O protocolo para fabricação e operação de dispositivos de desumidificação em campo (Field-DW) é descrito, bem como os estudos preliminares dos efeitos dos campos elétricos no conteúdo das gotículas.
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Artigo de método
Aproveitando-se de Redução Interação gota-superfície para otimizar o transporte de Bioanalytes em microfluídica Digital
Neste artigo
Resumo
Resumo
A microfluídica digital (DMF), uma técnica de manipulação de gotículas, é uma alternativa promissora para o desenvolvimento de plataformas "lab-on-a-chip". Freqüentemente, o movimento das gotículas depende do umedecimento de uma superfície, diretamente associado à aplicação de um campo elétrico; As interações de superfície, no entanto, tornam o movimento dependente do conteúdo das gotículas, limitando a amplitude das aplicações da técnica.
Algumas alternativas têm sido apresentadas para minimizar essa dependência. No entanto, eles dependem da adição de espécies químicas extras à gotícula ou seus arredores, o que poderia interagir com as porções das gotículas. Enfrentando esse desafio, nosso grupo desenvolveu recentemente dispositivos Field-DW para permitir o transporte de células e proteínas em DMF, sem aditivos extras.
Aqui, o protocolo para fabricação e operação do dispositivo é fornecido, incluindo a interface eletrônica para controle de movimento. Também continuamos os estudos com os dispositivos, mostrando que organismos modelo multicelulares, relativamente grandes, também podem ser transportados, sem dúvida não afetados pelos campos elétricos necessários para a operação do dispositivo.
Introdução
A miniaturização dos dispositivos que funcionam com líquidos é de suma importância para o desenvolvimento de plataformas "lab-on-a-chip". Nesse sentido, as duas últimas décadas têm testemunhado um progresso significativo na área da microfluídica, com uma variedade de aplicações. 1-5 Contrastando com o transporte de fluidos em canais fechados (canal microfluídicos), DMF manipula gotas em matrizes de eletrodos. Um dos méritos mais atraentes desta técnica é a ausência de partes móveis para o transporte de fluidos, e movimento é imediatamente interrompida ao desligar sinais elétricos.
No entanto, o movimento das gotículas é dependente de conteúdos das gotículas, certamente uma característica indesejável para uma plataforma universal "lab-on-a-chip". Gotículas contendo proteínas e outros analitos aderir a superfícies do dispositivo, tornando-se inabalável. Indiscutivelmente, esta tem sido a principal limitação para o alargamento do âmbito de aplicações DMF; 6-8alternativas para minimizar a proliferação indesejada superfície envolvem a adição de espécies químicas extras para a gota ou seus arredores, o que poderia afetar o conteúdo da gota.
Anteriormente, o nosso grupo desenvolveu um dispositivo para permitir o transporte de células e proteínas em DMF, sem aditivos adicionais (dispositivos Campo-DW). 9 Isto foi conseguido através da combinação de uma superfície com base na fuligem vela, 10 com uma geometria do dispositivo que favorece a gotícula de rolamento e leva a uma força ascendente sobre a gotícula, diminuindo ainda mais a interacção gotícula-superfície. Nesta abordagem, gota movimento não está associado a molhar a superfície 11.
O objectivo do método descrito abaixo é detalhado para produzir um dispositivo de DMF capaz de transportar gotas contendo proteínas, células e organismos inteiros, sem aditivos adicionais. Os dispositivos de campo-DW pavimentar o caminho para as plataformas totalmente controlados que trabalham em grande parte de forma independente da gota de químicory.
Aqui, nós também apresentam simulações mostra que, apesar da alta tensão necessária para o funcionamento do dispositivo, a queda de tensão através da gotícula é uma pequena fracção da tensão aplicada, indicando efeitos insignificantes sobre bioanalytes no interior da gotícula. Na verdade, os testes preliminares com Caenorhabditis elegans (C. elegans), um nemátodo usado para uma variedade de estudos em biologia, mostram que os vermes nadar sem perturbações como as tensões são aplicadas.
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Protocolo
NOTA: Nos procedimentos descritos a seguir, as diretrizes de segurança do laboratório deve ser sempre seguido. De particular importância é a segurança quando se lida com alta voltagem (> 500 V) e de manuseamento de produtos químicos.
1. revestimento de um substrato condutor com vela Fuligem
- Cobre corte de metal em retângulos (75 x 43 mm, 0,5 mm de espessura). Limpe cada substrato de cobre por imersão em etchant cobre por cerca de 30 segundos, lavar com água corrente por cerca de 20 segundos, e seque com papel.
NOTA: Se estiver usando o método 1 a seguir, alterar as dimensões de 75 x 25 mm para caber na máquina. - Varrer uma vela de parafina iluminada sob o substrato de cobre durante 30-45 segundos, para se obter um revestimento de fuligem aproximadamente uniforme (cerca de 40 um de espessura). Mantenha o substrato em ~ 1 cm para dentro da chama. Não toque na superfície fuligem frágil.
2. Proteger a camada de fuligem com Revestimento
NOTA: A camada de fuligem é muito frágil, E devem ser revestidos para protecção. Duas alternativas simples (métodos 1 e 2 abaixo) são sugeridos aqui, mas protocolos mais robustos estão atualmente em desenvolvimento.
- Método 1
- Coloque a amostra para o evaporador de metal ou de sistema de pulverização. Seguindo os procedimentos de funcionamento do sistema, evacuar a câmara, e começar a deposição controlada de ouro sobre a camada de fuligem (150-200 nm). Deixe o dispositivo de arrefecer até à temperatura ambiente.
- Dip-revestir o substrato metalizado em uma solução de 1-dodecanotiol (1% v / v, em etanol a 95%, ACS / grau USP), durante 10 minutos dentro de uma capa química. Então, segurando o aparelho em um ângulo perto de 60 °, lavar cuidadosamente a superfície com várias gotas de etanol só. Deixe os dispositivos seca, durante a noite.
- Método 2
- Em uma capa de química, imediatamente depois do revestimento do substrato com a fuligem e ao mesmo tempo o substrato ainda está quente da chama da vela, depositar algumas gotas de líquido fluorado sobre um lado dosubstrato, e inclinar o substrato a um ângulo próximo de 90 °. Deposite mais gotas, e deixá-los rolar sobre a superfície inteira fuligem.
NOTA: Quando a gota cai em um ponto, a fuligem serão lavados daquela área. Deixe as gotículas de líquido propagação fluorado, tanto quanto possível. - Asse o substrato sobre uma placa quente (160 ° C durante 15 min) no interior de uma capa química.
- Deixe o substrato se sentar durante a noite à temperatura ambiente antes do uso. Armazenar indefinidamente.
- Em uma capa de química, imediatamente depois do revestimento do substrato com a fuligem e ao mesmo tempo o substrato ainda está quente da chama da vela, depositar algumas gotas de líquido fluorado sobre um lado dosubstrato, e inclinar o substrato a um ângulo próximo de 90 °. Deposite mais gotas, e deixá-los rolar sobre a superfície inteira fuligem.
(12 Adaptado de Abdelgawad et al.) 3. Fabricação de Top Eletrodos
- Desenhe os eletrodos utilizando software de design gráfico. Cada eletrodo é de 2 mm de comprimento, 0,3 mm de largura, ea diferença entre os eletrodos é de 0,3 mm. A diferença entre contatos (para encaixar no conector, veja abaixo) é de 2,3 mm (Figura 1).
- Apare um laminado de cobre flexível (35 mm de espessura) para o formato Monarch (3,87 x 7,5 polegadas). Use outros tamanhos if compatível com a impressora. Coloque o laminado na bandeja de alimentação manual de uma impressora colorida.
- Certifique-se de usar o "preto rico", ou "Registro de preto", ao imprimir na folha de cobre (ver 12 Abdelgawad et al. Para mais detalhes) para permitir que uma camada mais densa de tinta preta sobre o substrato de cobre, protegendo o padrão impresso durante gravura . Deixe o substrato seco impresso completamente, durante a noite.
- Dentro de uma capa química, aquecer (40 ° C) num copo com 50 ml de produto corrosivo de cobre. Mergulhe o laminado impresso no copo e agite-o na solução por cerca de 10 min. Tempo de condicionamento depende da solução de produto corrosivo de cobre. A cada poucos minutos, verifique a corrosão e ver se o padrão está intacta.
- Cuidadosamente lavar o laminado com água, e remover o revestimento com acetona e etanol na capa química. Lavar uma vez, e seca suavemente com a toalha de papel laminado.
- Cuidadosamente anexar o laminado com eletrodos a uma ABLslides ss (75 x 25 mm, ~ 1 mm de espessura), usando fita dupla face. Evite bolsas de ar.
- Anexar um filme de perfluoroalcoxi PFA aos eletrodos utilizando fita. Isso serve para evitar o contato acidental dos eletrodos com a gota, o que prejudica top eletrodos devido a curto-circuito.
4. A interface eletrônica (circuito na Figura 2)
- Soldar os relés e os capacitores C a uma placa de circuito universal.
- Monte o restante dos 10 pilotos de revezamento em uma placa de ensaio sem solda para circuitos eletrônicos.
- Fio de entrada de cada motorista relé para um canal na placa de controle.
- Tirar com cuidado os melhores eletrodos em um conector (Figura 3). Fio condutor de saída de cada retransmissão a um eléctrodo de topo, como mostrado na figura. Note que existe um contato do conector aterrado entre um par de fios de relés, para minimizar o ruído elétrico.
NOTA: O conector fica em uma plataforma ajustável para controlar tele distância (0,1-0,5 mm) entre o substrato superior e inferior (fuligem-revestido). - Utilizar um programa para controlar a temporização para a aplicação de alta voltagem (HV) (cerca de 0,8 seg) para quatro eléctrodos, ao mesmo tempo, deslocando um eléctrodo na direcção de movimento (ou seja, durante 0,8 seg, accionar 1234; em seguida, 2345, 3456, etc. ., 0,8 segundos para cada grupo, e depois para trás, move-se de forma de gotículas na direcção oposta, como bem).
5. Visualização Gota e Manuseio
- Para gravar gotícula de movimento, utilizar o sistema de visualização, o qual é composto por uma 24X - montagem de ampliação 96X combinado com uma câmara CCD. Ligue o gravador de vídeo para a câmera usando S-video.
- Pipetar uma gota de 4 ul contendo C. elegans em meios na parte inferior do substrato revestido de fuligem.
- Trazer os melhores eletrodos para ~ 0,3 milímetros acima da gota. A gota deve ser próximo ao centro, logo abaixo do quinto eletrodo, para facilitar a operação.
- Ligue a interface eletrônica e alta tensão (500 V RMS), e ajustar a distância do eléctrodo superior à gota, até que começa a se mover. Não deixe que os melhores eletrodos tocar a gota.
- Recolha de dados de registo do número de transferências de gotículas de sucesso no dispositivo em resposta a impulsos eléctricos. Uma experiência de sucesso é caracterizado por, pelo menos, 700 transferências de gotículas, ou seja, uma transferência após cada pulso eléctrico.
- Recolha de dados continuamente, até que a gotícula não mais mover-se em resposta a 5 a 10 pulsos.
NOTA: Quando a superfície começa a degradar-se, o movimento pode ser restaurado, trazendo os melhores eléctrodos mais perto da gotícula.
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Resultados
Anteriormente, foram utilizados dispositivos Campo-DW para permitir o movimento de proteínas em DMF. Em particular, as gotas com albumina de soro bovino (BSA) pode ser movido a uma concentração 2000 vezes mais elevada do que o relatado anteriormente por outros autores (sem aditivos). Isto era devido à interacção reduzida entre as gotículas e a superfície; A Figura 4 mostra uma gota contendo fluorescentemente marcado com BSA (ver Freire et al 9 para obter mais informação sobre os ...
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Discussão
A etapa mais crítica do protocolo é a proteção da camada de fuligem, diretamente associado ao sucesso em gotas em movimento. Metalização da camada de fuligem (método 1 acima) permite que perto de 100% de sucesso de fabricação. No entanto, o tempo máximo de operação é de cerca de 10 min; possivelmente, fracções de gotículas são molhar a fuligem através de furos na camada de metal. Revestimento da camada de fuligem com o líquido fluorado é a alternativa mais fácil e rápida, e exige o mínimo de recursos, mas apenas 40-50% ...
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Divulgações
Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.
Agradecimentos
Agradecemos à Fundação Lindback de apoio financeiro, e Dr. Alexandre Sidorenko e Elza Chu para discussões frutíferas e assistência técnica, eo professor Robert Smith para a assistência com o C. Os ensaios de elegans.
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Materiais
| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| Vela | Qualquer vela de parafina | ||
| Sistema de pulverização catódica | Denton Vacuum, Moorestown, NJ | Revestidor de pulverização catódica Mesa V HP equipado com um alvo Au. | |
| 1-dodecanetiol | Sigma-Aldrich | 471364 | |
| Teflon | Dupont | AF-1600 | |
| Fluorinert FC-40 | Sigma-Aldrich | F9755 | Líquido fluorado: Prepare a resina Teflon-AF em Fluorinert FC-40, 1:100 (p/p), para criar o revestimento hidrofóbico. |
| Software de design gráfico -Adobe Illustrator | Adobe Systems | Outros softwares também podem ser usados. | |
| Laminado de cobre | Dupont | LF9110 | |
| Xerox | Phaser 6360 ou similar | Verifique a compatibilidade com "preto rico" ou "preto de registro" (veja o texto). | |
| Filme de Perfluoroalcoxi (PFA) | 84955K22 | ||
| Placa de circuito universal | Allied Electronics | 70219535 ou similar | |
| Conector | Allied Electronics | 5145154-8 ou similar | |
| Placa de controle e programa de controle (software LabView) | National Instruments | NI-6229 ou similar | |
| Amplificador de alta tensão | Trek | PZD700 | |
| Capacitores C e C1, 100 nF, 60 V | Allied | ||
| Transistor T, NPN | Aliado | ||
| Diodo D, 1N4007 | Aliado | ||
| Relé | Aliados | ||
| Sistema de visualização | Edmund Optics | VZM 200i ou similar | Ampliação do sistema 24X – 96X. É combinado com uma câmera colorida Hitachi KP-D20B 1/2 pol. |
| Gravador | Sony | GV-D1000 NTSC ou similar | Ele é conectado à câmera por um cabo S-video. |
| Simulações | COMSOL Multiphysics | V. 4.4 |
Referências
- Fair, R. B. Digital microfluidics: is a true lab-on-a-chip possible. Microfluid Nanofluid. 3 (3), 245-281 (2007).
- Gupta, S., Alargova, R. G., Kilpatrick, P. K., Velev, O. D. On-Chip Dielectrophoretic Coassembly of Live Cells and Particles into Responsive Biomaterials. Langmuir. 26 (5), 3441-3452 (2009).
- Shih, S. C., et al. Dried blood spot analysis by digital microfluidics coupled to nanoelectrospray ionization mass spectrometry. Anal Chem. 84 (8), 3731-3738 (2012).
- Gorbatsova, J., Borissova, M., Kaljurand, M. Electrowetting-on-dielectric actuation of droplets with capillary electrophoretic zones for off-line mass spectrometric analysis. J Chromatogr. 1234 (0), 9-15 (2012).
- Qin, J., Wheeler, A. R. Maze exploration and learning in C. elegans. Lab Chip. 7 (2), 186-192 (2007).
- Koc, Y., de Mello, A. J., McHale, G., Newton, M. I., Roach, P., Shirtcliffe, N. J. Nano-scale superhydrophobicity: suppression of protein adsorption and promotion of flow-induced detachment. Lab Chip. 8 (4), 582-586 (2008).
- Perry, G., Thomy, V., Das, M. R., Coffinier, Y., Boukherroub, R. Inhibiting protein biofouling using graphene oxide in droplet-based microfluidic microsystems. Lab Chip. 12 (9), 1601-1604 (2012).
- Kumari, N., Garimella, S. V. Electrowetting-Induced Dewetting Transitions on Superhydrophobic Surfaces. Langmuir. 27 (17), 10342-10346 (2011).
- Freire, S. L. S., Tanner, B. Additive-Free Digital Microfluidics. Langmuir. 29 (28), 9024-9030 (2013).
- Deng, X., Mammen, L., Butt, H. -J., Vollmer, D. Candle Soot as a Template for a Transparent Robust Superamphiphobic Coating. Science. 335, 67-70 (2011).
- Kang, K. H. How Electrostatic Fields Change Contact Angle in Electrowetting. Langmuir. 18 (26), 10318-10322 (2002).
- Abdelgawad, M., Watson, M. W. L., Young, E. W. K., Mudrik, J. M., Ungrin, M. D., Wheeler, A. R. Soft lithography: masters on demand. Lab Chip. 8 (8), 1379-1385 (2008).
- Barbulovic-Nad, I., Yang, H., Park, P. S., Wheeler, A. R. Digital microfluidics for cell-based assays. Lab Chip. 8 (4), 519-526 (2008).
- Brenner, S. The genetics of Caenorhabditis elegans. Genetics. 77 (1), 71-94 (1974).
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Reimpressões e permissões
