no início da experiência.

  1. Ratos única casa e mantê-los em um ciclo claro / escuro reversa (07:00 OFF - 07:00 ON) com acesso ad libitum à comida e água, exceto quando indicado o contrário, ou durante o teste comportamental que ocorre durante o ciclo ativo.
  2. Habituar ratos para a sala da colónia e manuseamento humano pesando diariamente durante uma semana antes da cirurgia.

2. Cirurgia Canulação Intraoral: Materiais e Processos

O intra-oral (IO) a cirurgia e materiais estão descritos em 14 Limebeer et al.

  1. Para construçãot a cânula IO, cortar um pedaço de tubo de plástico de polietileno de cerca de 130 mm de comprimento (diâmetro interno de 0,86 mm e diâmetro exterior de 1,27 milímetros).
  2. O tubo a ser fixado na cavidade oral requer uma extremidade com flange (~ 5 mm de diâmetro). Criar esta extremidade flangeada aquecendo a extremidade do tubo, com um ferro de soldar de 2-5 segundos e depois achatar prontamente a borda aquecida do tubo contra uma superfície plana. Cortar um disco de malha cirúrgica (cerca de 6-7 mm de diâmetro para se encaixar à volta do diâmetro da extremidade com flange da cânula) e passe-a para o comprimento do tubo até que o disco assenta contra a parte de trás da extremidade com flange da cânula IO.
  3. Para cada cânula IO, cortar um disco adicional cirúrgico malha (8 mm de diâmetro) e os três quadrados de uma banda elástica (de 6 mm x 6 mm; ver Figura 1).
  4. Esterilizar a cânula IO, discos de malha cirúrgica, e os quadrados elásticas numa solução anti-bacteriana por um período mínimo de 24 horas antes da cirurgia.
  5. Antes da cirurgia, umautoclave todos os instrumentos cirúrgicos e desinfetar o campo cirúrgico. Entre as cirurgias, use um esterilizador pérola de vidro para esterilizar ferramentas e usar uma touca, luvas de borracha nitrílica, e máscaras cirúrgicas para manter as condições assépticas.

Analgesia e anestesia

  1. Cerca de 30 minutos antes da cirurgia administrar uma via subcutânea (SC), a injecção do antibiótico Depocillin (0,33 mg / kg) e o analgésico meloxicam (5 mg / kg SC).
  2. Induzir anestesia geral com isoflurano (4% de indução e manutenção 3%).
  3. Uma vez que os ratos são responsivos ao dedo de aperto, e antes de proceder a quaisquer incisões, usar um cotonete de algodão derrubado para administrar uma anestesia tópica ao longo da face interior esquerda de ratos onde a cânula está a ser implantado, e injectar um anestésico local como a lidocaína HCl o local da incisão para a agulha de biópsia (base do pescoço) e de cabeça (couro cabeludo).
  4. Aplicar lubrificante pomada para ambos os olhos, antes do início da ondary.

Os procedimentos cirúrgicos

  1. Raspar a 10 milímetros x 10 milímetros remendo de cabelo na base do pescoço. Use gazes esterilizadas para cotonete e limpar a área raspada na seguinte ordem: sabonete antibacteriano, isopropílico a 70% de álcool e Betadine.
  2. Inserir uma agulha G 15, de aço inoxidável, na base do pescoço e movê-lo por via subcutânea em torno da orelha para a face esquerda. Posicionar a ponta da agulha e passa-o através do mordente atrás do primeiro molar dentro da cavidade oral.
  3. Passar a cânula IO através da ponta da agulha sobressai da cavidade oral e, em seguida, retirar a agulha, deixando apenas a cânula IO.
  4. Passe um disco de malha cirúrgica seguido por três discos elásticos quadrados sobre a parte exterior da cânula IO e desenhá-los na pele exposta na parte de trás do pescoço para estabilizá-la.
  5. Lave a cânula IO com um enxaguatório bucal antibacteriano
  6. Antes do início da cirurgia, modificar um parafuso de nylon(28 mm de comprimento, 4 mm ponto; 8 milímetros cabeça) para remover a cabeça e esculpir um sulco dois milímetros ao longo do comprimento da rosca (ver Figura 2).
  7. Raspar a 10 mm x 20 mm faixa de cabelo ao longo da linha média da cabeça. Use gazes esterilizadas para cotonete e limpar a área raspada na seguinte ordem: sabonete antibacteriano, isopropílico a 70% de álcool e Betadine.
  8. Usar um bisturi cirúrgico para fazer uma longa incisão 20 milímetros ao longo da sutura sagital. Use uma broca de mão para fazer 4 furos (2 em cada lado da sutura) e usar uma chave de fenda de mão para fixar quatro parafusos joalheiros ao crânio.
  9. Coloque o parafuso no centro dos quatro parafusos de joalheiros com a ranhura posicionada para a parte posterior do animal. Montar o parafuso no crânio do rato através da construção de um Headcap com cimento dental (usar cimento dental suficiente para cobrir a superfície dos parafusos joalheiros). Permitir que o cimento dental para secar antes de retirar o animal do campo cirúrgico e terminar a anestesia.
monitoramento e cuidados pós-operatórios

  1. Individualmente os ratos da casa em gaiolas com cama imediatamente após a cirurgia e acompanhar de perto, durante 24 horas.
  2. Administrar uma segunda injeção do analgésico Meloxicam 24 horas pós-cirurgia e lavar a cânula IO com um enxaguatório bucal antibacteriano uma vez / dia durante três dias.

Dar ratazanas de 3-5 dias para recuperar de uma cirurgia, antes do início da experiência.

3. Procedimentos de auto-administração de IO

Aparelho

Para auto-administração, Plexiglas câmaras de condicionamento operante são usados, e cada câmara é colocada em uma caixa de madeira compensada atenuantes de som maior. Cada câmara de condicionamento operante tem uma luz casa (28 V) e duas alavancas retráteis (ativos e inativos) localizados em lados opostos da câmara, 8 cm acima do chão. A alavanca ativa é conectado a uma bomba de infusão saídas posicionadaside a câmara de isolamento de som e luz branca (28 W) está localizado a 3 cm acima para servir como uma luz de estímulo emparelhado com a entrega de infusões IO. A alavanca inativo serve para controlar a linha de base, o comportamento operante não reforçado, pressionando a alavanca não tem qualquer consequência, mas todas as prensas são gravadas.

Comida

  1. Fornecer os ratos com uma dieta padrão (3,1 kcal / g) em sua gaiola.
  2. Diluir xarope de milho rico em frutose (55% fórmula) para três diferentes concentrações (8% = 0,026 kcal/80 infusão mL; 25% = 0,08 kcal/80 infusão mL; 50% = 0,17 kcal/80 infusão mL), utilizando água de osmose reversa. Estas concentrações são selecionados porque cada um produz uma viscosidade que é apropriado para entregar rápidas infusões (2,5 seg) IO, dado o aparato experimental (ou seja, o diâmetro de seringas e tubos).

Privação de alimento

A fim de facilitar a obtenção deIO auto-administração, mas promover o crescimento normal, os ratos se sucederem períodos de privação de alimento e ad libitum acesso à ração padrão.

  1. Pesar os ratos diariamente às 7:00 e remover ração da calha de alimentação da gaiola.
  2. No dia seguinte, pesar ratos às 12:00 horas (aproximadamente 18 horas depois) e começar IO auto-administração por 01:00.
  3. Retornar ratos para suas gaiolas às 4:00 pm e fornecer acesso ad libitum à comida durante 3 horas consecutivas. Em seguida, registre o peso dos ratos e a quantidade total de ração consumida durante as três horas. Retomar a privação de alimentos, como descrito.

Geral IO procedimento de auto-administração

Operante de responder por infusões de IO de HFCS é avaliada em PR e horários contínuos de reforço. Os ratos são testados em IO de auto-administração até que a ingestão é estável, tal como definido por: 1) uma diferença significativa na resposta entre activo e inactiva alavancas para pelo menos 2 sessões consecutivas e 2) variação inferior a 20% no número de infusões auferidos por sessão por 2 sessões consecutivas. Cada sessão começa 6 horas para o ciclo escuro e dura 3 horas. A fase de aquisição 10 é constituída de IO sessões de auto-administração consecutivos sobre um esquema contínuo de reforço, e os ratos recebem uma única PR de teste de 24 horas antes do início de aquisição (teste PR I) e 24 horas após a última sessão de aquisição (Teste PR II). Para os testes de RP, o ponto de interrupção (PA) é definida como a última infusão recebida antes da cessação da resposta na alavanca activa durante pelo menos 1 h 18.

  1. Ratos contrap na base de pesos tomados durante três dias antes do inicio da experiência e atribuir os ratos para auto-administrar uma de três concentrações de HFCS: 8%, 25%, ou 50%.
  2. Pesar ratos às 12:00 e transferi-los da sala de colônia para a sala de ensaios em suas gaiolas. Para remover alimentos ou bedding, que podem acumular-se dentro da cânula de IO, a bomba de ar através da cânula, utilizando uma seringa de 12 ml com uma agulha fixa 16 L, com 50 mm de tubo de polietileno (diâmetro interno de 1,14 mm e diâmetro exterior de 1,57 mm) ligados à extremidade.
  3. Na câmara operante, ligar a cânula de IO a tubagem Tygon (diâmetro interno de 0,02 mm e diâmetro exterior de 1,53 mm) através de um veio construído de uma agulha de 20 G modificada (remover o cubo de plástico e ponta chanfrada). Posicionar a parte inferior do tubo (isto é, mais próximo do animal) dentro do bosque do parafuso. A maior parte do tubo está ligada a um suporte giratório, e protegido por uma mola. Ligue a base da mola do segmento de parafuso montado na cabeça do rato.
  4. Dê ratos cinco minutos para se acostumar com a câmara operante e, em seguida, iniciar a sessão de auto-administração IO. A sessão de auto-administração IO começa com a ativação da casa de luz, a entrada das duas alavancas retráteis, e iluminação doestímulo luminoso acima da alavanca ativa por 30 segundos.
  5. Para PR Teste I, utilizar o horário PR descrita por Richardson e Roberts18 (relação resposta escalada = (5-E (número de injeção x 0,2)) - 5).
  6. Para as sessões de aquisição de 1-10, use uma programação contínua de reforço em que cada imprensa na alavanca de resultados ativos na entrega de uma infusão de 80 mL da solução de teste de mais de 2,5 seg.
  7. Para dar tempo suficiente para a ingestão, impõem um período de tempo limite de 27,5 segundos, durante o qual a alavanca ativa está retraída ea luz estímulo é ativado (ou seja, os ratos podem obter uma infusão IO a cada 30 seg). Não imponha um limite para o número de infusões obtidas dentro de cada sessão de auto-administração IO.
  8. Se o rato não dar uma resposta sobre a alavanca ativa por 20 minutos consecutivos, o primeiro-rato (abrir a câmara operante e facilitar o rato pressionando uma vez a alavanca ativa). Prime os animais a cada 20 minutos até 5x/session dutocar os três primeiros dias de só de aquisição.
  9. Administrar o segundo teste de RP usando os parâmetros descritos no passo 3.10.
  10. Seguindo sessões de auto-administração de IO, remover os ratos das câmaras operantes, lave a cânula IO com 2,0 ml de água usando os mesmos materiais descritos em 3.7, e retornar os ratos às suas gaiolas casa na sala da colónia.
  11. Após três horas de acesso ad libitum à ração, os ratos de peso at 7:00, retire o alimento da manjedoura, e retomar a privação de alimento.

Dados auto-administração são analisados ​​usando de dois fatores repetidas medidas análises de variância (ANOVA). Comparações múltiplas utilizando o método Student-Newman-Keuls (α = 0,05) foram utilizados para explorar quaisquer interacções significativos ou efeitos principais.

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Resultados

Aquisição de IO auto-administração

A Figura 3 representa responder operante nas alavancas ativos e inativos durante a auto-administração de 8%, 25%, ou 50% HFCS por 10 sessões consecutivas. Os ratos adquirem IO auto-administração de HFCS dentro das primeiras três sessões e manter a alavanca activa estável responder (como descrito acima) para o restante da aquisição. As diferenças dependentes da concentração em resposta alavanca activos também são evidentes: em comparaç...

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Discussão

O estudo atual mostra uma nova abordagem para a avaliação das propriedades de reforço de soluções doces combinando métodos tradicionalmente empregados para estudar o comportamento motivado por drogas de abuso (auto-administração operante intravenosa) e avaliar a palatabilidade de tastants (sabor reatividade através de infusões intra-orais). Para este fim, sob muito breve anestesia induzida por isoflurano, os ratos são implantados cânula IO que permite a entrega de soluções teste directamente para a boca. Após a recupera...

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Divulgações

Os autores que não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Estes estudos foram apoiados por bolsas do Conselho de Pesquisa em Ciências Naturais e Engenharia do Canadá (NSERC) a FL e uma bolsa de estudos de Pós-Graduação canadense (CGSD) de NSERC para AM.L.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Reagents
MeloxicamBoehringer Ingelheim Canada Ltd.Da farmácia da Faculdade de Veterinária
de Ontário Procaína Penicilina GCaneta Aquosa, Wyeth Saúde AnimalDa farmácia da Faculdade de Veterinária de Ontário
Lidocaína HCl 2%Da farmácia da Faculdade de Veterinária de Ontário
Marcaína 0,5 %Da farmácia da Faculdade de Veterinária de Ontário
Pomadalubrificante para os olhosO produto pode ser comprado em qualquer farmácia
2% Lidocaína Viscosa Oral (Anestésico Tópico)Pharmascience Inc.CDMV # 14705Frasco de 100 ml
Isoflurano USPPharmaceutical Partners of CanadaCDMV # 108737Frasco de 250 ml
Bacti-StatMerck Sante AnimaleCDMV # 6449Frasco de 3.785 L
Álcool isopropílico (70%)Perdu PharmaFisher # MPX18404frasco de 4 L
Betadine 10%McKesson CanadaCDMV # 104826frasco
de 500 mlSuper GermipheneCeva Animal HealthCDMV # 103629 garrafa de454 ml
Chlorhexidene (Novadent)ZoetisCDMV # 8908garrafa de 236 ml
Xarope de Milho com Alta FrutoseNatures FlavoursHFCS-55garrafa
Materials
PE90 tubulaçãoBecton Dickinson and CompanyVWR # CA-63019-080A100 pés/bobina
Tubulação PE160Becton Dickinson and CompanyVWR # CA-63018-747100 pés/bobina
Malha de PolipropilenoSmall Parts Inc.CMP-0297-D
FerroO produto pode ser comprado em qualquer loja de ferragens
#64 Bandas elásticasGrampos Material de escritórioItem # 13556O produto pode ser comprado em qualquer loja de material de escritório
15 G Agulhas de parede fina de 3,5 polVWR # CABD110812 agulhas/pacote
loja de suprimentos
Agulhas de Precisão Deslizante 20 G agulhas (1½ in)Becton Dickinson and CompanyFisher # 14-826D
Precision Glide Needles 16 G agulhas (1½ in)Becton Dickinson and CompanyFisher # 14-826-5D
Câmaras de condicionamento operantesMed Associates Inc.ENV-008-CTC
Câmara de atenuação de somMed Associates Inc.ENV-018M
MED PC IV softwareMed Associates Inc.SOF-735
Bombas de seringaRazel Scientific Instruments
Conjunto giratório de plástico descartávelMed Associates Inc.Tubulação PHM-115I
Tygone MicroboreSaint Gobain Performance PlasticsFisher # 1417015B500 pés/bobina
de 1 galão de solda . Barbeador elétrico (lâmina de 1/2 pol) O produto pode ser comprado em qualquer animal de estimação

Referências

  1. Avena, N. M., Bocarsly, M. E., Hoebel, B. G., Gold, M. S. Overlaps in the nosology of substance abuse and overeating: the translational implications of "food addiction". Curr. Drug Abuse Rev. 4 (3), 133-139 (2011).
  2. Ifland, J. R., Preuss, H. G., et al. Refined food addiction: a classic substance use disorder. Med. Hyp. 72, 518-526 (2009).
  3. Volkow, N., Wise, R. A. How can drug addiction help us understand obesity. Nat. Neurosci. 8 (5), 555-560 (2005).
  4. Gearhardt, A. N., Davis, C., Kuschner, R., Brownell, K. D. The addiction potential of hyperpalatable foods. Curr. Drug Abuse Rev. 4 (3), 140-145 (2011).
  5. Gearhardt, A. N., Yokum, S., Orr, P. T., Stice, E., Corbin, W. R., Brownell, K. D. Neural correlates of food addiction. Arch. Gen. Psychiatry. 68 (8), 808-816 (2011).
  6. Volkow, N. D., Wang, G., Fowler, J. S., Telang, F. Overlapping neuronal circuits in addiction and obesity: evidence of systems pathology. Philos. Trans. Royal Soc. 363, 3191-3200 (2008).
  7. Alsiö, J., Olszewski, P. K., Levine, A. S., Schiöth, H. B. Feed-forward mechanisms: addiction-like behavioral and molecular adaptations in overeating. Front. Neuroendocrinol. 33 (2), 127-139 (2012).
  8. Johnson, P. M., Kenny, P. J. Dopamine D2 receptors in addiction-like reward dysfunction and compulsive eating in obese rats. Nat. Neurosci. 13 (5), 635-644 (2010).
  9. Bray, G. A., Nielsen, S. J., Popkin, B. M. Consumption of high-fructose corn syrup in beverages may play a role in the epidemic of obesity. Am. J. Clin. Nutr. 79 (4), (2004).
  10. Forshee, R. A., Storey, M. L., et al. A critical examination of the evidence relating high fructose corn syrup and weight gain. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 47 (6), 561-582 (2007).
  11. Moeller, S. M., Fryhofer, S. A., Osbahr, A. J., Robinowitz, The effects of high fructose corn syrup. J. Am. Coll. Nutr. 28 (6), 619-626 (2009).
  12. White, J. S., Foreyt, J. P., Melanson, K. J., Angelopoulos, T. J. High fructose corn syrup: Controversies and common sense. Am. J. Lifestyle Med. 4 (6), 515-520 (2010).
  13. Grill, H. J., Norgren, R. The taste reactivity test. I. Mimetic responses to gustatory stimuli in neurologically normal rats. Brain Res. 143 (2), 263-279 (1978).
  14. Limebeer, C. L., Vemuri, V. K., et al. Inverse agonism of cannabinoid CB1 receptors potentiates LiCl-induced nausea in the conditioned gaping model in rats. Br. J. Pharmacol. 161 (2), 336-349 (2010).
  15. DeBold, R. C., Miller, N. E., Jensen, D. D. Effect of strength of drive determined by a new technique for appetitive classical conditioning of rats. J. Comp. Physiol.Psychol. 59 (1), 102-108 (1965).
  16. Panksepp, J., Trowill, J. A. Intraoral self injection: I. Effects of delay of reinforcement on resistance to extinction and implications for self-stimulation. Psychonomic Sci. 9 (7), 405-406 (1967).
  17. Panksepp, J., Trowill, J. A. Intraoral self injection: II. The simulation of self-stimulation phenomena with a conventional reward. Psychonomic Sci. 9 (7), 407-408 (1967).
  18. Richardson, N. R., Roberts, D. C. Progressive ratio schedules in drug self-administration studies in rats: a method to evaluate reinforcing efficacy. J. Neurosci. Methods. 66, 1-11 (1996).
  19. Berridge, K. C., Robinson, T. E. Parsing reward. Trends Neurosci. 26 (11), 507-501 (2003).
  20. Sclafani, A., Ackroff, K. Reinforcement value of sucrose measured by progressive ratio operant licking in the rat. Physiol. Behav. 79, 663-670 (2003).
  21. Houpt, K. A. Gastrointestinal factors in hunger and satiety. Neurosci. Biobehav. Rev. 6 (2), 145-164 (1982).
  22. Mazur, J. E. Effects of rate of reinforcement and rate of change on choice behaviour in transition. J. Exp. Psychol. 50 (2), 111-128 (1997).
  23. Samaha, A. N., Robinson, T. E. Why does the rapid delivery of drugs to the brain promote addiction. Trends Pharmacol. Sci. 26 (2), 82-87 (2005).
  24. Berridge, K. C., Kringelbach, M. L. Affective neuroscience of pleasure: reward in humans and animals. Psychopharmacology. 199 (3), 457-480 (2008).
  25. Kelley, A. E., Berridge, K. C. The neuroscience of natural rewards: relevance to addictive drugs. J. Neurosci. 22 (9), 3306-3311 (2002).
  26. Shaham, Y., Shalev, U., Lu, L., De Wit, H., Stewart, J. The reinstatement model of drug relapse: history, methodology and major findings. Psychopharmacology. 168 (1-2), 3-20 (2003).
  27. de Wit, H., Stewart, J. Drug reinstatement of heroin-reinforced responding in the rat. Psychopharmacology. 79 (1), 29-31 (1983).
  28. Schmidt, H. D., Anderson, S. M., Famous, K. R., Kumaresan, V., Pierce, R. C. Anatomy and pharmacology of cocaine priming-induced reinstatement of drug seeking. Eur. J. Pharmacol. 526 (1-3), 65-76 (2005).
  29. Dunnigan, M. G., Ford, J. S. A. The insulin response to intravenous fructose in relation to blood glucose levels. J. Clin. Endocrinol. Metab. 40 (4), 629-635 (1975).
  30. Crapo, P. A., Kolterman, O. G., Olefsky, J. M. Effects of oral fructose in normal, diabetic, and impaired glucose tolerance subjects. Diabetes Care. 3 (5), 575-582 (1980).
  31. Lê, K. A., Tappy, L. Metabolic effects of fructose. Curr. Opin. Clin. Nutr. Metab. Care. 9 (4), 469-475 (2006).
  32. Scheggi, M. E., Secci, G., Marchese, M. G., De Montis, C., Gambarana, Influence of palatability on motivation to operate for caloric and non-caloric food in non food-deprived and food-deprived rats. Neuroscience. 236, (2013).
  33. Sclafani, A., Lucas, F., Ackroff, K. The importance of taste and palatability in carbohydrate-induced overeating in rats. Am. J. Physiol. 270 (6), 1197-1202 (1996).
  34. Roberts, D. C. S., Loh, E. A., Vickers, G. Self-administration of cocaine on a progressive ratio schedule in rats: dose-response relationship and effect of haloperidol pretreatment. Psychopharmacology. 97 (4), 535-538 (1989).
  35. Reilly, S. Reinforcement value of gustatory stimuli determined by progressive ratio Performance. Pharmacol. Biochem. Behav. 63 (2), 301-311 (1999).
  36. Zittel-Lazarini, A., Cador, M., Ahmed, S. H. A critical transition in cocaine self-administration: Behavioral and neurobiological implications. Psychopharmacology. 192 (3), 337-146 (2007).
  37. Stanhope, K. L., Havel, P. J. Endocrine and metabolic effects of consuming beverages sweetened with fructose, glucose, sucrose, or high fructose corn syrup Am. J. Clin. Nutr. 88 (6), 17335-17375 (2008).
  38. Deroche-Gamonet, V., Belin, B., Piazza, P. V. Evidence for addiction-like behaviour in the rat. Science. 305, 1014-1017 (2004).

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