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Artigo de método

A auto-montagem de formas bidimensionais complexos de ADN de cadeia simples Azulejos

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DOI:

10.3791/52486

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8 de maio de 2015

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Neste artigo

Resumo

DNA tiling é uma abordagem eficaz para fazer nanoestruturas programáveis. Descrevemos os protocolos para construir formas bidimensionais complexas pela automontagem de blocos de DNA de fita simples.

Resumo

Os métodos atuais em nanoarquitetura de DNA projetaram com sucesso uma variedade de estruturas 2D e 3D usando princípios de automontagem. Neste artigo, descrevemos protocolos detalhados sobre como fabricar formas 2D sofisticadas por meio da automontagem de blocos de DNA de fita simples endereçáveis exclusivamente que atuam como pixels moleculares em uma tela molecular. Cada bloco de fita simples (SST) é uma fita de DNA de 42 nucleotídeos composta por quatro domínios modulares concatenados que se ligam a quatro vizinhos durante a automontagem. A tela molecular é uma estrutura retangular auto-montada a partir de SSTs. Uma forma 2D complexa prescrita é formada selecionando os pixels moleculares constituintes (SSTs) de uma tela molecular de 310 pixels e, em seguida, submetendo as fitas correspondentes ao recozimento de um pote. Devido à natureza modular da abordagem SST, demonstramos a escalabilidade, versatilidade e robustez desse método. Comparado com métodos alternativos, o método SST permite uma seleção mais ampla de polímeros e sequências de informação por meio do uso de fitas curtas de DNA projetadas e sintetizadas de novo.

Introdução

Anterior ácido nucleico de auto-montagem 1-25 trabalho levou à bem sucedida da construção de uma variedade de estruturas complexas, incluindo ADN 2 - 5,8,10 - 13,17,23 ou RNA 7,22 3,4,7 periódica, 22 e algorítmica 5 bidimensionais treliças, fitas 10,12 e tubos de 4,12,13, cristais 3D 17, poliedros 11 e finitos, 2D formas 7,8. Um método particularmente eficaz é o scaffold origami de DNA, em que uma cadeia simples de andaime é dobrado por muitos fios auxiliares curtas descontínuas, para formar uma forma complexa 9,14 - 16,18 - 21,25.

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Protocolo

1. DNA Sequence projeto

  1. Use software UNIQUIMER 27 para projetar uma estrutura SST-finito, especificando o número de hélices duplas, comprimentos de hélice superior e inferior para cada dupla hélice, eo padrão cruzado para criar um 24H × lona 28T. Depois de definir estes parâmetros, a arquitetura geral (vertente composição eo arranjo complementaridade) é ilustrado graficamente no programa.
  2. Gerar sequências para os fios da estrutura especificada para atender o arranjo complementaridade e requisitos adicionais (se houver). Conceber sequências de ADN, minimizando a sequência de simetria 28 (para a maioria das estruturas).

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    Resultados

    A auto-montagem de SST (Figura 1) vai produzir uma 24H × 28T rectângulo, conforme ilustrado na Figura 2. As sequências de ADN para as diferentes SST pode ser modificada / optimizado para permitir rotulagem estreptavidina (Figura 3 e 4), a transformação de um retângulo para dentro de um tubo (Figura 5), a auto-montagem de SST programável para formar tubos e rectângulos de diversos tamanhos (Figura 10), e a construção de .......

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    Discussão

    No passo de formação da estrutura, é importante manter uma concentração de catiões de magnésio apropriado (por exemplo., 15 mM) na mistura cadeia de ADN para nanoestruturas de DNA auto-montar. Do mesmo modo, no passo de caracterização em gel de agarose / purificação, é importante manter uma concentração de catiões de magnésio apropriado (por exemplo., 10 mM) em gel e o tampão de gel de corrida para reter as nanoestruturas de ADN durante a electroforese. Para a estrutura 24H × 28T rectângulo, testou-se .......

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    Divulgações

    Os autores declaram interesses financeiros conflitantes.

    Agradecimentos

    Este trabalho foi financiado pelo Escritório do Programa de Pesquisa Naval Young Investigator Award N000141110914, o Office of Naval Research Grant N000141010827, NSF Prémio Carreira CCF1054898, do NIH Director New Innovator Award 1DP2OD007292 e um Instituto Wyss para Biologicamente Inspirada Fundo Startup Faculdade de Engenharia (para PY) e Centro de Ciências da Vida Fundo de inicialização (para PC) Tsinghua-Pequim.

    ....

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    Materiais

    Lista de materiais utilizados neste artigo
    NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
    Filamentos de DNA de DNA IntegradaSeção 3.1
    SYBR Mancha de gel de DNA seguroInvitrogenS33102Seção 3.4.2
    Colunas de rotação de extração de gel de DNA Freeze'N SqueezeBIO-RAD731-6166Seção 3.6
    Sondas de alavanca de nitreto afiado de BrukerSondas Bruker AFMSNL10Seção 4.3
    Imageador seguro 2.0 Transiluminador de luz azulInvitrogenG6600Seção 3.6
    Centrífuga 5430REppendorf5428 000.414Seção 3.6
    Microscópio Eletrônico de Transmissão JeolJem 1400Seção 7.4
    Multimodo 8VeecoSeção 4
    Tufão FLA 9000 Scanner a LaserGE Heathcare Life Sciences28-9558-08Seção 3.5
    Água destilada ultrapuraInvitrogen10977-023Seção 3.7.1
    Disco de micaSPI Supplies12001-26-2Seção 4.1
    Disco de montagem de açoTed Pella, Inc.16218Seção 4.1
    grade de cobre revestida de carbono paraMicroscopia Eletrônica TEM SciencesFCF400-Seção 7.2
    pinçasDumont0203-N5AC-POSeção 7.31
    sistema de descarga de brilhoQuorum TechnologiesK100XSeção 7.2
    DNA Motor Tetrad 2 Peltier TermocicladorBIO-RADPTC– 0240GSeção 3.3
    Coruja Easycast B2 Mini Sistemas de Eletroforese em GelThermoScientificB2Seção 3.4.3
    Seekam LE Agarose 500GLonza50004Seção 3.4.1
    GeneRuler 1kb Plus DNA Ladder, Pronto para Uso 75-20000bpThermoScientificSM1333Seção 3.4.4
    Nanodrop 2000c UV-vis EspectrofotômetroThermoScientificSeção 3.7
    Filtro de 0,2 um CorningInc.431219Seção 7.1.2
    Tecnologia

    Referências

    1. Seeman, N. C. Nucleic acid junctions and lattices. J. Theor. Biol. 99 (2), 237-247 (1982).
    2. Fu, T. J., Seeman, N. C. DNA double-crossover molecules. Biochemistry. 32 (13), 3211-3220 (1993).
    3. Winfree, E., Liu, F., Wenzler, L. A., Seeman, N. C.

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    Reimpressões e permissões

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