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Artigo de método

In vivo de imagens de Dauer específica Neuronal Remodelação em C. elegans

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DOI:

10.3791/51834

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4 de setembro de 2014

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Neste artigo

Resumo

Após a exposição a estressores ambientais específicos, o nematóide Caenorhabditis elegans sofre extensa plasticidade fenotípica para entrar em um estágio juvenil 'dauer' resistente ao estresse. Apresentamos métodos para a indução controlada e imagem da neuroplasticidade durante o dauer.

Resumo

Os mecanismos que controlam a plasticidade fenotípica induzida por estresse em animais são muitas vezes complexas e difíceis de estudar in vivo. Um exemplo clássico de plasticidade induzida por estresse é a fase de Dauer C. elegans. Dauers estão numa fase de desenvolvimento larvar alternativa formada em condições de baixas concentrações de alimentos de bactérias e concentrações elevadas de uma feromona dauer. Dauers exibir extensa plasticidade do desenvolvimento e comportamental. Por exemplo, um conjunto de quatro quadrante interno-labial (IL2Q) neurônios passam por extensa remodelação reversível durante a formação Dauer. Utilizando a entrada de potenciais vias de regulação dauer bem conhecido, um método previamente estabelecido para a produção de dauer bruto feromona de culturas em larga escala de nematóides líquido é demonstrada. Com este método, uma concentração de 50.000 - 75.000 nemátodos / ml de líquido de cultura é suficiente para produzir uma altamente potente feromona dauer bruto. A potência de feromonas em bruto é determined por um bioensaio de resposta à dose. Por fim, os métodos utilizados para in vivo de lapso de tempo de imagem dos IL2Qs durante a formação Dauer são descritos.

Introdução

Plasticidade fenotípica, inclusive plasticidade do desenvolvimento e comportamental, é importante para as adaptações a condições ambientais adversas e é considerada uma força motriz na evolução 1. C. elegans é um organismo modelo frequentemente utilizado para estudos em desenvolvimento e neurobiologia. Sob condições ideais, C. elegans, desenvolvido em quatro fases larvares antes de entrar na fase adulta reprodutiva. No entanto, em condições de baixa disponibilidade de alimentos e altas densidades populacionais, C. elegans pode sofrer uma chave de desenvolvimento e entrar em um estágio Dauer longa vida e estresse resistente 2....

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Protocolo

1. Crude Dauer Feromônio Produção

  1. Crescer OP50 E. coli a partir de uma única colónia O / N a 37 ° C, agitando, em 100 ml de caldo LB a 200 rpm. NOTA: Este cultura D / N pode ser feito com antecedência e guardadas a 4 ° C.
  2. Crescer N2 C. elegans em junho 15-20 cm placas de Petri contendo ágar NGM (ver receita na Tabela 1) inoculadas com 50 ul de E. OP50 coli até que as bactérias está quase esgotada 19.
  3. Faça 5x 250 ml de S mídia (ver receita na Tabela 1) em 1 L frascos Erlenmeyer de 19. NOTA: Esta solução pode ser feita com antecedência.
  4. Crescer uma cultura de OP50 E. ....

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Resultados

A produção de resultados Dauer bruto feromônio em um líquido amarelo (Figura 1) que é tanto calor e frio estável. Alíquotas de feromona bruto são armazenadas a -20 ° C indefinidamente sem qualquer perda na actividade óbvia. Após a produção da feromona, um único bioensaio de dose-resposta é suficiente para uma estimativa da potência. No entanto, para a maioria das experiências, é necessário repetir o bioensaio de 2 - 3 vezes e ter uma média de cada experimento. Os resultados representativos de dois ensai.......

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Discussão

Um exame de neuroplasticidade específicos de dauer e outras alterações morfológicas associadas à Dauer requer controlada e fiável a formação de dauers quer através de mutação genética (mutantes ou seja, daf-c) ou por exposição de animais de tipo selvagem de feromona. Enquanto a utilização de uma mutação genética para induzir dauers é conveniente, pode confundir os resultados. Assim, os dados coletados com mutações daf-C deve ser posteriormente confirmada com tipo selvagem animais induzidos a entrar na .......

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Divulgações

Os autores não têm nada a revelar

Agradecimentos

Agradeço à Dra. Maureen Barr, sob cuja supervisão o fenótipo de remodelação da IL2 foi inicialmente caracterizado. Obrigado ao Dr. C. Britt Carlson pela leitura crítica do manuscrito. O financiamento no laboratório Barr foi do NIH (5R01DK59418) e bolsas de pós-doutorado do USDA (2010-65106-20587) e da Comissão de Pesquisa da Medula Espinhal de Nova Jersey (CSCR12FEL004). O financiamento atual para este trabalho é de uma bolsa ACES FIRE da Universidade de Illinois Urbana-Champaign College of ACES

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
N2 C. elegans Bristol cepaCaenorhabditis Genetics Center
PT2660 myIs13[Pklp-6::gfp] IIIA pedido do laboratório
PT2762 myIs14[Pklp-6::gfp] VA pedido do laboratório
JK2868 qIs56[Plag-2:: gfp] VCaenorhabditis Genetics Center
OP50 E. coliCaenorhabditis Genetics Center
Placas de PetriTritech Research60 mm T3308, 35 mm T3501
NGM ágarVários3 g de NaCl, 17 g de ágar, 2,5 g de peptona em 975 ml H2O autoclavado resfriado a 55° C seguido de 1 ml de colesterol 5 mg/ml em etanol, 25 ml de tampão 1 M KPO4 (pH 6,0), 1 ml de CaCl2, 1 ml de M MgSO4
SVáriosmeios S consistem em solução basal S (1,46 g de NaCl, 0,25 g de K2HPO4, 1,5 g de KH2PO4, 0,25 ml de colesterol 5 mg/ml em etanol e H2O a 250 ml. Autoclavado.) À solução basal S adicionar 2,5 ml de citrato de potássio pH 6,0 (2 g de ácido cítrico mono-hidratado, 29,4 g de citrato tripotássico mono-hidratado, H2O a 100 ml, autoclavado), 2,5 ml de solução de metais traços (1,86 g de EDTA dissódico, 0,69 g de FeSO4  &touro; 7 H2O, 0,2 g MnCl2• 4 H2O, 0,29 g ZnSO4  &touro; 7 H2O, 0,025 g CuSO4  &touro; 5 H2O, H2O a 1 L. Autoclavado e armazenado no escuro), 0,75 ml de 1 M CaCl2 e 0,75 ml de 1 M MgSO4.
Placas de feromônio Dauer para ensaio dose-respostaVariousMix 0,085 g de ágar nobre, 0,5 ml de NaCl 0,513 M e 5 µ l de 5 mg/ml de colesterol dissolvido em etanol em cada um dos 6 tubos de cultura de 15 ml. Adicione feromônio bruto suficiente a cada tubo para criar uma faixa de concentrações. Adicione H2O para trazer o volume para 4.725 ml.  Ferva em um bico de Bunsen até que o ágar se dissolva e depois deixe esfriar a 55 ° C. Adicione 125 ° C. l 1 M KPO4 tampão (pH 6,0), 50 µ l 0,1 M CaCl2, 50 µ l 0,1 M MgSO4 e 50 µ l de 5 mg/ml de sulfato de estreptomicina para cada tubo.  Despeje o conteúdo de cada tubo em uma placa de Petri de 35 mm de diâmetro. Deixe o ágar-ágar solidificar em temperatura ambiente durante a noite (se for mais, armazene em recipiente fechado para evitar secagem excessiva).
Grânulos de microesferas de 0,1 mícronPolysciences Inc.00876-15
Tampão M9Mistura diversa3 g KH2PO4, 6 g Na2HPO4, 5 g de NaCl, 1 ml 1 M MgSO4, H2O a 1 litro. Esterilizar por autoclavagem
SchroederSchroeder

Referências

  1. West-Eberhard, M. J. Developmental Plasticity and Evolution. , Oxford University Press. (2003).
  2. Cassada, R. C., Russell, R. L. The dauerlarva, a post-embryonic developmental variant of the nematode Caenorhabditis elegans. Dev. Biol. 46, 326-342 (1975).
  3. Riddle, D. L., Al....

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Reimpressões e permissões

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