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Artigo de método

Fisiológicas Recordings e RNA Sequenciação dos gustativas Appendages do Mosquito-febre amarela Aedes aegypti

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DOI:

10.3791/52088

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30 de dezembro de 2014

Neste artigo

Resumo

O uso de dois métodos para estimar a expressão do gene nos principais apêndices gustativas de Aedes aegypti, identificamos o conjunto de genes putativamente subjacentes às respostas neuronais para compostos amargos e repulsivas, conforme determinado pelo exame eletrofisiológico.

Resumo

O registro eletrofisiológico dos potenciais de ação dos neurônios sensoriais dos mosquitos fornece aos investigadores um vislumbre da percepção química desses vetores de doenças. Recentemente, identificamos um neurônio sensor amargo no labelo de fêmeas de Aedes aegypti que responde ao DEET e outros repelentes, bem como ao quinino amargo, por meio de investigação eletrofisiológica direta. Essas respostas dos neurônios receptores gustativos levaram ao nosso sequenciamento do mRNA total de amostras masculinas e femininas de labelos e tarsos para elucidar os genes de quimiorrecepção putativos expressos nesses tecidos de quimiorrecepção de contato. As amostras de tarso foram divididas em subtipos pró, meso e metatorácico para ambos os sexos. Em seguida, validamos nosso conjunto de dados conduzindo qRT-PCR nas mesmas amostras de tecido e usamos métodos estatísticos para comparar os resultados entre os dois métodos. Estudos que abordam a função molecular podem agora ter como alvo genes específicos para determinar aqueles envolvidos na percepção repelente por mosquitos. Essas vias receptoras podem ser usadas para rastrear novos repelentes para interromper o comportamento de busca de hospedeiro para conter a propagação de vírus nocivos.

Introdução

Compostos como DEET, Picaridin, Citronelal e IR3535 foram mostrados para repelir os mosquitos de forma eficaz, incluindo os importante vetor da doença Aedes aegypti 1,2. Registramos potenciais de ação de neurônios sensoriais associados com sensilla gustativa específica para determinar as células envolvidas com mosquito repelência. Juntamente com a jusante sequenciação de genes expressos nestes tecidos, que pode identificar os genes mais provável que medeiam as respostas destas células, a fim de rastrear novos compostos para melhorar a capacidade de repelência.

RNA-seq é uma ferramenta poderosa, rapidamente se tornando ....

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Protocolo

1. Cria Ae. adultos aegypti

  1. Ovos eclodem em cerca de ¾ de polegada de água na bandeja rasa. A superlotação irá reduzir o tamanho dos adultos.
  2. Larvas Rear a 25 ° C (12-HL: 12-HD) e se alimentam com comida de peixe chão.
    NOTA: super-alimentação pode reduzir as taxas de sobrevivência.
  3. Remover pupas individualmente por Pasteur pipeta diária e transferir para pratos de plástico (9 cm × 5,5 cm) dentro de pequenos baldes de confinamento, com tampas de malha fina, estabelecendo, assim, 24 grupos etários hr.
  4. Mosquitos adultos alimentar 10% de solução de sacarose por bola de algodão colocado nas paredes de tela ....

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Resultados

As gravações de traço de potenciais de ação de Ae. sensilas gustativa aegypti (Figura 1) demonstrar a eficácia da estimulação directa com uma gama de produtos químicos. Esta técnica pode ser usada para quantificar respostas a qualquer químico estimulador contando picos de uma determinada amplitude e duração ao longo de um intervalo de tempo razoável (geralmente menos do que 500 ms). Gravações de rastreamento deve ser facilmente reproduzíveis sob um dado conjunto de condições experiment.......

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Discussão

O aspecto mais desafiador de potenciais de ação de gravação de sensilla gustativa é decidir quais as respostas são "normais". Quando se emprega única ponta sensillum gustativa gravação pela primeira vez para uma determinada espécie de inseto, o número total e sensibilidade dos neurônios dos receptores gustativos (GRNs) são provavelmente desconhecido. Muitas gravações preliminares são primeiros obrigados a decidir o alcance e as concentrações de produtos químicos para testar. Neste exemplo, que começaram com a .......

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Divulgações

Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

Os autores agradecem a Bryan T. Vinyard do USDA, Serviço de Pesquisa Agrícola, Henry A. Wallace Beltsville Agricultural Research Center, Biometrical Consulting Service, Beltsville, MD pelas análises estatísticas. Este trabalho foi apoiado em parte por uma doação ao JCD do Programa de Pesquisa de Proteção de Combatentes de Guerra Implantado (DWFP) financiado pelo Departamento de Defesa por meio do Conselho de Gerenciamento de Pragas das Forças Armadas (AFPMB).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Capilar de vidroA-M Systems628000Standard, 1,5 mm X 0,86 mm, 4"Silver
wireA-M Systems7875.015" nu
Fio de tungstênioAlfa Products3690,127 mm de diâmetro
Pinça finaFine Science Tools11252#5SF Estágio
refrigeradoBioQuip Products1429Chill Pré-amplificador de mesa
pré-amplificadorSyntechTaste Probe
para eletrofisiologiaSoftware SyntechAutospikepara eletrofisiologia
Comida para peixes TetraMinGrânulos de comida para peixestropicais comida de peixe moída a pó fino
TRIzolLife Technologies15596-026Reagente de isolamento
RNA RNeasy Plus Mini KitQiagen74136inclui eliminador de gDNA e colunas de rotação RNeasy
Espectrofotômetro NanodropProdutos Nano DropEspectrômetro de mesaND-1000
R estatísticasfreeware (criado por Robert Gentleman e Ross Ihaka)www.r-project.orgUse a função lm do pacote stats e a função equiv.boot do pacote de equivalência no ambiente de computação R.
Suporte para tubos de 1,5 mlEvergreen240-6388-030Despeje nitrogênio líquido em alguns poços vazios para congelar e moer o tecido.
Tubos de coleta de 1,5 ml com pilãoGrainger6HAX6RNase free
CentrifugeThermo Scientific11178160Gire o tecido congelado para mantê-lo no fundo do tubo de 1,5 ml.
Primer-BLAST Primer Ferramenta de designNCBIn / a
Inox Software de

Referências

  1. Klun, J. A., Khrimian, A., Debboun, M. Repellent and deterrent effects of SS220, picaridin, and DEET suppress human blood feeding by Aedes aegypti, Anopheles stephensi, and Phlebotomus papatasi. J. Med. Entomol. 43 (1), 34-39 (2006).
  2. Dickens, J. C., Bohbot, J. D.

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Reimpressões e permissões

Etiquetas

Registro de Neurônios GustativosRegistro EletrofisiológicoDissecação de TecidosIsolamento de RNA TotalValidação por qPCRContagem de SpikesGenes de QuimiorrecepçãoTecidos Gustativos