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Artigo de método

Isolamento e injecção intravenosa de Murino de Medula Óssea Derivado monócitos

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DOI:

10.3791/52347

27 de dezembro de 2014

Neste artigo

Resumo

Aqui apresentamos um protocolo que gera grandes quantidades de monócitos murinos a partir de medula óssea heterogênea para aplicações translacionais. Em comparação com outros, esse novo método ajuda a reduzir o número de animais sacrificados e reduz os custos, evitando métodos caros, como a separação de células magnéticas de alto gradiente (MACS).

Resumo

Como um subtipo de leucócitos e progenitores de macrófagos, os monócitos estão envolvidos em muitos processos importantes dos organismos e são frequentemente objeto de vários campos da ciência biomédica. O método descrito abaixo é uma maneira simples e eficaz de isolar monócitos murinos da medula óssea heterogênea.

A medula óssea do fêmur e da tíbia de camundongos Balb/c é colhida por lavagem com solução salina tamponada com fosfato (PBS). A suspensão celular é suplementada com fator estimulador de colônias de macrófagos (M-CSF) e cultivada em superfícies de fixação ultrabaixa para evitar a diferenciação de monócitos desencadeada pela adesão. As propriedades e diferenciação dos monócitos são caracterizadas em vários intervalos. A classificação de células ativadas por fluorescência (FACS), com marcadores como CD11b, CD115 e F4/80, é usada para fenotipagem. No final do cultivo, a suspensão é composta por 45%± 12% de monócitos. Ao remover macrófagos adesivos, a pureza pode ser aumentada em até 86%± 6%. Após o isolamento, os monócitos podem ser utilizados de várias maneiras, e um dos métodos mais eficazes e comuns para entrega in vivo é a injeção intravenosa da veia da cauda.

Esta técnica de isolamento e aplicação é importante para estudos de modelos de camundongos, especialmente nas áreas de inflamação ou imunologia. Os monócitos também podem ser usados terapeuticamente em modelos de doenças de camundongos.

Introdução

O isolamento de monócitos é importante e crítico para muitos estudos in vitro e in vivo. Essas células são alvos de doenças como doença arterial periférica, doença cardíaca coronária ou outras doenças isquêmicas, uma vez que o crescimento dos vasos colaterais é fortemente impulsionado pela inflamação local. As respostas inflamatórias incluem ativação endotelial e recrutamento local de leucócitos, principalmente monócitos, que então amadurecem em macrófagos e criam um ambiente altamente arteriogênico secretando múltiplos fatores de crescimento para induzir a remodelação de uma arteríola em uma artéria colateral funcional1-3. Os monócitos ta....

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Protocolo

Este estudo foi realizado com autorização do Estado da Saxônia e Saxônia-Anhalt, Regierungspraesidium Dresden / Halle, de acordo com a Seção 8 da lei alemã de protecção dos animais (24D-9168,11-1 / 2008-24).

1 Isolamento celular

1.1 Preparação do fémur e da tíbia

  1. Anestesiar o mouse usando uma concentração de isoflurano 5% vaporizando isoflurano em uma lixeira fechada. Após o mouse parou de se mover por 3 s, realizar o deslocamento cervical.
  2. Desinfectar os membros posteriores com etanol (96%). Retire a pele e os músculos e os ossos separar com um bisturi estéril.
    1. Comece com uma incisã....

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Resultados

A solução de células extraídas da medula óssea de murídeo consiste em vários tipos de células. Os principais tipos de células são linfócitos, granulócitos e monócitos. Os tipos de célula pode ser estimado pelo tamanho e granularidade, que é mostrado na Figura 1, tanto para as suspensões nativas e as células colhidas depois de 5 dias de diferenciação. Observe a composição celular mudando durante o cultivo. No entanto, a classificação exata das populações deve contar com expressão distintiva de marcadores.......

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Discussão

Nós descrevemos um método simples e de baixo custo para isolar grandes quantidades de monócitos murino de medula óssea. Em comparação com outros protocolos utilizando sangue periférico, que obtêm rendimentos de monócitos 5 de 1,4 x10 6, somos capazes de obter rendimentos mais elevados, de 11 x 10 6 ± 3 x 10 6 monócitos a partir de um único rato doador.

Ao considerar os desafios com este método, é importante mencionar o potencial de contaminação qua.......

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Divulgações

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

Agradecimentos

Este trabalho foi apoiado pela DFG (Deutsche Forschungsgemeinschaft, Fundação Alemã de Pesquisa) SFB 854 (Sonderforschungsbereich, centro de pesquisa colaborativa).

Obrigado a Hans-Holger Gärtner, Audiovisuelles Medienzentrum, Otto-von-Guericke University Magdeburg, Magdeburg, Alemanha, pelo suporte técnico.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Placa de 6 poços de ultra-baixa fixaçãoCorning Incorporated, NY, EUAPlaca de 6 poços de ultra-baixa-fixação, com tampa, estéril
8- 12 semanas de idade, macho, camundongos balb/c Charles River, Sulzfeld, Alemanha
Placa de 96 poçosGreiner bio one GmbH, Frickenhausen, Alemanha
Mancha de células mortas azuisLife technologies GmbH, Darmstadt, Alemanha
Albumina de soro bovinoGE Healthcare, Freiburg, AlemanhaFração V, pH 7,0
CânulasB. Braun, Melsungen AG, Melsungen, Alemanha28G, 30G
CD115eBioscience, San Diego, EUA12-1152
CD11beBioscience, San Diego, EUA53-0112
Placa de cultura de célulasGreiner Bio-One GmbH, Frickenhausen, AlemanhaCom tampa, centrífuga estéril
BeckmanCoulter GmbH, Krefeld, AlemanhaAllegra® Centrífuga X-15R
Creme depilatórioVeet, Mannheim, Alemanha
Agente de desinfecçãoSchü lke& Mayr GmbH, Norderstedt, AlemanhaKodan Tinktur forte
Bisturi descartável No.10 Navalha de segurança de penas Co.Ltd, Osaka, Japão 
EDTASigma Aldrich, Hamburgo, Alemanha
Etanol 96% Otto Fischar GmbH und Co KG, Saarbrü cken, Alemanha
Unidade de extração PipetusHirschmann Laborgerä te GmbH & Co.KG, Eberstadt, Alemanha
F4/80AbD Serotec, Dü sseldorf, AlemanhaMCA497APC
Buffer FACS Fabricado pelo nosso grupo com componentesPBS, 0,5% BSA, 0,1% NaN3
FACS dispositivoBecton, Dickinson and Company, Franklyn Lakes, New Jersey, EUABD FACS Canto II
Tubos FACS       Becton, Dickinson and Company, Franklyn Lakes, New Jersey, USA
Pipeta Falcon® BectonDickenson Labware, NY, USA
Soro fetal para bezerrosSigma Aldrich, Hamburgo, Alemanha
Pinça finaRubis, Stabio, Suíça
LuvasRö sner-Matby Meditrade GmbH, Kiefersfelden, Alemanha
Gr1eBioscience, San Diego, EUA53-5931
Placa de aquecimento Labotect GmbH, Gö ttingen, Alemanha Placa Quente 062
IncubadoraEwald Innovationstechnik GmbH, Bad Nenndorf, AlemanhaIncu safe
IsofluranBaxter Deutschland GmbH, Unterschleiß heim, Alemanha
Microscópio ópticoCarl Zeiss SMT GmbH, Oberkochen, AlemanhaAxiovert 40 ° C
Fator Estimulador de Colônias de MacrófagosSigma Aldrich, Hamburgo, AlemanhaSRP3110 
Agitador mecânicoIKA, Staufen, Alemanhams2 minishaker
Medium 199PAA Laboratories GmbH, Pasching, ÁustriaWarm in 37 ° C banho-maria antes
do uso Micro tubos de ensaioEppendorf AG, Hamburgo, Alemanha
Bancada de trabalho microbiológicaThermo Electron, LED GmbH, Langenselbold, AlemanhaHera safe
Tampão de lavagem de monócitos Fabricado pelo nosso grupo com componentesPBS, 0,5% BSA, 2 mM EDTA
Mouse restrainerVários
NaClBerlin Chemie AG, Berlim, Alemanha
NaN3 (ácido de sódio)Sigma Aldrich, Hamburgo, Alemanha
Câmara de contagem NeubauerPaul Marienfeld GmbH und Co.KG, Lauda-Kö nigshofen, Alemanha
Células de nylonBecton, Dickinson and Company, Franklyn Lakes, Nova Jersey, EUAFiltro de células, 70 µ m tamanho da malha
Penicilina/EstreptomicinaSigma Aldrich, Hamburgo, Alemanha
Fosfato tamponado salinaLife technologies GmbH, Darmstadt, AlemanhapH 7.4, pipetas estéreis
Eppendorf AG, Hamburgo, Alemanha10µ l/100µ l/200µ l/1.000µ l
Pipetas sorológicasGreiner
Unidade de sucçãoIntegra bioscience, Fernwald, AlemanhaConforto Vacusafe
Tesoura cirúrgicaWord Precision Instruments, Inc., Sarasota, EUA
B. Braun, Melsungen AG, Melsungen, AlemanhaSeringa de insulina Omnifix® -F de 1 ml
Tubos com tampaGreiner bio one GmbH, Frickenhausen, AlemanhaTubos Cellstar de 15 ml/50 ml Banho-maria
mornoJulabo Labortechnik GmbH, Seelbach, AlemanhaJulabo SW22
únicos únicos Bio-One GmbH, Frickenhausen, Alemanha Cellstar 5 ml, 10 ml Seringa

Referências

  1. Herold, J., et al. Transplantation of monocytes: a novel strategy for in vivo augmentation of collateral vessel growth. Hum Gene Ther. 15 (1), 1-12 (2004).
  2. Herold, J., Tillmanns, H., Xing, Z., Strasser, R. H., Braun-Dullaeus, R. C.

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Reimpressões e permissões

Etiquetas

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