Abstract
超疏水材料,具有表面具有永久的或亚稳的不可润湿的状态,是对于一些生物医学和工业应用的兴趣。在这里,我们描述了如何静电或电喷射含有可生物降解的,生物相容的脂肪族聚酯( 例如 ,聚己内酯和聚(丙交酯共 -glycolide))的聚合物混合物中,作为主要组分,掺杂有所述聚酯和stearate-构成的疏水共聚物改性的聚(甘油碳酸酯)得到超疏水性生物材料。电纺丝或电喷雾的制造技术提供增强的表面粗糙度和孔隙度,并在纤维或颗粒内,分别。使用低表面能的共聚物的掺杂物,融合与聚酯,并且可以稳定地静电纺丝或电喷雾,得到这些超疏水材料。重要参数,例如纤维的大小,共聚物组合物的掺杂剂和/或共ncentration,以及它们对润湿性的影响进行了讨论。高分子化学和工艺工程的这种组合提供了一个通用方法使用可扩展的技术,这些都可能推广到用于各种应用更广类聚合物来开发应用程序特定的材料。
Introduction
超疏水表面通常被分类为显示出明显的水接触角大于150°的低接触角滞后。这些表面通过引入对低表面能材料的高表面粗糙度建立所得空气-液体-固体界面抵抗润湿1-6制造。根据不同的制造方法,薄或多层超疏水表面,多层超疏水基底涂层,或甚至散装超疏水结构可以制备。此永久或半永久性的防水性]是用于制备自清洁面 7,微流体装置8,防污细胞/蛋白质表面9,10,减阻表面11,和药物递送装置一个有用的性质-12- 15。最近,刺激响应超疏水性材料被描述其中非润湿湿润状态是通过化学引发,物理或环境因素(例如,光,pH,温度,超声,和施加的电势/电流)14,16-20,和这些材料都发现使用其他应用程序21-25。
第一个合成超疏水表面被处理材料的表面与methyldihalogenosilanes 26制备,并且是用于生物医学应用价值有限,所用的材料是不适合在体内使用 。在此,我们描述了从生物相容性的聚合物制备表面和体超疏水材料。我们的方法需要电纺丝或电喷雾含有可生物降解的,生物相容的脂族聚酯作为主要组分,掺杂有所述聚酯和硬脂酸改性的聚(甘油碳酸酯)27-30组成的疏水性共聚物的聚合物混合物。的制造技术提供增强的表面粗糙度和孔隙度上和fibe内RS或颗粒,分别,而采用的共聚物掺杂剂提供了一种低表面能聚合物,融合与聚酯,并且可以稳定地静电纺丝或电喷雾27,31,32。
脂族可生物降解的聚酯如聚(乳酸)(PLA),聚(乙醇酸)(PGA),聚(乳酸- 共 -glycolic乙酸)(PLGA),和聚己内酯(PCL)是在临床上批准的设备中使用的聚合物和在由于它们的非毒性,生物降解性,并且易于合成33的生物医学材料研究突出。 PGA和PLGA开张的诊所在1960年的生物可吸收缝合线和70年代初期,分别为34-37。从那时起,这些聚(羟基酸)已被加工成各种其它应用程序特定的形状因子,例如微38,39和纳米颗粒40,41,晶片/光盘42,啮合27,43,泡沫44和电影45
脂族聚酯,以及生物医学兴趣的其它聚合物,可以静电纺丝来生产纳米或微纤维网状结构具有高的表面积和孔隙率以及拉伸强度。 表1列出了合成聚合物静电关于各种生物医学应用和它们的相应参考。静电和电喷雾的快速商用的可扩展技术。这两种类似的技术依赖于施加高电压(静电斥力)克服的聚合物溶液的表面张力/融化在注射器泵的设置,因为它是针对一种接地目标46,47。当这种技术用于与低表面能的聚合物结合(疏水性聚合物如聚(caprolactone- 共 -甘油单硬脂酸酯)),将得到的材料表现超疏水性。
为了说明这一点一般合成和材料加工方法从生物医学聚合物构建超疏水材料中,我们描述超疏水polycaprolactone-和聚(丙交酯共 -glycolide)基材料作为代表性实例的合成。各共聚物的掺杂剂的聚(caprolactone- 共 -甘油单硬脂酸酯)和聚(丙交酯共 -甘油单硬脂酸酯)被首先合成,然后混合以聚己内酯和聚(丙交酯共 -glycolide),分别和最后电纺丝或电喷雾。所得到的材料的特征在于通过SEM成像和接触角测角器,并测试其在体外和体内的生物相容性。最后,散湿通过三维超疏水网格使用造影剂增强microcomputed断层扫描进行检查。
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Protocol
1.合成官能化聚(1,3-甘油碳酸盐共己内酯)29和聚(1,3-甘油碳酸盐共 -丙交酯)27,28。
- 单体合成。
- 溶解顺 -2-苯基-1,3-二恶烷-5-醇(50克,0.28摩尔,1当量)在500毫升无水四氢呋喃(THF)中并在氮气下搅拌在冰上。添加氢氧化钾(33.5克,0.84摩尔,3当量),细粉碎用研钵和研杵。将烧瓶在冰浴。
- 添加49.6 ml的苄基溴(71.32克,0.42摩尔,1.5当量)逐滴搅拌在冰上。使反应温热至室温,搅拌24小时,在氮气氛下。
- 增加150个ml的蒸馏水以溶解氢氧化钾和通过旋转蒸发除去THF。
- 提取用200ml二氯甲烷(DCM)的其余材料的1-L分液漏斗中。重复萃取两次。
- 干上硫酸钠有机相。
- 结晶产物通过加入600毫升无水乙醇的溶液中,充分混合,并存储过夜,在-20℃下。该产品可以储存在-20℃下数天在进行后续步骤之前。
- 通过一个布氏漏斗分离产物通过真空过滤和干燥的高真空。该产品可在执行后续步骤之前可存放数天。一个典型的产量这一步〜80%。
- 在1升圆底烧瓶中,在暂停步骤1.1.7获得的产物。在甲醇(300毫升)中。加加入150ml 2N盐酸。回流下,在80℃进行2小时。
- 蒸发溶剂并高真空下放置24小时。收率此步骤通常是> 98%。
- 溶解的1.1.9在THF产品(650毫升)中,并转移到一个2升圆底烧瓶中。将烧瓶在冰浴并在氮气中搅拌。添加22.4毫升氯甲酸乙酯(25.6克,0.29摩尔,2当量)在氮气下烧瓶中。
- 添加32.8 ml的三乙胺(0.29摩尔,2当量)吨Ø滴液漏斗。混合用THF等体积。放置加料漏斗上的圆底烧瓶中,并保持在氮气下。
- 在剧烈搅拌下,小心地分配三乙胺/ THF混合物逐滴向圆底烧瓶在冰上。注意:这是一个放热反应。为了防止温度急剧上升,加入三乙胺/ THF溶液不会高于每秒1滴。添加全卷后,搅拌4小时,反应,升温至室温,或24小时。
- 滤除用布氏漏斗的三乙胺盐酸盐。蒸发溶剂在旋转蒸发器。
- 添加二氯甲烷(200毫升)到该烧瓶中并加热,直到轻轻将残余物溶解。加入乙醚120ml的同时旋涡。储存在-20℃下过夜,以使产物结晶。
- 筛选的单体晶体和聚合前再结晶。单体产品可以存储密封在室温下2周或在-206的温度下去。确认产品由1 H NMR,质谱和元素分析。一个典型的产率在单体合成最后一步是40-60%之间。
- 的D共聚,L-丙交酯/ε己内酯与5-苄氧基-1,3-二恶烷-2-酮。
- 热硅油浴中以140℃。
- 测量2.1克5-苄基-1,3-二恶烷-2-酮(1.1制备)和将其添加到干燥的100毫升圆底烧瓶中。如果共聚D,L-丙交酯,测算出5.7克,并加入到烧瓶现在。添加磁性搅拌棒和密封用橡胶塞烧瓶中。
- 也测量的锡(II)乙基己酸240毫克(过量)在一个小的梨形烧瓶中。该聚合将导致20%摩尔甘油碳酸酯单体组合物。调整单体的质量来实现不同的单体组成。
- 冲洗两个烧瓶用氮上的Schlenk歧管5分钟,并添加4.24 ml的ε-caprolac在氮气基调。通过施加高真空(300毫乇)15分钟以除去痕量水抽空烧瓶'气氛。
- 充电瓶“的氛围,氮;重复这个循环两次。
- 混合500μl的无水甲苯在氮气的锡催化剂。
- 放置在140℃油浴中的烧瓶中单体和添加催化剂一旦所有固体都熔化。催化剂混合物递送的总体积应为〜100微升。保持在140℃不超过24小时,然后冷却该熔融聚合物至室温。立即或至少24小时后进行随后的步骤。
- 溶解在二氯甲烷中的聚合物(50毫升)和沉淀到冷的甲醇(200ml)。弃去上清液,干燥的高真空下。后续的步骤可以立即或在任何点来执行。商店聚合物在冷冻直至进一步使用。典型的聚合收/转换之间80-95%。
- 执行1H-NMR分析来确定共聚单体摩尔比。溶解聚合物在氘代氯仿(CDCL 3)中,在4.58-4.68 ppm的整合碳酸酯单体的苄基质子移;与在2.3 PPM(PCL)和次甲基峰亚甲基峰在5.2 PPM(PLGA)的比较该峰值区域。
- 聚合物改性:脱保护和嫁接。
- 在高压加氢容器溶解聚合物(〜7克)在120毫升四氢呋喃(THF)。称重并加入钯 - 碳催化剂(〜2克)。
- 添加氢以使用氢化装置的容器中。氢化在50psi 4小时。注意:氢气极易燃烧。寻求熟悉此过程的人提供援助,并在执行此实验之前,请务必检查是否存在泄漏电源线。
- 使用硅藻土填充床过滤掉钯炭催化剂。浓缩该聚合物至〜下旋转蒸发和PRECI50毫升pitate到冷甲醇。注意:干钯微粒能自燃。保持湿毛巾附近的激化为窒息火焰事件。加水至钯/碳的滤饼,以保持它成群并防止其点火。寻求熟悉这个程序的人提供援助。
- 滗高真空下上清,干燥。通过注意峰值消失在4.65 ppm的(1 HNMR 在 CDCl 3中)确认总转化到游离的羟基。这些聚合物可立即使用或保存以备后用。产量的这一步骤是> 90%。
- 溶解在500ml无水二氯甲烷(DCM)中的聚合物和硬脂酸(1.5当量)。添加N,N'-二环己基(DCC,2.0当量)和4-二甲氨基吡啶3薄片。在氮气下在室温搅拌24小时。
- 通过一系列的重复的过滤和浓度的除去不溶N,N'- dicyclohexylcarbourea。最后,集中溶液至50ml。
- 沉淀聚合物成冷甲醇(〜175毫升),倒出上清液。干下高真空过夜的聚合物。随后使用这些聚合物的可在任何时间进行,但保留聚合物在冷冻长期储存。产量为这最后的修饰步骤一般在85%-90%。
2.定性合成共聚物
- 称取〜10毫克聚合物(记录的实际质量),并添加铝样品盘中,然后密封密封。装载样品盘和卸载(参考)出锅倒入差示扫描量热。
- 程序的升温和冷却(“热/冷/热”)循环:以10℃/分钟1)热从20℃至225℃,2)冷却至-75℃,在5℃/分钟, 3)热至225℃以10℃/分钟。
- 确定熔点(T M),结晶(<的EM> T c)和玻璃化转变温度(T g)和融合(ΔH˚F热)从热迹线(如果适用)。
- 溶解在THF中合成的各共聚物(1毫克/毫升),并通过一个0.02微米的PTFE过滤器进行过滤。注入溶液成凝胶渗透色谱系统和比较保留时间相对于一个范围的聚苯乙烯标准。
对于静电/电喷雾27,31 3.制备聚合物解决方案
- 溶解聚合物(S)在10-40%(重量)在适当的溶剂中,例如氯仿/甲醇(5:1)为PCL或四氢呋喃/ N,N-二甲基甲酰胺(7:3)为PLGA,过夜。聚合物的该步骤所需的质量将取决于所期望的目的尺寸。
注意:例如,以产生大约300微米的厚度10厘米×10厘米网眼1克,通常需要。值得一提的是,材料的损耗西文,可能会发生在后续步骤中这个协议,如溶液转移到注射器(特别是粘性溶液)中,并从存在于可选连接管和针头壳体本身死体积,这将减少电纺丝过程的产量。这些减少产量可能导致高达20%的材料损失,并建议,以扩大1.5倍来预测这些损失,也包括那些与尝试此过程的第一次时优化静电参数相关联的损失。- 通过改变总的聚合物浓度,以从更浓的溶液预期较大纤维控制纤维尺寸。为适度增强疏水性的,可以使用10%(以聚合物总质量计)的超疏水掺杂剂。对于极疏水性/超疏水材料,使用30-50%的掺杂剂和/或减少总的聚合物浓度(即,减小的纤维尺寸)。这些解决方案的后续工作可能会PERFORmed指第二天或之后一周内。
- 对于电喷雾,准备在较低浓度(即,2-10%)在适当的溶剂如氯仿溶液。像静电纺丝,调节粒径通过改变聚合物浓度。
- 涡聚合物溶液充分混合。允许大气泡平息(5分钟)。
- 负载溶液到玻璃注射器。取决于溶液的粘度,它可能是最容易取出柱塞和直接将溶液倒入注射器。一块惰性,软管可能静电纺丝设置中帮助操作性。倒置注射器通过软管/针组件取代空气。
4.静电/电喷雾聚合物解决方案
- 负载注射器到注射器泵中,设置总体积(例如,4.5毫升),在其中分配该溶液的速率(例如,5毫升/小时)。
- 覆盖集电板与luminum箔缓解后续的拆卸和运输。固定箔沿外边缘遮蔽胶带。
- 装上高压直流(HVDC)电源线到针尖。此针尖到收集器的距离是考虑,因为它1)影响的电场在给定电压的一个重要变量,和2)其收集期间影响纤维的溶剂和随后干燥的蒸发。
- 作为第一次尝试中,使用一个尖 - 集电极间距15厘米。注意:有高压和易燃溶剂参与静电/电喷雾。提供足够的通风外排,从不触碰注射器/针或打开机壳,直到完全确定高压直流电源是关闭的。
- 如果静电/电喷雾的大面积覆盖,打开旋转和平移收集桶。否则,继续下一步。
- 启动注射泵。
- 打开和调整高电压年龄源获得可接受的泰勒锥。如果该溶液在针尖下垂,提高电压。如果多个射流形成,降低电压。除了这些调整,可能有必要调整尖端 - 集电极距离如果纤维/颗粒出现湿或者如果调整电压并不能充分解决的拖动液滴在针尖。
注:有关详细的故障排除,请参阅里奇和他的同事47综合电纺丝优化过程。电喷一般会涉及到较高的电压和较低的溶液浓度比静电。 - 关闭高电压源,然后注射泵和电动鼓(如果适用)。允许电纺丝外壳继续通气30分钟。
- 从收集器删除网/涂料。允许痕量溶剂在通风橱中蒸发过夜。材料可在室温下保存为至少两周(PLGA)或两个个月(PCL)。步骤4.5-4.8可以以任何顺序来执行。
5.表征纤维和颗粒尺寸光学显微镜和扫描电子显微镜
- 光镜
- 如果产生静电网,切割和安装它的薄部分在载玻片上。
- 观察纤维直径,节点特性(斑点或分立),以及纤维形状( 即 ,串珠,平,直/波状)。理想的静电纤维网眼均匀,直线或波浪,和珠免费的。
- 扫描电子显微镜(SEM)
- 剪切和安装在使用导电铜带铝SEM存根网格或涂层表面。电纺纤维和电喷雾涂层也可以通过SEM观察通过预先纤维/颗粒在磁带上直接沉积。
- 大衣网/涂层薄(〜4 nm)的金/钯通过溅射涂层。
- 加载存根到SEM室,观察1-2千电子伏。一个250X放大倍率化提供了物质的一般地形评估,而较高的放大倍数显示其他纤维和颗粒的功能,如层次图案的极其超疏水性纤维和互联的颗粒涂层。
6.确定非润湿性能的
- 推进和使用量变化的方法后退水接触角测量
- 切上的接触角测角器的阶段目或涂覆的材料(如果可能的话),并代替薄(0.5厘米×5厘米)的条。
- 捕捉水滴轮廓在分配它(从24 AWG注射器针头)在材料表面。
- 要做到这一点,开始用一种近似5微升下降,并与材料表面接触。继续缓慢添加量(20-25微升)和捕获液滴的图像,它表示水前进接触角。相比液滴针尖要小,和ThË毛细管长度应大于液滴,以尽量减少小滴形状的失真。
- 退出同样下降的同时,捕捉它的下降曲线。重复上几个样品的分立表面位置来报告的平均值 - 通常,10次测量都前进和后退接触角是足够这些材料来表征。
- 通过修改探测液体确定材料的临界表面张力。
- 制备在乙醇,丙二醇,或乙二醇含量不同的解决方案,因为这些混合物都已知表面张力的99-101。
- 或者,使用的溶剂具有不同表面张力,例如,水(72达因/厘米),丙三醇(64达因/厘米),二甲基亚砜(44达因/厘米),苄醇(39达因/厘米),1,4-二恶烷(33达因/厘米),1-辛醇(28达因/厘米),和丙酮(25达因/厘米)。重要的是要使用溶剂不会溶解聚合物,因为这些将混淆的结果。此外,要注意的是,除了表面张力,这些液体具有不同的粘度,这可能会影响接触角测量,是该技术的限制是重要的。
- 测量这些溶液探测在材料表面的接触角。积接触角为表面张力的函数。
- 制备在乙醇,丙二醇,或乙二醇含量不同的解决方案,因为这些混合物都已知表面张力的99-101。
7.检测网格31的散装润湿
- 观察水渗透到3D网格采用微型计算机断层扫描(μCT)。
- 准备一个80毫克/毫升的溶液Ioxaglate的(一种碘造影剂)的水。
- 淹没在这些解决方案网格和孵化,在37℃;使用70 KVP管电压,114微安的电流周期性地测量造影剂(水)渗透通过μCT(18微米3体素分辨率),以及一个300毫秒的积分时间。
- 使用图像处理软件,测量像素INTENS性在整个网格,在那里明亮的像素代表水渗入的厚度。选择一个像素阈值(〜1500),这些高强度代表水的渗透。
8.测试网格的力学性能
- 切啮合到1厘米×7厘米及地点的拉伸试验装置的夹具之间。测量精确的宽度,长度和厚度。
- 三个样品进行延伸的斜坡测试。绘制使用这些数据来确定弹性模量,极限抗拉强度和延伸率,在断的应力 - 应变曲线。
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Representative Results
通过一系列的化学转化的,官能碳酸酯单体5-苄基-1,3-二恶烷-2-酮合成,为白色结晶固体( 图1A)。1 H NMR确认结构(图1B)和质谱法和元素分析证实了组合物。此固体然后共聚任一D,L-丙交酯或使用锡催化开环在140℃下反应ε己内酯。经沉淀提纯后,将聚合物组合物是使用1 H NMR分析通过积分苄质子化学位移在4.58-4.68 ppm或己内酯或丙交酯的次甲基峰(分别为2.3或5.2 ppm的,)的特性的亚甲基峰来确定。选择性地除去苄基保护基团的受的Pd / C催化的氢解来实现。完全脱保护后通过记录在1 H NMR谱苄峰的消失确认。 Subseq硬脂酸uent接枝到游离羟基呈现最终共聚物疏水性的。这些共聚物的白色固体在室温下(图1C),并且它们能够被加工成薄膜,静电网格,和电喷雾涂层( 图1D)。
所述共聚物组合物(即丙交酯/己内酯到甘油碳酸酯)可通过改变对应的单体进料比调整。改变所述组合物提供了以合成的共聚物与一系列的热和/或机械性质的手段。例如,热分析采用差示扫描量热(DSC)表明,PLA-PGC 18的聚合物含有10,20,30,或40摩尔%的PGC 18单体逐渐变得更加结晶具有增加的PGC摩尔%。的PCL-PGC 18和PLA-PGC 18共聚物的热性能总结于表2中。
聚(甘油-单硬脂酸酯)基共聚物具有表面能低于它们相应的PCL或PLGA对口,如使用上平滑浇铸膜(图2A)接触角测量确定。而PCL具有84°的前进水接触角,用于PCL-PGC 18(80:20)为〜120°的前进接触角。同样,PLGA具有71°的前进接触角,而PLA-PGC 18(90:10)和PLA-PGC 18(60:40)展品推进99°和105°接触角,分别。共混PCL或PLGA与它们对应的共聚物的掺杂剂导致推进这些纯聚合物和共聚物得到之间的接触角的值,并提供了一个简便的装置来调整疏水性( 图2B)。在这种情况下,两个共聚物的掺杂物浓度(即,10%或30%的重量/重量)和共聚物组合物(即,PLA-PGC 18(90:10)或PLA-PGC 18(60:40)种)影响的疏水性,以更大的PGC 18的内容产生更高的接触角。
掺杂合成共聚物进入PCL或PLGA的溶液,随后静电共混物达到纤维状网眼具有可调的疏水性。 图3A说明了如何掺杂在30%PCL-PGC 18或PLA-PGC 18跃迁啮合从疏水到超疏水。超疏水被定义为表观水接触角≥带迟滞定义为前进和后退水接触角测量值之间的差的低接触角150°。静电网格的增加的表面粗糙度也增加这些材料的表观水接触角相比,光滑的膜。润湿性是通过改变共聚物掺杂剂的浓度调整。例如,静电纯PCL啮合〜7微米直径的纤维具有明显的接触昂乐的123°,而掺杂有10,30,和50%(重量/重量)的网格143°PCL-PGC 18表现出明显的接触角,150°,并在可比较的纤维直径160℃,分别为( 图3B)。润湿性也被共聚物掺杂物质的选择来控制。在这种情况下,6.5-7.5微米纤维的PLGA网格掺杂有30%的PLA-PGC 18(90:10),或30%的PLA-PGC 18(60:40)表现出明显的接触的分别133°或154°,角度( 图3C)。改变(即,减少)的纤维尺寸也增强疏水性的独立的掺杂剂的选择和/或浓度的。上纤维直径表观接触角的这种依赖性示出了用于PCL和PLGA 在图3D中。类似于静电,电喷雾PCL和掺杂-PCL涂料还显示接触角,随着掺杂比例增加,甚至更高的接触角比用静电纺丝制得的实现了与该技术(图3E)。通过探测筛网面用不同的液体(其具有不同的表面张力)和报告的接触角,临界表面张力的值在该网格迅速润湿被确定。 图3F是修饰齐斯曼曲线示出的临界表面张力的研究为PLGA网格掺杂有30%的PLA-PGC 18(60:40)和掺杂有30%PCL-PGC 18的PCL网格。
扫描电镜成像显示,网格是微纤维缠结的结果。此技术还可用于确定纤维或颗粒大小,均匀性,和互联是有用的。 图4A示出的PCL + 30%PCL-PGC 18目为1-2微米和4-5微米的纤维直径,而图4B示出的PLGA + 10 %的PLA-PGC 18网从〜3微米至约7微米的纤维尺寸不同。 PCL和P的电喷雾涂料CL + 50%PCL-PGC 18示于图4C中,在改变粒径PCL + 30%PCL-PGC 18的电喷雾涂料图 4D中给出。
超疏水PCL-和PLGA基于网格是无细胞毒性的,以NIH / 3T3成纤维细胞( 图5A)和被很好的耐受性在C57BL / 6小鼠,用适度的纤维封装。相比,非多孔薄膜(未示出),啮合显示了较大程度的4周后' 注入 ( 图5B-E)27的细胞浸润(即巨噬细胞)。而超疏水网格的细胞相容性/生物相容性是类似于非超疏水网格,超疏水网格的体外表现可以在药物递送应用优越。由于其缓慢润湿,超疏水网格是能维持药物的释放为显著更长的持续时间比非superhydro恐惧网格,因为不能出现没有水接触药物释放。 体外药物释放药效学研究表明这个原则在其他地方12,13描述。
的静电网格的润湿可以遵循非破坏性地随时间使用microcomputed断层扫描和市售的碘化造影剂Ioxaglate。网格置于含有造影剂的水溶液并成像随时间。 如图6A中的纯的PCL网眼迅速润湿水渗入本体材料中的第一天。与此相反,网眼掺杂有30%PCL-PGC 18保持不可润湿的为> 75天,与块结构体(图6B)内的空气残留。这些结果说明了超疏水性散料用于非润湿应用的重要性。
最后,静电网格的机械性能从确定拉伸试验。 表3示出有代表性的机械数据用于PCL,PLGA,并从它们的应力-应变曲线得到的各自的掺杂目(纤维径=7μm的所有目)。作为掺杂的百分比增加,弹性模量(E)和最终拉伸网格强度降低的倾向。
图1.单体/聚合物合成,表征,和随后的加工成薄膜,静电网格,和电喷雾涂层(A)的纯化的单体是一种白色结晶固体在室温下; (B)的相应的1 H NMR谱单体; (C)的纯化聚合物的照片PLA-PGC 18(左)和PCL-PGC 18(右); PCL(D)的照片掺杂有30%(重量/重量)的PCL-PGC 18加工成(从左至右):膜,静电目,电喷雾涂层。
图2的前进和后退水接触角的聚合物/共聚物薄膜(A)的前进和后退水接触角测量掺杂PCL和PLGA光滑的薄膜相比,纯PCL-PGC 18和纯PLA-PGC 18光滑的薄膜。 (B)前进和后退接触角测量掺杂PCL和PLGA的电影。 请点击此处查看该图的放大版本。
图3.静电纺丝的过程和电喷雾产生粗糙的表面,以便进一步增强PCL和PLGA的疏水性对于静电PCL和PCL网(A)接触角掺30%PCL-PGC 18(80:20)网(纤维直径≈2.5微米)。 PLGA啮合和PLGA网格掺杂有30%的PLA-PGC 18(60:40)的网格(纤维直径≈6.5微米),与两个系统示出了从疏水到超疏水的过渡; (B)的接触角用于PCL啮合作为增加掺杂剂共聚物的浓度的函数; (C)的接触角为PLGA啮合6.5微米直径为共聚物组合物的函数〜; (D)的润湿性为纤维直径的用于PCL(600纳米和2.5微米)和PLGA基于目(2.5和6.5微米)的函数; (E)的接触角为电喷雾的PCL基涂料作为共聚物的掺杂浓度的函数; (六)修改齐斯曼曲线显示临界表面张力研究了PLGA网格掺30%的PLA-PGC 18(60:40)(圆圈用虚线连接线)和PCL网格掺30%PCL-PGC 18(方形实心连接线)。 请点击这里查看该图的放大版本。
静电网格和电喷雾涂层的图4的SEM图像揭示了纤维/颗粒尺寸和形态。(A)的小直径的PCL + 30%PCL-PGC 18纤维(1-2微米)和相应的大直径的超细纤维(4-5微米)网格(左,右,分别),比例尺= 10微米; ( 二)小直径PLGA + 10%的PLA-PGC 18(90:10)(2.5-3.5微米)的超细纤维和大直径(6.5-7.5微米)微纤维网(左,右,分别;比例尺= 10微米); ( 三)电喷雾颗粒由纯PCL(左),PCL + 50%PCL-PGC 18(右),比例尺= 20微米; (D)电喷雾PCL + 30%PCL-PGC的小(左)和大(右)的半径(比例尺= 2微米)18粒 。 请点击此处查看该图的放大版本。
图5. 在体外和在静电超疏水网格体内细胞生存力/生物相容性(A)的NIH / 3T3成纤维细胞存活力在24小时温育以PCL,PLGA,以及掺杂网格体外细胞测定。 (B和C)的组织学(H&E)体内异物响应于标本超疏水PLGA + 30重量%的PLA-PGC 18(60:40)静电啮合后4周皮下植入C57BL / 6小鼠在10X(B)和40X(C)的放大倍率; (D和E)回应植入纯PLGA静电在10X(D)目和40X(E)的放大倍率。 请点击此处查看该图的放大版本。
图6.对比增强microcomputed断层扫描(μCT)表征超疏水网格的大部分湿润,在水底的碘化CT造影剂Ioxaglate(80 MGI /毫升)便担当水的非侵入性标记浸润(A)的非超疏水PCL网格和(B)的超疏水性的PCL + 30%PCL-PGC 18的网格。彩色地图指示无浸润目为红色和过渡由黄绿色到蓝色/紫色润湿的进展。 请点击此处查看该图的放大版本。
静电合成聚合物: | 参考(S): |
聚(丙交酯 - 共 - 乙) | 27,36,43,48-52 |
聚乙 | 52,53 |
聚(丙交酯 - 共 - 己内酯) | 54-57 |
聚己内酯 | 13,58-66 |
聚乳酸 | 52,67 |
聚(乙烯醇) | 68-71 </ TD> |
聚(乙二醇)/嵌段共聚物 | 72,73 |
聚(酯聚氨酯)■ | 74-78 |
聚(三亚甲基碳酸酯) | 79 |
聚(二甲基硅氧烷) | 80,81 |
聚(乙烯 - 共 - 乙酸乙烯酯) | 82 |
聚乙烯吡咯烷酮 | 83 |
聚酰胺(多个) | 84-86 |
Polyhydroxybutryate | 87,88 |
聚磷腈(S) | 89,90 |
聚(碳酸丙二醇酯) | 91-93 |
聚乙烯亚胺 | 94,95 |
聚(γ谷氨酸) | 96 |
硅酸盐 | 97,98 |
表1:合成的生物医学聚合物的例子那已被静电纺丝用于生物医学应用,连同所附参考文献。
共聚物 | 转化率(%) | 丙交酯 | 甘油 | Mn为(克/摩尔)乙 | 男女/ Mn为 | 的 Tg(℃)C | Tm值(℃) | T C(°C) | ΔHF(焦耳/克) |
PLA-PGC 18(90:10) | 92 | 89 | 11 | 12,512 | 1.5 | 28 | - | - | - |
PLA-PGC 18(80:20) | 96 | 78 | 23 | 10979 | 1.5 | 17 | 33 | 11 | 3 |
PLA-PGC 18(70:30) | 90 | 66 | 34 | 17305 | 1.5 | * | 40 | 17 | 23 |
PLA-PGC 18(60:40) | 86 | 54 | 47 | 13226 | 1.6 | * | 43 | 27 | 32 |
PCL-PGC 18(80:20) | 99 | (己内酯)81 | 19 | 21100 | 1.7 | -53 | 31 | 19 | 55 |
表2:合成的共聚物的表征一摩尔%; b根据尺寸排阻色谱(THF中,1.0毫升/分钟)测定的,M N =数均分子量 M W / M N =分散度(C T) 克 =玻璃。转变温度的 Tm =熔化温度T C =结晶温度; ΔħF =熔化热。D无 的 Tg观察到这些半结晶聚合物的温度范围内从-75℃至225℃。
网组成 | 弹性模量(E)(兆帕) | 极限拉伸强度(MPa) |
PCL 一 | 15.3 | 1.5 |
+ 10%PCL-PGC 18 | 10.8 | 1.5 |
+ 30%PCL-PGC 18 | 3.5 | 0.8 |
PLGA b | 84.9 | 2.6 |
+ 10%的PLA-PGC 18(60:40) | 40.3 | 0.8 |
+ 30%的PLA-PGC <分> 18(60:40) | 10.1 | 0.3 |
表3:静电网格的代表性拉伸特性的纤维尺寸用于PCL和PCL基于网格≈7微米b纤维尺寸为PLGA和PLGA的基于网格≈7微米。
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Discussion
我们的方法从生物医用高分子构建超疏水材料结合合成高分子化学与静电和电喷雾的聚合物加工技术。这些技术提供任一纤维或颗粒,分别。具体地,基于聚己内酯和聚(丙交酯共 -glycolide)超疏水性材料使用的是这种策略制备。通过改变疏水性共聚物组合物,在最终的聚合物共混物百分之共聚物,纤维/颗粒尺寸,总聚合物的重量百分比,和制造条件,所得到的静电/电喷雾材料的润湿性受到控制。制造在这项工作中所用材料是从非毒性和生物相容的聚合物,并具有在水存在下,亚稳定的空气屏障。
在这个协议中的关键步骤包括1)采用开环聚合合成共聚物,2)静电或电喷洒这些共聚物与相应的生物医学聚合物如PCL共聚物或PLGA;和3)表征它们的形态,不润湿行为/疏水性,机械性能,并在体外/体内生物相容性。如果用高分子合成,改性,和/或静电方面遇到困难,下面的技术将帮助识别并解决这些问题。
以确保单体的纯度是很重要的,并且它们不包含微量的水,如,从大气中。水的存在可以防止或终止聚合,导致低分子量聚合物,或具有极宽分子量分布的收率的聚合物。总是疏散聚合容器的内容,并重新填充干燥的氮气或氩气,并在干燥的惰性气氛中进行所有加法(单体和催化剂)。如果聚合出现不完整的或不成功的,可能有必要进行干燥试剂通过蒸馏,或再结晶的单体,以提高纯度。如果脱苄基化得到的共聚物的出现不成功(通过随后1 H NMR分析观测到的),则可能需要添加更多的催化剂或使用不同的催化剂的试剂。在这里,我们特别注意到,不成功的脱保护已观察到与某些的Pd / C催化剂,和最好是使用材料的表中列举的之一。
一些技术上的困难可能会在静电和电喷雾过程中会遇到。如果该溶液在针尖下垂,提高电压。如果多个射流形成,降低电压。除了这些调整,可能有必要调整尖端 - 集电极距离如果纤维/颗粒出现湿(在这种情况下,增加了收集距离),或者如果调整电压并不能充分解决的拖动液滴在针尖,减少集合distanCE认证。如果纤维不形成,可能有必要通过增加聚合物浓度,以增加溶液的粘度;同样如此,如果纤维似乎具有珠上串形态。如果困难仍然存在,它可能有必要切换到不同的电纺丝溶剂。欲了解更多的故障排除,里奇和他的同事47提供了全面的故障排除指南静电。
尽管静电纺丝和电喷雾是用于制造生物医学材料有用的技术,他们确实有局限性。首先,这些技术依赖于一个接地的靶以收集纤维或颗粒,所以导电是要考虑的一个重要参数。它可能难以静电纺丝或电喷雾的材料是特别好的电绝缘体,由于聚合物射流可以更吸引到周边这些基材区域。一种可能的解决方案涉及固定较少导电材料到conductive铜带。此外,虽然我们已经成功地在静电纺丝啮合可达1毫米厚,极其厚网格的制造可能会由于在集电的聚合物涂层的绝缘性质的阻碍。此时,网格可以以表面积增加,而不在它们的总厚度大大增加。第二,这取决于网孔所需的大小,需要材料的相当量以获得足够的溶液粘度(这是需要的静电纺丝,作为链缠结所必需的纤维形成)。因此,静电可能不是一个合适的选择贵重材料;电喷雾一般使用较低的浓度,因此在所要求的材料的数量而言要求不高。如果样品量是非常有限的,它可能会被省略连接管(其否则会增加总的死体积),以减少材料的损失。最后,临界表面张力的测定依赖于使用各种探测液体,也具有不同的粘度。因此,这种方法有一个潜在的局限性在于粘度也是促成因素这些结果。
超疏水性材料是一个令人兴奋的类的生物材料,其发现使用增加的一系列的在药物递送,组织工程应用,伤口愈合,和防污的。几种技术存在用于增强表面粗糙度材料仿生和非润湿的应用,如层-层组件 15,图案化/ microtexturing 102,静电1,5,13,和电喷射32。这些方法的,静电和电喷雾是由于它们的扩展性,并与底层的基材一般兼容性特别有吸引力的方法。总之,这一战略结合高分子化学工程与工艺是一种多用途和一般性的,这将使其他研究人员准备,表征,并研究新的生物材料,其中材料的润湿性是一个关键的设计特点。
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Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Silicone oil | Sigma-Aldrich | 85409 | |
Cis-2-Phenyl-1,3-dioxan-5-ol | Sigma-Aldrich | 13468 | |
Benzyl bromide | Sigma-Aldrich | B17905 | Toxic, lacrymator/eye irritant, use in chemical fume hood |
Potassium hydroxide | Sigma-Aldrich | 221473 | Corrosive |
Rotary evaporator | Buchi | R-124 | |
High-vacuum pump | Welch | 8907 | |
Nitrogen, ultra high purity | Airgas | NI UHP300 | Compressed gas |
Tetrahydrofuran, stabilized with BHT | Pharmaco-Aaper | 346000 | Flammable. Dried through column of XXX |
Dichloromethane | Pharmaco-Aaper | 313000 | Flammable, toxic. |
Separatory funnel (1 L) | Fisher Scientific | 13-678-606 | |
Sodium sulfate | Sigma-Aldrich | 239313 | |
Ethanol, absolute | Pharmaco-Aaper | 111USP200 | Flammable, toxic. |
Buchner funnel | Fisher Scientific | FB-966-F | |
Methanol | Pharmaco-Aaper | 339000ACS | Flammable, toxic. |
Hydrochloric acid | Sigma-Aldrich | 320331 | Corrosive. Diluted to 2N in distilled water. |
Ethyl chloroformate, 97% | Sigma-Aldrich | 185892 | Toxic, flammable, harmful to environment |
Triethylamine (anhydrous) | Sigma-Aldrich | 471283 | Toxic, flammable, harmful to environment |
Diethyl ether | Pharmaco-Aaper | 373ANHACS | Highly flammable. Purified through XXX column. |
3,6-Dimethyl-1,4-dioxane-2,5-dione (D,L-lactide) | Sigma-Aldrich | 303143 | |
Tin (II) ethylhexanoate | Sigma-Aldrich | S3252 | Toxic. |
ε-caprolactone (97%) | Sigma-Aldrich | 704067 | |
Toluene, anhydrous | Sigma-Aldrich | 244511 | Flammable, toxic. |
Glass syringe | Hamilton Company | 1700-series | |
Deuterated chloroform | Cambridge Isotopes Laboratories, Inc. | DLM-29-10 | Toxic |
Nuclear magnetic resonance instrument | Varian | V400 | |
Palladium on carbon catalyst | Strem Chemicals, Inc. | 46-1707 | |
Hydrogenator unit | Parr | 3911 | |
Hydrogenator shaker vessel | Parr | 66CA | |
Hydrogen | Airgas | HY HP300 | Highly flammable. |
Diatomaceous earth | Sigma-Aldrich | 22140 | |
2H,2H,3H,3H-perflurononanoic acid | Oakwood Products, Inc. | 10519 | Toxic. |
Stearic acid | Sigma-Aldrich | S4751 | |
N,N’-dicyclohexylcarbodiimide | Sigma-Aldrich | D80002 | Toxic, irritant. |
4-(dimethylamino) pyridine | Sigma-Aldrich | 107700 | Toxic. |
Hexanes | Pharmaco-Aaper | 359000ACS | Toxic, flammable. |
Gel permeation chromatography (GPC) system | Rainin | ||
GPC column | Waters | WAT044228 | |
Differential scanning calorimeter | TA Instruments | Q100 | |
Chloroform | Pharmaco-Aaper | 309000ACS | Toxic. |
N,N-dimethylformamide | Sigma-Aldrich | 227056 | Toxic, flammable. |
Polycaprolactone, MW 70-90 kg/mol | Sigma-Aldrich | 440744 | |
Poly(lactide-co-glycolide), MW 136 kg/mol | Evonik Industries | LP-712 | |
10 ml glass syringe | Hamilton Company | 81620 | |
18 AWG blunt needle | BRICO Medical Supplies | BN1815 | |
Electrospinner enclosure box | Custom-built | N/A | Made of acrylic panels |
High voltage DC supply | Glassman High Voltage, Inc. | PS/EL30R01.5 | High voltages, electrocution hazard |
Linear (translating) stage | Servo Systems Co. | LPS-12-20-0.2 | Optional |
Programmable motor & power supply | Intelligent Motion Systems, Inc. | MDrive23 Plus | Optional |
24V DC motor & power supply | McMaster-Carr | 6331K32 | Optional |
Aluminum collector drum | Custom-built | Optional | |
Syringe pump | Fisher Scientific | 78-0100I | |
Inverted optical microscope | Olympus | IX70 | |
Scanning electron microscope | Carl Zeiss | Supra V55 | |
Conductive copper tape | 3M | 16072 | |
Aluminum SEM stubs | Electron Microscopy Sciences | 75200 | |
Contact angle goniometer | Kruss | DSA100 | |
Propylene glycol | Sigma-Aldrich | W294004 | Toxic. |
Ethylene glycol | Sigma-Aldrich | 324558 | Toxic. |
Ioxaglate | Guerbet | ||
Fetal bovine serum | American Type Culture Collection | 30-2020 | |
Micro-computed tomography instrument | Scanco | ||
Image analysis software (Analyze) | Mayo Clinic | ||
Tensile tester | Instron | 5848 | |
Micrometer | Multitoyo | 293-340 | |
Calipers | Fisher Scientific | 14-648-17 |
References
- Li, X. M., Reinhoudt, D., Crego-Calama, M. What do we need for a superhydrophobic surface? A review on the recent progress in the preparation of superhydrophobic surfaces. Chem. Soc. Rev. 36, 1350-1368 (2007).
- Crick, C. R., Parkin, I. P. Preparation and characterisation of super-hydrophobic surfaces. Chem. - Eur. J. 16, 3568-3588 (2010).
- Genzer, J., Efimenko, K. Recent developments in superhydrophobic surfaces and their relevance to marine fouling: a review. Biofouling. 22, 339-360 (2006).
- Marmur, A. Super-hydrophobicity fundamentals: implications to biofouling prevention. Biofouling. 22, 107-115 (2006).
- Sas, I., Gorga, R. E., Joines, J. A., Thoney, K. A. Literature review on superhydrophobic self-cleaning surfaces produced by electrospinning. J. Polym. Sci., Part B: Polym. Phys. 50, 824-845 (2012).
- Zhang, X., Shi, F., Niu, J., Jiang, Y., Wang, Z. Superhydrophobic surfaces: from structural control to functional application. J. Mat. Chem. 18, 621-633 (2008).
- Xue, C. -H., Li, Y. -R., Zhang, P., Ma, J. -Z., Jia, S. -T. Washable and wear-resistant superhydrophobic surfaces with self-cleaning property by chemical etching of fibers and hydrophobization. ACS Appl. Mater. Interfaces. 6, 10153-10161 (2014).
- Ou, J., Perot, B., Rothstein, J. P. Laminar drag reduction in microchannels using ultrahydrophobic surfaces. Phys. Fluids. 16, 4635-4643 (2004).
- Ko, T. -J., et al. Adhesion behavior of mouse liver cancer cells on nanostructured superhydrophobic and superhydrophilic surfaces. Soft Matter. , (2013).
- Lourenco, B. N., et al. Wettability influences cell behavior on superhydrophobic surfaces with different topographies. Biointerphases. 7, (2012).
- Srinivasan, S., et al. Drag reduction for viscous laminar flow on spray-coated non-wetting surfaces. Soft Matter. 9, 5691-5702 (2013).
- Yohe, S. T., Colson, Y. L., Grinstaff, M. W. Superhydrophobic materials for tunable drug release: using displacement of air to control delivery rates. J. Am. Chem. Soc. 134, 2016-2019 (2012).
- Yohe, S. T., Herrera, V. L. M., Colson, Y. L., Grinstaff, M. W. 3D superhydrophobic electrospun meshes as reinforcement materials for sustained local drug delivery against colorectal cancer cells. J. Control. Release. 162, 92-101 (2012).
- Yohe, S. T., Kopechek, J. A., Porter, T. M., Colson, Y. L., Grinstaff, M. W. Triggered drug release from superhydrophobic meshes using high-intensity focused ultrasound. Adv. Healthcare Mater. 2, 1204-1208 (2013).
- Manna, U., Kratochvil, M. J., Lynn, D. M. Superhydrophobic polymer multilayers that promote the extended, long-term release of embedded water-soluble agents. Adv. Mater. 25, 6405-6409 (2013).
- Ju, G., Cheng, M., Shi, F. A pH-responsive smart surface for the continuous separation of oil/water/oil ternary mixtures. NPG Asia Mater. 6, e111 (2014).
- Lim, H. S., Han, J. T., Kwak, D., Jin, M., Cho, K. Photoreversibly switchable superhydrophobic surface with erasable and rewritable pattern. J. Am. Chem. Soc. 128, 14458-14459 (2006).
- Macias-Montero, M., Borras, A., Alvarez, R., Gonzalez-Elipe, A. R. Following the wetting of one-dimensional photoactive surfaces. Langmuir. 28, 15047-15055 (2012).
- Sun, T., et al. Reversible switching between superhydrophilicity and superhydrophobicity. Angew. Chem. Int. Ed. 43, 357-360 (2004).
- Verplanck, N., Coffinier, Y., Thomy, V., Boukherroub, R. Wettability switching techniques on superhydrophobic surfaces. Nanoscale Res. Lett. 2, 577-596 (2007).
- Deng, D., et al. Hydrophobic meshes for oil spill recovery devices. ACS Appl. Mater. Interfaces. 5, 774-781 (2013).
- Ebrahimi, A., et al. Nanotextured superhydrophobic electrodes enable detection of attomolar-scale DNA concentration within a droplet by non-faradaic impedance spectroscopy. Lab Chip. 13, 4248-4256 (2013).
- Guix, M., et al. Superhydrophobic alkanethiol-coated microsubmarines for effective removal of oil. ACS Nano. 6, 4445-4451 (2012).
- Korhonen, J. T., Kettunen, M., Ras, R. H. A., Ikkala, O. Hydrophobic nanocellulose aerogels as floating, sustainable, reusable, and recyclable oil absorbents. ACS Appl. Mater. Interfaces. 3, 1813-1816 (2011).
- Wu, Y., Hang, T., Komadina, J., Ling, H., Li, M. High-adhesive superhydrophobic 3D nanostructured silver films applied as sensitive, long-lived, reproducible and recyclable SERS substrates. Nanoscale. 6, 9720-9726 (2014).
- Waterproofing treatment of materials. US Patent. Norton, F. J. , 2386259 A (1945).
- Kaplan, J. A., et al. Imparting superhydrophobicity to biodegradable poly(lactide-co-glycolide) electrospun meshes. Biomacromolecules. 15, 2548-2554 (2014).
- Ray, W. C., Grinstaff, M. W. Polycarbonate and poly(carbonate−ester)s synthesized from biocompatible building blocks of glycerol and lactic acid. Macromolecules. 36, 3557-3562 (2003).
- Wolinsky, J. B., Ray, W. C., Colson, Y. L., Grinstaff, M. W. Poly(carbonate ester)s based on units of 6-hydroxyhexanoic acid and glycerol. Macromolecules. 40, 7065-7068 (2007).
- Wolinsky, J. B., Yohe, S. T., Colson, Y. L., Grinstaff, M. W. Functionalized hydrophobic poly(glycerol-co-ε-caprolactone) depots for controlled drug release. Biomacromolecules. 13, (2012).
- Yohe, S. T., Freedman, J. D., Falde, E. J., Colson, Y. L., Grinstaff, M. W. A mechanistic study of wetting superhydrophobic porous 3D meshes. Adv. Funct. Mater. 23, 3628-3637 (2013).
- Yohe, S. T., Grinstaff, M. W. A facile approach to robust superhydrophobic 3D coatings via connective-particle formation using the electrospraying process. Chem. Commun. 49, 804-806 (2013).
- Tian, H. Y., Tang, Z. H., Zhuang, X. L., Chen, X. S., Jing, X. B. Biodegradable synthetic polymers: Preparation, functionalization and biomedical application. Prog. Polym. Sci. 37, 237-280 (2012).
- Surgical sutures. US Patent. Emil, S. E., Albert, P. R. , 3297033 A (1967).
- Greenberg, J. A., Clark, R. M. Advances in suture material for obstetric and gynecologic surgery. Rev. Obstet. Gynecol. 2, 146-158 (2009).
- Weldon, C. B., et al. Electrospun drug-eluting sutures for local anesthesia. J. Control. Release. 161, 903-909 (2012).
- Wright, J., Hoffman, A. Chapter 2. Long Acting Injections and Implants. Advances in Delivery Science and Technology. Wright, J. C., Burgess, D. J. , Springer. 11-24 (2012).
- Wischke, C., Schwendeman, S. P. Principles of encapsulating hydrophobic drugs in PLA/PLGA microparticles. Int. J. Pharm. 364, 298-327 (2008).
- Xie, J. W., Tan, R. S., Wang, C. H. Biodegradable microparticles and fiber fabrics for sustained delivery of cisplatin to treat C6 glioma in vitro. J. Biomed. Mater. Res., Part A. 85A, 897-908 (2008).
- Danhier, F., et al. PLGA-based nanoparticles: An overview of biomedical applications. J. Control. Release. 161, 505-522 (2012).
- Korin, N., et al. Shear-activated nanotherapeutics for drug targeting to obstructed blood vessels. Science. 337, 738-742 (2012).
- Lee, J. S., et al. Evaluation of in vitro and in vivo antitumor activity of BCNU-Ioaded PLGA wafer against 9L gliosarcoma. Eur. J. Pharm. Biopharm. 59, 169-175 (2005).
- Liu, H., Wang, S. D., Qi, N. Controllable structure, properties, and degradation of the electrospun PLGA/PLA-blended nanofibrous scaffolds. J. Appl. Polym. Sci. 125, E468-E476 (2012).
- Ong, B. Y. S., et al. Paclitaxel delivery from PLGA foams for controlled release in post-surgical chemotherapy against glioblastoma multiforme. Biomaterials. 30, 3189-3196 (2009).
- Paun, I. A., Moldovan, A., Luculescu, C. R., Staicu, A., Dinescu, M. M. A. P. L. E. deposition of PLGA:PEG films for controlled drug delivery: Influence of PEG molecular weight. Appl. Surf. Sci. 258, 9302-9308 (2012).
- Reneker, D. H., Yarin, A. L., Zussman, E., Xu, H. Electrospinning of nanofibers from polymer solutions and melts. Advances in Applied Mechanics. Aref, H., Van der Giessen, E. 41, 43-195 (2007).
- Leach, M. K., Feng, Z. -Q., Tuck, S. J., Corey, J. M. Electrospinning fundamentals: optimizing solution and apparatus parameters. J. Vis. Exp. (2494), (2011).
- Oh, J. H., Park, K. M., Lee, J. S., Moon, H. T., Park, K. D. Electrospun microfibrous PLGA meshes coated with in situ cross-linkable gelatin hydrogels for tissue regeneration. Curr. Appl. Phys. 12, S144-S149 (2012).
- Kim, T. G., Park, T. G. Biomimicking extracellular matrix: cell adhesive RGD peptide modified electrospun poly(D,L-lactic-co-glycolic acid) nanofiber mesh. Tissue Eng. 12, 221-233 (2006).
- Stitzel, J., et al. Controlled fabrication of a biological vascular substitute. Biomaterials. 27, 1088-1094 (2006).
- Liang, D., et al. In vitro non-viral gene delivery with nanofibrous scaffolds. Nucleic Acids Res. 33, e170 (2005).
- You, Y., Min, B. -M., Lee, S. J., Lee, T. S., Park, W. H. In vitro degradation behavior of electrospun polyglycolide, polylactide, and poly(lactide-co-glycolide). J. Appl. Polym. Sci. 95, 193-200 (2005).
- Boland, E. D., Wnek, G. E., Simpson, D. G., Pawlowski, K. J., Bowlin, G. L. Tailoring tissue engineering scaffolds using electrostatic processing techniques: a study of poly(glycolic acid) electrospinning. J. Macromol. Sci., Part A: Pure Appl. Chem. 38, 1231-1243 (2001).
- Inoguchi, H., Tanaka, T., Maehara, Y., Matsuda, T. The effect of gradually graded shear stress on the morphological integrity of a huvec-seeded compliant small-diameter vascular graft. Biomaterials. 28, 486-495 (2007).
- Xu, C. Y., Inai, R., Kotaki, M., Ramakrishna, S. Aligned biodegradable nanofibrous structure: a potential scaffold for blood vessel engineering. Biomaterials. 25, 877-886 (2004).
- Mun, C. H., et al. Three-dimensional electrospun poly(lactide-co-varepsilon-caprolactone) for small-diameter vascular grafts. Tissue Eng. Part A. 18, 1608-1616 (2012).
- Inai, R., Kotaki, M., Ramakrishna, S. Deformation behavior of electrospun poly(L-lactide-co-ε-caprolactone) nonwoven membranes under uniaxial tensile loading. J. Polym. Sci., Part B: Polym. Phys. 43, 3205-3212 (2005).
- Cao, H., McHugh, K., Chew, S. Y., Anderson, J. M. The topographical effect of electrospun nanofibrous scaffolds on the in vivo and in vitro foreign body reaction. J. Biomed.Mater.Res.,PartA.. 93A, 1151-1159 (2010).
- Pham, Q. P., Sharma, U., Mikos, A. G. Electrospun poly(epsilon-caprolactone) microfiber and multilayer nanofiber/microfiber scaffolds: characterization of scaffolds and measurement of cellular infiltration. Biomacromolecules. 7, 2796-2805 (2006).
- Jiang, H., Zhao, P., Zhu, K. Fabrication and characterization of zein-based nanofibrous scaffolds by an electrospinning method. Macromol. Biosci. 7, 517-525 (2007).
- Zhang, Y. Z., Venugopal, J., Huang, Z. M., Lim, C. T., Ramakrishna, S. Characterization of the surface biocompatibility of the electrospun PCL-collagen nanofibers using fibroblasts. Biomacromolecules. 6, 2583-2589 (2005).
- Jiang, H., Hu, Y., Zhao, P., Li, Y., Zhu, K. Modulation of protein release from biodegradable core-shell structured fibers prepared by coaxial electrospinning. J. Biomed. Mater. Res., Part B: Appl. Biomat. 79, 50-57 (2006).
- Jiang, H., et al. A facile technique to prepare biodegradable coaxial electrospun nanofibers for controlled release of bioactive agents. J. Control. Release. 108, 237-243 (2005).
- Zhang, Y. Z., et al. Coaxial electrospinning of (fluorescein isothiocyanate-conjugated bovine serum albumin)-encapsulated poly(epsilon-caprolactone) nanofibers for sustained release. Biomacromolecules. 7, 1049-1057 (2006).
- Schnell, E., et al. Guidance of glial cell migration and axonal growth on electrospun nanofibers of poly-epsilon-caprolactone and a collagen/poly-epsilon-caprolactone blend. Biomaterials. 28, 3012-3025 (2007).
- Ma, Z., He, W., Yong, T., Ramakrishna, S. Grafting of gelatin on electrospun poly(caprolactone) nanofibers to improve endothelial cell spreading and proliferation and to control cell Orientation. Tissue Eng. 11, 1149-1158 (2005).
- Peesan, M., Rujiravanit, R., Supaphol, P.
Electrospinning of hexanoyl chitosan/polylactide blends. J. Biomater. Sci., Polym. Ed. 17, 547-565 (2006). - Jia, Y. -T., et al. Fabrication and characterization of poly (vinyl alcohol)/chitosan blend nanofibers produced by electrospinning method. Carbohydr. Polym. 67, 403-409 (2007).
- Kenawy, E. -R., Abdel-Hay, F. I., El-Newehy, M. H., Wnek, G. E. Controlled release of ketoprofen from electrospun poly(vinyl alcohol) nanofibers. Mater. Sci. Eng., A. 459, 390-396 (2007).
- Zhang, C., Yuan, X., Wu, L., Han, Y., Sheng, J. Study on morphology of electrospun poly(vinyl alcohol) mats. Eur. Polym. J. 41, 423-432 (2005).
- Hong, K. H. Preparation and properties of electrospun poly(vinyl alcohol)/silver fiber web as wound dressings. Polym. Eng. Sci. 47, 43-49 (2007).
- Bhattarai, S. R., et al. Novel biodegradable electrospun membrane: scaffold for tissue engineering. Biomaterials. 25, 2595-2602 (2004).
- Grafahrend, D., et al. Biofunctionalized poly(ethylene glycol)-block-poly(ε-caprolactone) nanofibers for tissue engineering. J. Mater. Sci.: Mater. Med. 19, 1479-1484 (2008).
- Riboldi, S. A., Sampaolesi, M., Neuenschwander, P., Cossu, G., Mantero, S. Electrospun degradable polyesterurethane membranes: potential scaffolds for skeletal muscle tissue engineering. Biomaterials. 26, 4606-4615 (2005).
- Gugerell, A., et al. Electrospun poly(ester-urethane)- and poly(ester-urethane-urea) fleeces as promising tissue engineering scaffolds for adipose-derived stem cells. PLoS ONE. 9, e90676 (2014).
- Nair, P. A., Ramesh, P. Electrospun biodegradable calcium containing poly(ester-urethane)urea: synthesis, fabrication, in vitro degradation, and biocompatibility evaluation. J. Biomed. Mater. Res., Part A. 101, 1876-1887 (2013).
- Caracciolo, P., Thomas, V., Vohra, Y., Buffa, F., Abraham, G. Electrospinning of novel biodegradable poly(ester urethane)s and poly(ester urethane urea)s for soft tissue-engineering applications. J. Mater. Sci.: Mater. Med. 20, 2129-2137 (2009).
- Hong, Y., et al. A small diameter, fibrous vascular conduit generated from a poly(ester urethane)urea and phospholipid polymer blend. Biomaterials. 30, 2457-2467 (2009).
- Pego, A. P., et al. Preparation of degradable porous structures based on 1,3-trimethylene carbonate and D,L-lactide (co)polymers for heart tissue engineering. Tissue Eng. 9, 981-994 (2003).
- Niu, H., Wang, H., Zhou, H., Lin, T. Ultrafine PDMS fibers: preparation from in situ curing-electrospinning and mechanical characterization. RSC Adv. 4, 11782-11787 (2014).
- Kim, Y. B., Cho, D., Park, W. H. Electrospinning of poly(dimethyl siloxane) by sol–gel method. J. Appl. Polym. Sci. 114, 3870-3874 (2009).
- Kenawy, E. -R., et al. Release of tetracycline hydrochloride from electrospun poly(ethylene-co-vinylacetate), poly(lactic acid), and a blend. J. Control. Release. 81, 57-64 (2002).
- Uykun, N., et al. Electrospun antibacterial nanofibrous polyvinylpyrrolidone/cetyltrimethylammonium bromide membranes for biomedical applications. J. Bioact. Compat. Polym. 29, 382-397 (2014).
- Panthi, G., et al. Preparation and characterization of nylon-6/gelatin composite nanofibers via electrospinning for biomedical applications. Fibers Polym. 14, 718-723 (2013).
- Pant, H. R., et al. Chitin butyrate coated electrospun nylon-6 fibers for biomedical applications. Appl. Surf. Sci., Part B. 285, 538-544 (2013).
- Pant, H. R., Kim, C. S. Electrospun gelatin/nylon-6 composite nanofibers for biomedical applications. Polym. Int. 62, 1008-1013 (2013).
- Correia, D. M., et al. Influence of electrospinning parameters on poly(hydroxybutyrate) electrospun membranes fiber size and distribution. Polym. Eng. Sci. 54, 1608-1617 (2014).
- Tong, H. -W., Wang, M. Electrospinning of poly(hydroxybutyrate-co-hydroxyvalerate) fibrous tissue engineering scaffolds in two different electric fields. Polym. Eng. Sci. 51, 1325-1338 (2011).
- Carampin, P., et al. Electrospun polyphosphazene nanofibers for in vitro rat endothelial cells proliferation. J. Biomed. Mater. Res., Part A. 80, 661-668 (2007).
- Lin, Y. -J., et al. Effect of solvent on surface wettability of electrospun polyphosphazene nanofibers. J. Appl. Polym. Sci. 115, 3393-3400 (2010).
- Zhang, J., et al. Engineering of vascular grafts with genetically modified bone marrow mesenchymal stem cells on poly (propylene carbonate) graft. Artif. Organs. 30, 898-905 (2006).
- Nagiah, N., Sivagnanam, U. T., Mohan, R., Srinivasan, N. T., Sehgal, P. K. Development and characterization of electropsun poly(propylene carbonate) ultrathin fibers as tissue engineering scaffolds. Adv. Eng. Mater. 14, B138-B148 (2012).
- Welle, A., et al. Electrospun aliphatic polycarbonates as tailored tissue scaffold materials. Biomaterials. 28, 2211-2219 (2007).
- Khanam, N., Mikoryak, C., Draper, R. K., Balkus, K. J. Electrospun linear polyethyleneimine scaffolds for cell growth. Acta Biomater. 3, 1050-1059 (2007).
- Xu, X., Zhang, J. -F., Fan, Y. Fabrication of cross-linked polyethyleneimine microfibers by reactive electrospinning with in situ photo-cross-linking by UV radiation. Biomacromolecules. 11, 2283-2289 (2010).
- Wang, S., et al. Fabrication and morphology control of electrospun poly(Γ-glutamic acid) nanofibers for biomedical applications. Colloids Surf. B. 89, 254-264 (2012).
- Sakai, S., Yamada, Y., Yamaguchi, T., Kawakami, K. Prospective use of electrospun ultra-fine silicate fibers for bone tissue engineering. Biotechnol. J. 1, 958-962 (2006).
- Yamaguchi, T., Sakai, S., Kawakami, K. Application of silicate electrospun nanofibers for cell culture. J. Sol-Gel Sci. Technol. 48, 350-355 (2008).
- Vazquez, G., Alvarez, E., Navaza, J. M. Surface-tension of alcohol plus water from 20-degrees C to 50-degrees. C. J. Chem. Eng. Data. 40, 611-614 (1995).
- Hoke, B. C., Patton, E. F. Surface tensions of propylene glycol water. J. Chem. Eng. Data. 37, 331-333 (1992).
- Azizian, S., Hemmati, M. Surface tension of binary mixtures of ethanol + ethylene glycol from 20 to 50. C. J. Chem. Eng. Data. 48, 662-663 (2003).
- Nayak, B. K., Caffrey, P. O., Speck, C. R., Gupta, M. C. Superhydrophobic surfaces by replication of micro/nano-structures fabricated by ultrafast-laser-microtexturing. Appl. Surf. Sci. 266, 27-32 (2013).