Artigo de método

Aplicação de nanopartículas fluorescentes para estudar Reformas do Sistema Endo-lysosomal por bactérias intracelulares

DOI:

10.3791/52058

⸱

2 de janeiro de 2015

 ,  , 
1Abteilung Mikrobiologie, Fachbereich Biologie/Chemie, Universität Osnabrück

Neste artigo

Resumo

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Este artigo descreve métodos para a síntese e marcação fluorescente de nanopartículas (PN). As NPs foram aplicados em experiências de pulse-chase para rotular o sistema de endo-lisossomal de células eucarióticas. A manipulação do sistema de endo-lisossomal por actividades do agente patogénico intracelular, Salmonella enterica foram seguidas de imagem de células vivas e quantificada.

Resumo

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nanopartículas fluorescentes (PN), com desejável propriedades ópticas e mecânicas química, são ferramentas promissoras para rotular organelas intracelulares. Aqui, apresentamos um método que utiliza ouro-BSA-rodamina NPs para rotular o sistema de endo-lisossômico de células eucarióticas e monitorar manipulações de acolhimento vias celulares pelo patógeno intracelular Salmonella enterica. As NPs foram prontamente internalizado pelas células HeLa e localizadas em endossomos tardios / lisossomos. Infecção por Salmonella induzida rearranjo das vesículas e acúmulo de NPs em estruturas de membrana Salmonella- induzidas. Implantamos o pacote de software Imaris para análises quantitativas de imagens de microscopia confocal. O número de objetos e sua distribuição de tamanho em células não infectadas eram distintas das que estão em células infectados por Salmonella, indicando extremamente remodelação do sistema de endo-lysosomal por WT Salmonella.

Introdução

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nanopartículas fluorescentes (PN), incluindo NPs metálicas, pontos quânticos, o NPS de polímero, o NPS de sílica, pontos de carbono, etc., têm atraído uma atenção considerável nas últimas décadas 1,2. Em comparação com os corantes orgânicos tradicionais, NPs fluorescentes mostram químicas, propriedades ópticas e mecânicas desejáveis, tais como a potência do sinal forte, a resistência à fotodegradação e elevada biocompatibilidade 3,4. Essas vantagens tornam o método de escolha para a detecção intracelular e imagens de células vivas. Além disso, uma variedade de NPs elétron-densas são visíveis por microscopia eletrônica (ME), facilitando a sua utilização para análise microscópica correlacionada, que permite combinação de células vivas de rastreamento com microscopia de luz (ML) e maior resolução em nível ultra-estrutural com EM 5. Por exemplo, NPs de ouro têm sido desde há muito tempo utilizado de forma eficiente em células como biossensores para o diagnóstico sensível vivo, bem como no domínio da imuno-6 de rotulagem. S recentestudies indicam que nanopartículas de ouro com diferentes tamanhos e formas podem ser facilmente captação por uma grande variedade de linhas de células e transporte de rotina, através da via endossomal, por conseguinte, ter grande potencial de ser aplicada para o transporte intracelular de seguimento da vesícula e do sistema de rotulagem de endo-7,8 lisossomal .

Os agentes patogénicos microbianos, tais como Salmonella enterica, Shigella flexneri e histeria monocytogenes, têm desenvolvido diversos mecanismos para invadir as células hospedeiras não fagocíticas 9. Depois de ser internalizado, os agentes patogénicos, quer localizadas no citosol ou sequestrados nos compartimentos ligados à membrana, interage bastante com os seus ambientes de hospedeiro e modulam estes favorecem a sua própria sobrevivência 10. Por exemplo, Salmonella enterica reside e replica dentro de um compartimento phagosomal intracelular denominada -contendo vacúolo Salmonella (SCV) por infecção 11. O SCV amadurecimentotrafega em direção ao aparelho de Golgi, passando por interações contínuas com a via endocítica, e induz a formação de estruturas tubulares extensas, tais como Salmonella filamentos induzidas (SIF), seleção túbulos nexin, Salmonella transportadora secretora induzida por proteínas de membrana (3) SCAMP3 túbulos, etc . 12-14. Estudar como estas bactérias patogênicas manipular vias de células do hospedeiro é essencial para a compreensão de doenças infecciosas.

Aqui, NPs de ouro-BSA-rodamina foram utilizados como marcadores de fluido para rotular o sistema celular hospedeiro endo-lisossomal, e o agente patogénico humano gastrointestinal Salmonella enterica serovar Typhimurium (Salmonella) foi utilizado como um modelo de bactéria para estudar as interacções entre o agente patogénico com o hospedar via endocítica. NPs de ouro-BSA-rodamina intracelulares em células não infectadas e células infectadas com WT ou estirpes mutantes de Salmonella foram fotografadas por um microscópio de varrimento a laser confocal (CLSM).Então Imaris software foi utilizado para quantificar a distribuição de NPs, indicando que a infecção por Salmonella induzida extremo rearranjo dos endossomas / lisossomas. Seguindo a descrição do presente método, as experiências análogas pode ser concebido para controlar destino a longo prazo das NPs internalizadas e para investigar a influência de várias substâncias exógenas ou factores endógenos na via endocítica de células eucarióticas.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Protocolo

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Síntese de 10 nm Nanopartículas de Ouro (Gold PN) 15

  1. Preparar a solução A: adicionar 2 ml 1% de cloreto de ouro aquosa para 160 ml Milli-Q, ou bidestilada, água.
  2. Preparar a solução B: adicionar 8 mL de 1% de tri-citrato de sódio x 2 H2O e ácido tânico 160 ul de 1% em 32 ml de Milli-Q, ou duas vezes destilada, água.
  3. Aquecer a solução A e B a 60 ° C e misturá-los com agitação. Observe a cor azul escuro imediatamente. Observe cor vermelha depois de cerca de 15 min. Em seguida, aquece-se a 95 ° C, mantém-5 min e arrefecer a solução para a TA.
  4. Adicionar uma gota de suspensão de NP para uma grelha revestida de carbono e deixa-se secar ao ar. Verifique o tamanho e morfologia de NPs por microscopia eletrônica de transmissão.

2. Revestimento de Ouro NPs com BSA e Marcando com Rhodamine N-hidroxisuccinimidilo Ester (NHS) 16

  1. Adicionar 900 ul NPs de ouro para um tubo de Eppendorf de 1,5 ml, de centrifugação a 15.000 xg durante 30 min. Opnalmente, preparar vários tubos podem ao mesmo tempo.
  2. Rejeitar o sobrenadante, re-suspender o sedimento em 900 ul esterilizadas água Milli-Q e adicionar 100 ul de 2 mg / ml de BSA / PBS, mistura-se num Vortex a 800 rpm durante 30 min.
  3. Para remover o excesso de BSA, centrifugar a preparação a 15.000 xg durante 60 min.
  4. Desprezar o sobrenadante e re-suspender as NPs de ouro-BSA em 125 mL PBS, adicionar 12,5 mL de 1 M de bicarbonato.
  5. Imediatamente antes da utilização, preparar uma solução 10 mg / ml de rodamina NHS / DMSO, adicionar 30 ul de solução de rodamina / NHS DMSO a 1 ml da suspensão de ouro-BSA PN. Incubar a reacção durante 2 horas (ou O / N) à temperatura ambiente durante 800 rpm, mistura, evitando a exposição à luz.
  6. Purificar as NPs de ouro BSA-rodamina através de diálise contra PBS a 4 ºC com 5 alterações no buffer durante o período de 36 - 48 h.
  7. Para estabilizar NPs, adicionar 10 ul de 200 mg / ml de BSA / PBS em cada 1 ml de NPs de ouro-BSA-rodamina. Para remover a centrífuga livre ou liberado BSA-rodamina, aos 15,000 xg durante 60 min. Ressuspender o sedimento em 2 mg / ml de BSA / PBS, medir a OD 520, e armazenar a 4 ° C, evitando a exposição à luz.
  8. Diluir os PN 10 vezes com Milli-Q ou água bidestilada, adicionar uma gota sobre uma grelha revestida de carbono, e deixar secar ao ar. Verifique o tamanho e morfologia de NPs por microscopia eletrônica de transmissão (TEM).
    Nota: Todos os materiais utilizados para a preparação de NP foram esterilizadas e a operação foi conduzida em uma capa de cultura celular ou em um banco ao lado de uma chama.

3. Cultura de células HeLa

  1. Células HeLa que expressam permanentemente LAMP1-GFP são cultivadas em DMEM com 10% de soro fetal de vitelo (FCS) e cultivadas a 37 ° C numa atmosfera contendo 5% de CO 2.
  2. Semear as células a uma densidade de 50.000 por cavidade em uma lâmina de câmara de 8 poços (Ibidi) e incubar S / N.

4. Cultura de Bactérias

  1. Use Salmonella enterica sorotipo Typhimurium NCTC 12023 wild-type (WT) tensão. Para efeito de comparação, use cepas mutantes Δ ssaV defeituosos no SPI2-T3SS e Δ sifa falta efetoras chave sifa para SIF. Use cepas abrigando plasmídeo pFPV25.1 de expressão constitutiva de GFP reforçada.
    NOTA: As estirpes bacterianas são rotineiramente cultivadas em caldo de Luria-Bertani (LB) com adição de 50 ug / ml de carbenicilina (WT) e LB com adição de 50 ug / ml de carbenicilina e / ou 50 ug / ml de canamicina (Δ ssaV, Δ sifa ) do necessário para manter os plasmídeos.
  2. Inocular uma única colônia de bactérias em 3 ml de LB com antibióticos apropriados e crescer O / N a 37 ºC em condições que agitam para aeração, então diluir 1:31 em fresco LB e continuar o crescimento para 3,5 horas. Neste ponto de tempo, as culturas atingem a fase de log tardia e bactérias são altamente invasivo. A 'drum rolo' é conveniente para incubar culturas tubo de ensaio com arejamento.

5. A infecção das células HeLa pelaSalmonella e Gold-BSA-Rodamina NPs Pulso perseguição de rotulagem (ver Figura 1 para o esquema)

  1. Medida OD600 das bactérias sub-cultivada e dilui-se a OD 600 = 0,2 em 1 ml de PBS (~ 3 x 10 8 ufc / mL), adicionar quantidades apropriadas de bactérias às células HeLa em lâminas de câmaras de 8 poços para atingir uma multiplicidade de infecção (MOI) de 100.
  2. Incubar durante 30 minutos na incubadora de células, lava-se 3 vezes com PBS para remover as bactérias não-internalizadas (este ponto de tempo foi definido como 0 horas após a infecção, ou 0 h pi). Adicionar 300 ul de meio de cultura fresco contendo 100 ug / ml de gentamicina e manter durante 1 hr. Em seguida substituir o meio com meio fresco contendo 10 ug / ml de gentamicina durante o resto do tempo de incubação.
  3. Depois de incubação com meio de cultura contendo 100 ug / ml de gentamicina, durante 1 hora, o meio é substituído por meio de imagiologia (Eagles MEM sem FCS, L-glutamina, bicarbonato de vermelho de fenol e de sódio, com HEPES 30 mM, pH 7,4) containing 10 ug / ml de gentamicina. NPs de ouro-BSA-rodamina são adicionadas a células HeLa para obter uma concentração final de OD 520 = 0,1.
    NOTA: NPs de ouro-BSA-rodamina também podem ser adicionados a células antes da infecção, ou em vários pontos de tempo pi
  4. Após 1 hora de incubação, remover o meio, lavar 3 vezes com PBS, e adicionar 300 ul de meio fresco contendo imagiologia FCS a 10% e 10 ug / ml de gentamicina durante o resto do tempo de incubação.
    NOTA: A duração da incubação pode variar em função da concentração de PN e linhas celulares utilizadas. Para RAW264.7 de macrófagos, observou-se que 30 minutos de incubação com PN a uma concentração de OD 520 = 0,05 permitido interiorização suficiente.

6. Criação de Imagens

  1. Usar um sistema de imagiologia confocal, como um laser de varredura confocal (CLSM) ou de disco rotativo (SD) microscópio com uma câmara de ambiente humidificado para imagem de alta resolução a diferentes pontos de tempo.
  2. Ligue a temperatura control sistema e esperar até que ele é estável. Otimizar as configurações de imagem, como a ampliação, velocidade de digitalização, a resolução, Z-stack etc. Use as configurações de excitação / emissão adequadas para GFP e NPs ouro-BSA-rodamina. Para este protocolo, use uma velocidade de digitalização de 400 Hz, resolução de 512 x 512 pixels e tamanho Z-passo de 0,25 m. Excitar GFP e ouro-BSA-rodamina usando um laser de Ar (488 nm) e um laser de HeNe (543 nm), respectivamente. Incluir uma imagem de campo brilhante (BF) de canal para observar a forma das células. Para outros sistemas de microscopia e condições de infecção, a definição tem que ser ajustado em conformidade.
    NOTA: Use o mesmo laser Ar como fonte de luz de canal e sinal BF foi detectado com um detector multiplicador foto (PMT).
  3. No indicada pontos temporais pi, montar as lâminas de câmara de 8 poços contendo células infectadas no palco microscópio e gravar imagens.

7. Análise de Imagens

  1. Use microscopia software de análise de imagem (veja Salmonella intracelular. Abra os dados clicando em 'Open' e escolher o arquivo.
    NOTA: Como alternativa, os pacotes de software de código aberto, como ImageJ ou FIJI pode ser utilizado para a imagem de análises quantitativas.
  2. Na barra de ferramentas objetos do clique Ultrapasse vista sobre o ícone figure-protocol-1 para adicionar um novo item de superfície. Clique em figure-protocol-2 (Next).
  3. Para analisar uma região de interesse (ROI), selecione um segmento de ROI. Em uma área de visualização, uma seção delimitada-retângulo sobreposto na imagem está representando o ROI. Digite os valores no x- correspondente, y, e os campos Z-, ou clique diretamente nas setas no retângulo de visualização para modificar o tamanho ea posição do ROI. Em seguida, clique figure-protocol-3 = "/ Files / ftp_upload / 52058 / 52058icon2.jpg" /> (Next).
  4. Como um canal de origem, selecione o canal 3 (sinal for Gold-BSA-Rhodamine NPS). Verifique a opção suave para configurar a lisura da superfície resultante. Defina um valor manualmente ou aceite o valor gerado automaticamente. Para Threshold, selecione a opção de intensidade absoluta.
  5. Para o ajuste de limiar, selecione a opção manual e definir um valor. Na área de visualização, uma prévia limiar superfície é exibido em cinza.
  6. Na guia Classificar Surfaces a superfície resultante pode ser filtrado por vários critérios. Um filtro padrão é 'número de voxels> 10', e outros filtros também podem ser incluídos, clicando em "adicionar". Se a filtragem não é necessário, em seguida, elimine todos os filtros, clicando no botão excluir. Clique figure-protocol-4 (Next).
  7. Para concluir a criação do Surface, clique em/files/ftp_upload/52058/52058icon3.jpg "/> (Finish). Na lista de objetos, agora desmarque a caixa para o Volume item e nova superfície criado é exibido na área de visualização.
  8. Exportar as estatísticas. Agora, na vista Ultrapassar a cor dos indivíduos, variar de púrpura para vermelho de acordo com a sua área. E a mesa 'Números Plot Area' mostra a informação de estatísticas (por exemplo, número de identificação e área de objetos). Exportar todas as estatísticas de superfície 1 para um arquivo do Excel através de um clique figure-protocol-5 (Save).

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Resultados

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

NPs de ouro foram gerados por meio de um método bem estabelecido através da redução de ácido cloroáurico por citrato e ácido tânico. Como mostrado na Figura 2A, as NPs de ouro foram sintetizados quase-esféricas com um tamanho de aproximadamente 10 nm. BSA-revestimento e rotulagem rhodamine não influenciou sua morfologia ou tamanho (Figura 2B).

Tem sido relatado que NPs de ouro pode ser prontamente retirado pelas várias células de mamífero e terminou-se nos s...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Discussão

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

O sistema de endo-lisossômico de células de mamíferos controla processos fisiológicos importantes, incluindo a absorção de nutrientes, transdução de sinal mediadas por hormônios masculinos, vigilância imunológica, e apresentação de antígenos 17. Até agora, uma grande variedade de marcadores foram utilizados para a rotulagem das vias de endocitose e estudos de rastreio. Por exemplo, as sondas Lysotracker são sondas fluorescentes acidotropic desenvolvidos pela Molecular Probes (Life Technologies, EUA) para rotu...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Divulgações

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Não há conflitos de interesse declarados.

Agradecimentos

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Este trabalho foi apoiado pela Deutsche Forschungsgemeinschaft pela concessão Z dentro do Sonderforschungsbereich 944 'Fisiologia e Dinâmica dos Microcompartimentos Celulares' e HE1964/18 dentro do programa prioritário 1580.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Cloreto de ouroSigma-Aldrich520918
ácido tânicoSigma-Aldrich403040
Citrato trissódicoSigmaC8532
Albumina de soro bovinoSigmaA2153
NHS-RhodaminePierce46406
DMSOSigmaD8418
HEPESSigmaH3375
GentamicinApplichemA1492
KanamcyinRothT832
CarbenicilinaRoth6344
Lâminas de câmara de 8 poçosIbidi80826cultura de tecidos tratada, estéril
Imaris SoftwareBitplaneversão 7.6várias configurações disponíveis

Referências

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Coto-Garcia, A. M. Nanoparticles as fluorescent labels for optical imaging and sensing in genomics and proteomics. Anal. Bioanal. Chem. 399, 29-42 (2011).
  2. Xie, J., Lee, S., Chen, X. Nanoparticle-based theranostic agents. Adv. Drug Deliv. Rev. 62, 1064-1079 (2010).
  3. Ruedas-Rama, M. J., Walters, J. D., Orte, A., Hall, E. A. Fluorescent nanoparticles for intracellular sensing: a review. Anal. Chim. Acta. 751, 1-23 (2012).
  4. Wu, C., Chiu, D. T. Highly fluorescent semiconducting polymer dots for biology and medicine. Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 52, 3086-3109 (2013).
  5. Giepmans, B. N., Deerinck, T. J., Smarr, B. L., Jones, Y. Z., Ellisman, M. H. Correlated light and electron microscopic imaging of multiple endogenous proteins using Quantum dots. Nat. Methods. 2, 743-749 (2005).
  6. Kumar, D., Saini, N., Jain, N., Sareen, R., Pandit, V. Gold nanoparticles: an era in bionanotechnology. Expert Opin. Drug Deliv. 10, 397-409 (2013).
  7. Dykman, L. A., Khlebtsov, N. G. Uptake of engineered gold nanoparticles into mammalian cells. Chem. Rev. 114, 1258-1288 (2014).
  8. Chithrani, B. D., Ghazani, A. A., Chan, W. C. Determining the size and shape dependence of gold nanoparticle uptake into mammalian cells. Nano Lett. 6, 662-668 (2006).
  9. Finlay, B. B., Cossart, P. Exploitation of mammalian host cell functions by bacterial pathogens. Science. 276, 718-725 (1997).
  10. Bhavsar, A. P., Guttman, J. A., Finlay, B. B. Manipulation of host-cell pathways by bacterial pathogens. Nature. 449, 827-834 (2007).
  11. Malik-Kale, P., et al. Salmonella - at home in the host cell. Front. Microbiol. 2, 125(2011).
  12. Rajashekar, R., Liebl, D., Seitz, A., Hensel, M. Dynamic remodeling of the endosomal system during formation of Salmonella-induced filaments by intracellular Salmonella enterica. Traffic. 9, 2100-2116 (2008).
  13. Schroeder, N., Mota, L. J., Meresse, S. Salmonella-induced tubular networks. Trends Microbiol. 19, 268-277 (2011).
  14. Drecktrah, D., Knodler, L. A., Howe, D., Steele-Mortimer, O. Salmonella trafficking is defined by continuous dynamic interactions with the endolysosomal system. Traffic. 8, 212-225 (2007).
  15. Slot, J. W., Geuze, H. J. A new method of preparing gold probes for multiple-labeling cytochemistry. Eur. J. Cell Biol. 38, 87-93 (1985).
  16. Zhang, Y., Hensel, M. Evaluation of nanoparticles as endocytic tracers in cellular microbiology. Nanoscale. 5, 9296-9309 (2013).
  17. Pollard, T. D., Earnshaw, W. C., Lippincott-Schwartz, J. Chapter 22. Cell Biology. , (2007).
  18. LysoTracker and LysoSensor Probes. , Life Technologies Corporation. Carlsbad, CA. (2013).
  19. Shi, H., He, X., Yuan, Y., Wang, K., Liu, D. Nanoparticle-based biocompatible and long-life marker for lysosome labeling and tracking. Anal. Chem. 82, 2213-2220 (2010).
  20. Hensel, M. Genes encoding putative effector proteins of the type III secretion system of Salmonella pathogenicity island 2 are required for bacterial virulence and proliferation in macrophages. Mol. Microbiol. 30, 163-174 (1998).
  21. Beuzon, C. R., et al. Salmonella maintains the integrity of its intracellular vacuole through the action of SifA. EMBO J. 19, 3235-3249 (2000).

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Reimpressões e permissões

Solicitar permissão para reutilizar o texto ou as figuras deste artigo JoVE

Solicitar permissão

Etiquetas

Infec o por SalmonellaMicroscopia ConfocalNanopart culas de Ouro BSAC lulas HeLaRemodela o de Ves culasAn lise de ImagemMarca o com Nanopart culas

Artigos relacionados