Isolamento de Frações Sub-nuclear Viral Replication Compartimento enriquecidas de Adenovirus-infectados células normais Humanos

Summary

Fornecemos uma nova estratégia para isolar compartimentos de replicação viral (RC) de células humanas infectadas com adenovírus (Ad). Essa abordagem representa um sistema livre de células que pode ajudar a elucidar os mecanismos moleculares que regulam a replicação e expressão do genoma viral, bem como a regulação das interações viral-hospedeiro estabelecidas no RC.

Abstract

Durante a infecção de células humanas por adenovírus (Ad), o núcleo da célula hospedeira é dramaticamente reorganizado, levando à formação de microambientes nucleares através do recrutamento de proteínas virais e celulares para locais ocupados pelo genoma viral. Esses locais, chamados de compartimentos de replicação (RC), podem ser considerados domínios nucleares induzidos por vírus, onde o genoma viral é localizado e proteínas virais e celulares que participam da replicação, transcrição e processamento pós-transcricional são recrutadas. Além disso, proteínas celulares envolvidas na resposta antiviral, como proteínas supressoras de tumor, componentes de resposta a danos no DNA (DDR) e fatores de resposta imune inata também são cooptados para CR. Embora os CR pareçam desempenhar um papel crucial para promover um ciclo de replicação eficiente e produtivo, uma análise detalhada de sua composição e atividades associadas não foi feita. Para facilitar o estudo do RC adenoviral e potencialmente de outros vírus de DNA que se replicam no núcleo da célula, adaptamos um procedimento simples baseado em gradientes de velocidade para isolar o Ad RC e estabelecemos um sistema livre de células passível de conduzir estudos morfológicos, funcionais e composicionais dessas estruturas subnucleares induzidas por vírus, bem como estudar seu impacto nas interações hospedeiro-célula.

Introduction

Os adenovírus contêm um genoma de ADN de cadeia dupla que replicam no núcleo da célula infectada. Quando o ADN virai entra no núcleo, que se localiza junto a PML corpos nucleares ^1. Após expressão do gene precoce viral, a arquitetura nuclear é reorganizada de forma dramática, induzindo a formação de microambientes virais, denominado de Compartimentos replicação viral (RC) ^2. Desde adenovirus (Ad) RC são os locais onde a replicação viral genoma e expressão de genes virais final têm lugar, eles fornecem um ambiente para o recrutamento de todos os fatores virais e celulares necessários que participam nestes processos. Curiosamente, uma variedade de proteínas celulares responsáveis ​​pela resposta antiviral celular, tais como a resposta a danos no ADN, a resposta imune inata e supressão tumoral são co-optou por esses sítios virais ^2. Cubos reguladoras Assim, Ad RC pode ser considerado que promovem a replicação viral eficiente enquanto concomitantemente regulação doresposta antiviral celular, indicando que estas estruturas são fundamentais para a compreensão das interacções vírus-hospedeiro de células. No entanto, os mecanismos moleculares da formação de RC, a sua composição e as suas actividades são mal compreendidos.

RC adenoviral, bem como RC de outros vírus de ADN que se replicam no núcleo não estão associadas a membranas, em contraste com RC citoplasmática ^3. Além disso, estas estruturas induzida por vírus são susceptíveis de ser inteiramente constituída por proteínas e ácidos nucleicos. RC formado nas células infectadas com os vírus de ARN (usualmente denominado fábricas virais) foram isolados, aproveitando a sua localização citoplásmica e ligada à membrana de estado, o que facilitou a sua morfológica detalhada, a caracterização funcional e bioquímica ^4.

Para nosso conhecimento, RC viral nuclear não tenham sido isolados, talvez devido à complexidade da arquitectura nuclear e ausência de m intranuclearesembranes que facilitem o seu isolamento. O estudo se baseou em vez de microscopia de imunofluorescência, FISH e microscopia eletrônica de transmissão. No entanto, apesar de complicações inerentes a isolar estruturas subnucleares, outros domínios nucleares, tais como nucléolos e Corpos de Cajal foram isoladas antes de ^5,6. Desde nucléolos e Rc são ambas compostas de proteínas e ácidos nucleicos, e tem um diâmetro entre 0,5 - 5 mm, a hipótese de que RC também devem ser passíveis de isolamento. Por conseguinte, a fim de caracterizar mais precisamente a composição molecular e funções associadas a RC, foi estabelecido um novo método para isolar fracções enriquecidas com subnucleares RC. Para este fim, preparado de fracções sub-nuclear utilizando gradientes de velocidade e almofadas de sucrose semelhantes aos procedimentos usados ​​para isolar nucléolos ⁷ ou outros domínios nucleares ⁶ e estabelecido um sistema isento de células, que permite o estudo da composição molecular e de actividades associadasRC. Essa técnica deve, portanto, fazer avançar a compreensão das interações celulares vírus-hospedeiro e representa uma ferramenta poderosa que devem também facilitar a análise detalhada de RC de outros vírus que se replicam no núcleo e induzir a formação de compartimentos de replicação de dimensões semelhantes às formada em adenovirus- As células infectadas, tais como, vírus do herpes, vírus de papiloma ou poliomavírus.

Protocol

1. HFF Cultura de Células e-infecção Anúncio

1. Propagar o vírus Ad5 WT em monocamadas de células HEK-293 e título como unidades formadoras fluorescentes (UFF) em células HFF como anteriormente descrito ^8.
2. Cresça fibroblastos de prepúcio humano (HFF) em 10 ml de DMEM / 10% de Soro Fetal Bovino (FBS) em cultura estéreis placas de 100 mm a 37 ° C e _5% de CO2 num incubador humidificado. Determinar o número de células utilizando uma câmara de Neubauer por contagem de células nas quatro conjuntos de 16 quadrados. O número de células por mL é obtida através do cálculo da média do número de células nas quatro conjuntos de 16 quadrados e multiplicando este número por 10 ^4. Para cada tempo de pós-infecção incluídos na etapa 1.3, usar 1 x 10 ⁷ células HFF.
3. Mock-infectar ou infectar células HFF com adenovírus tipo 5 (Ad5) do tipo selvagem (WT) (H5pg4100 ⁸⁾ em 100 mm placas de cultura de tecido com 1 ml de Ad5 em DMEM por prato a uma MOI de 30 Foco Forming Unit, ou FFU , por célula. Incubar por 2 horas em ahumidified incubadora de cultura de células a 37 ° C e 5% de CO _2, de balanço cuidadosamente os pratos a cada 15 minutos para assegurar uma distribuição homogénea do inoculo de vírus sobre as células. Após este tempo, remover o meio e adicionar DMEM fresco suplementado com FBS a 10% e incuba-se durante 16, 24 ou 36 h numa incubadora de cultura de células humidificada a ³⁷ ° C e 5% de CO _2. Prossiga para a etapa 2.1.

2. Preparação de fracções Sub-nuclear Enriquecido com Adenovírus RC

1. Colheita Ad5-infectadas ou células HFF falsamente infectadas com um raspador celular e recolher as células em tubos de centrífuga estéreis. Determinar o número de células como no passo 1.2. Use 1 x ¹⁰ 7 células para cada pós-infecção de tempo especificado no passo 1.3.
2. Centrifugar as células a 220 xg, 4 ºC por 5 min.
3. Ressuspender o sedimento celular em PBS arrefecido em gelo (NaCl 137 mM, KCl 2,7 mM, 10 mM de Na ₂ HPO ₄ 1,8 mM e KH _{2 PO 4).} Lave o peletizado de célulass 3 vezes com 5 ml de PBS gelado por lavagem. Para este efeito, centrifugar as células a 220 xg, a 4 ° C durante 5 minutos, decantar e desprezar o sobrenadante (SN), e ressuspender o sedimento de células por pipetagem suave.
4. Para romper a membrana de plasma, ressuspender o sedimento celular em 700 uL de tampão hipotónico gelado (HEPES 10 mM pH 7,9, KCl 10 mM, MgCl 1,5 mM, _2, 0,5 mM DTT, 20 μ g / ml de fluoreto de fenilmetilsulfonilo (PMSF) , uma mistura de cisteína, serina, treonina e inibidores da aspartil protease, incluindo 10 μ g / ml de inibidor de tripsina pancreática bovina, 10 μ g / ml de pepstatina A e 10 μ g / ml de N-acetil-L-leucil-L-leucil-L- -argininal) e deixar que as células inchar em gelo durante 3 h.
5. Lyse as células utilizando um homogeneizador com uma folgada Um pilão tipo teflon. Realize 80 dounce derrames e monitor de amostras a cada 20 golpes por microscopia de campo claro para assegurar que todas as células foram lisadas, mas que têm núcleos not sido danificado ou rompido.
6. Centrifuga-se o homogeneizado de células a 300 xg, 4 ° C durante 5 min. Armazenar o SN como a fracção citoplasmática a -20 ° C em um tubo de centrífuga.
7. Para remover os detritos celulares a partir de núcleos, ressuspender o sedimento em 750 μ l de solução de 1 (S1) (0,25 M de sacarose, 10 mM de MgCl ₂ 20 ug / ml de PMSF, uma mistura de cisteína, serina, inibidores da treonina e da protease de aspartilo que incluem 10 μ g / ml de inibidor de tripsina pancreática bovina, 10 μ g / ml de pepstatina A e 10 μ g / ml de N-acetil-L-leucil-L-leucil-L-argininal) e camada sobre um volume igual de solução de 2 (S2) (0,35 M de sacarose, 0,5 mM de MgCl _2, 20 μ g / ml de PMSF, uma mistura de cisteína, serina, inibidores da treonina e da protease de aspartilo que incluem 10 μ g / ml de inibidor de tripsina pancreática bovina, 10 μ g / ml de pepstatina A e 10 μ g / ml de N-acetil-L-leucil-L-leucil-L-argininal). Centrifuge a 1.400 xg, 4 ºC por 5 min.
8. Descartar o SN utilizando uma micropipeta. Evite perturbar o sedimento.
9. Ressuspender o sedimento contendo núcleos isolados em 750 μ l de S2.
10. Para isolar frações subnucleares enriquecidos com adenovírus RC (RCF), sonicate núcleos ressuspenso com um banho de ultra-som, usando dois pulsos 5 min, ou até que todos os núcleos são lisadas como observado por microscopia de campo claro. Use gelo no banho de ultra-sons, conforme necessário para manter as amostras a, ou abaixo de 4 ° C.
11. Camada os núcleos sonicadas sobre um volume igual de solução de 3 (S3) (0,88 M de sacarose, 0,5 _mM de MgCl2) e centrifuga-se a 3000 xg, 4 ° C durante 10 min. Guarde a 1,5 ml sobrenadante como a fracção nucleoplasmic (NPL) a -70 ºC. Ressuspender o sedimento em 700 μ l de S2 e armazenar como RCF a -70 ºC.

3. As análises de Western Blot RCF

NOTA: Para a análise Western Blot de NPL e RCF frações set de lado 640 ul para Npl e 300 μ l para RCF do volume total obtido na etapa 2.11.

1. Misturar 15 μ l de cada fracção subnuclear em tampão Laemmli 2x (4% de SDS, 20% glicerol, 10% de 2-mercaptoetanol, 0,004% de azul de bromofenol, Tris-HCl 0,125 M pH 6,8) e fervura a 95 ºC durante 5 min. Coloque as amostras em uma electroforese de sódio dodecil 10% sulfato-poliacrilamida gel (SDS-PAGE) em gel de desnaturação e de proteínas separadas por 1,5 h, a 20 miliamperes (mA).
2. Proteínas transferir por Eletroblotting durante 1,5 horas a 400 mA para polivinilideno (PVDF) membranas.
3. Bloco de membrana durante 2 horas à temperatura ambiente a partir de leite seco sem gordura a 3% em PBS.
4. Incubar O / N a 4 ºC com o anticorpo primário contra proteína E2A de ligação a DNA viral (B6-8 ⁹⁾ a uma diluição de 1: 500 em leite seco PBS / 0,3% desnatado.
5. Membrana Lavar 3 vezes com PBS / 0,1% Tween 20 durante 10 min.
6. Incubar a membrana com um rato anti IgG secundáriotibody acoplado a peroxidase de rábano (HRP) a uma diluição de 1: 10.000 em PBS durante 2 horas à temperatura ambiente.
7. Lava-se a membrana 3 vezes com PBS / 0,1% Tween 20 durante 10 min.
8. Desenvolver a membrana usando quimioluminescência aumentada e filmes de raios-X.

4. Detecção de ADN viral no RCF

NOTA: Para o isolamento de ADN a partir de ambas as fracções de morosidade e RCF, utilizar 210 μ l para Npl e 100 μ l para RCF do volume total obtido na etapa 2.11.

1. Incubar fracções sub-nucleares durante 1 h a 55 ºC, com 1 mg / ml de proteinase K e 0,5% de Tween 20.
2. Inactivar a proteinase K por incubação das amostras durante 10 min a 95 ° C.
3. Centrifugar as amostras a 20.000 xg, à temperatura ambiente durante 2 min.
4. Recolher o SN. Precipitar o ADN com 1/10 de volume de acetato de sódio 3M e um volume de isopropanol, O / N a 4 ° C.
5. Centrifugar as amostras a 20.000 xg, à temperatura ambiente durante 10 min.
6. Descarte o u SNcantar uma micropipeta. Lava-se a pastilha com etanol a 70% e centrifuga-se a 20000 xg, 4 ° C durante 5 min.
7. Ressuspender o ADN em 10 μ l de 10 mM de Tris-HCl a pH 7,4
8. Quantificar ADN utilizando um espectrofotómetro, medindo a densidade óptica (DO) a 260 nm.
9. Para amplificar o ADN viral, utilizar 100 ng de ADN de cada fracção subnuclear numa reacção de PCR utilizando polimerase de ADN de Taq em 25 μ l de volume de reacção com iniciadores que permitem a amplificação de uma região no interior da unidade de transcrição tardia principal, a partir do nucleótido 7273 de nucleotídeo 7353 (81 pb) (Fw: GAGCGAGGTGTGGGTGAGC; Rv: GGATGCGACGACACTGACTTCA). Use as seguintes condições de ciclos: desnaturação inicial durante 3 min a 95 ºC, seguido por 20 ciclos de amplificação (1 min a 95 ° C, recozimento durante 1 minuto a 62 ° C e extensão durante 30 s a 72 ° C) e um passo final de extensão para 3 min a 72 ºC.
10. Executar o produto de PCR em géis de agarose a 2%, a 90 V. mancha com etídiobrometo em 0,5 μ g / ml de concentração final e visualizar o ADN para corroborar o enriquecimento do ADN viral no RCF. Lidar com brometo de etídio com extremo cuidado e certifique-se sempre usar luvas, como este composto é um potente mutagênico. Descarte brometo de etídio de acordo com as diretrizes institucionais.

5. tarde Viral Detecção de mRNA em RCF

NOTA: Para o isolamento do RNA a partir de ambas as frações NPL e RCF, use 640 μ l para Npl e 300 μ l para RCF do volume total obtido na etapa 2.11.

1. Isolar o ARN a partir de fracções subnucleares usando Trizol de acordo com as instruções do fabricante. Ressuspender o RNA em 50 μ l de DEPC (diethilpyrocarbonate) tenha sido tratada com água.
2. Quantificar o ARN utilizando um espectrofotómetro para medir a densidade óptica a 260 nm (cerca de 3 μ g são obtidos). Armazenar o ARN em 50 ng / ul de aliquotas a -70 ° C.
3. Verifique RNA purificadopara a ausência de contaminação com ADN através da realização de uma reacção de controlo na ausência de PCR de transcriptase reversa (RT), utilizando-se 5 ng de ARN total e as condições do ciclo descritas no passo 4.9.
   1. Se a contaminação de ADN não está ausente amplicão deve ser produzido. Se a contaminação de ADN está presente, incubar as amostras com 10 U de ADNase I, 10 U de inibidor de RNase, 0,1 M de Tris-HCl pH 8,3, 0,5 M de KCl e 15 _mM de MgCl2 durante 30 min a 37 ºC. Prossiga para a re-isolar RNA como no passo 5.1.
4. Para analisar ARNm viral associado a RCF, ampliada 100 ng de ARN a partir de cada fracção subnuclear por RT-PCR utilizando iniciadores desenhados para detectar ARNm tardio adenoviral de diferentes famílias de genes (Tabela 1).
   1. Para a transcrição reversa (RT) a 100 ng de ARN, a partir de cada fracção subnuclear numa reacção de RT utilizando enzima M-MuLV RT em 20 μ l de volume de reacção durante 1 hora a 42 ° C e 10 min a 70 ºC.
   2. Para a amplificação, usar 1μ l do ADNc em reacções de PCR, como no passo 4.9. Use as seguintes condições de ciclos: desnaturação inicial durante 3 min a 95 ºC, seguido por 25 ciclos de amplificação (1 min a 95 ° C, recozimento durante 1 minuto à temperatura especificada no Quadro 1 e extensão durante 30 s a 72 ºC) e um etapa de extensão final de 3 min a 72 ºC.
5. Executar os produtos de RT-PCR em géis de agarose a 2%, em géis de 90 V. mancha com brometo de etídio a 0,5 μ g / ml de concentração final e visualizar a corroborar associação ARNm tardio virai para o RCF. Pega brometo de etídio, tal como indicado no passo 4.10.

6. Imunofluorescência Visualização de RCF

NOTA: Carry-out este procedimento sob uma câmara de fluxo laminar para evitar a contaminação das amostras com as partículas de poeira e filtrar todas as soluções antes de usar.

1. Spot 5 uL da fracção RCF obtidos no passo 2.10 directly em uma lâmina revestida de silano.
2. Deixe o local seco durante cerca de 5 min à temperatura ambiente.
3. Re-hidratado por lentamente e indiretamente pipetando 500 μ l de PBS em uma queda ao lado do local RCF e deixá-lo fluir pela inclinação do slide. Escorra o excesso de PBS de lado.
4. Bloquear, cobrindo a amostra com 500 μ l de PBS / 5% de albumina de soro bovino (BSA) durante 2 horas à temperatura ambiente.
5. Lave o slide 3 vezes por suavemente e indiretamente pipetando 500 l μ da PBS sobre a amostra. Incline o slide para drenar o excesso de PBS.
6. Incubar a amostra com o anticorpo primário contra proteína E2A de ligação a DNA viral (B6-8 ⁹⁾ a uma diluição de 1: 500 em PBS durante 2 horas à temperatura ambiente. Cobrir a amostra manchada com 20 μ l da solução de anticorpo e incuba-se numa câmara húmida, para evitar a secagem.
7. Lava-se a amostra 3 vezes com PBS / 0,02% de Tween 20 e, indirectamente, por suavemente pipetando 500 μ l de PBS para a amostra. Incline o slide para drenar o exsolução de lavagem cesso.
8. Incubar as amostras com rato anticorpo secundário IgG anti acoplado a um fluoróforo que é excitada a 488 nm, a uma diluição de 1: 2000 em PBS, durante 1 hora a 4 ºC. Cobrir a amostra manchada com 20 μ l da solução de anticorpo e incuba-se numa câmara húmida, para evitar a secagem.
9. Lava-se a amostra 3 vezes com PBS / 0,02% de Tween 20 e, indirectamente, por suavemente pipetando 500 μ l de PBS para a amostra. Incline o slide para drenar o excesso de solução de lavagem.
10. Cobrir a amostra manchada sobre a lâmina com uma lamela utilizando 2 μ l de PBS / glicerol a 10% como meio de montagem. Selo com clara unha polonês e armazenar al -20 ºC.
11. Analisar as amostras utilizando um microscópio de fluorescência, com uma objectiva 63x e uma Abertura Numérica 1,4 (NA) num comprimento de onda de 488 nm.

Results

Uma vez que os compartimentos de replicação virai (RC) são estruturas virais induzidas subnucleares compostas por proteínas e ácidos nucleicos, semelhante a outros domínios nucleares, elas provaram ser passíveis de isolamento por gradientes de velocidade com base nas características bioquímicas. As etapas críticas no protocolo de fraccionamento são ilustrados na Figura 1. Em cada passo, as amostras devem ser monitorizada por microscopia de campo brilhante para assegurar a integridade da...

Discussion

A fim de elucidar os mecanismos moleculares que governam a regulação das atividades celulares pela infecção viral, entender a composição e as atividades associadas ao CR seria fundamental. Portanto, para fazer uma análise detalhada do CR, estabelecemos um sistema livre de células que aproveita o tamanho e a composição bioquímica dessas estruturas induzidas por vírus, para isolar frações subnucleares enriquecidas com RC usando um procedimento simples que se baseia em gradientes de velocidade com almofadas de sacarose. As ...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
DMEM	Gibco	12100-046	Quente em 37 º C banho-maria antes do uso
Soro Fetal Bovino	Gibco	12484-028
Sacarose, Ultra Pure	Research Organics	0928S	Prepare uma solução estoque de 2,55 M e armazene a 4 º
Homogeneizador C Dounce	Kontess Glass Company	884900-0000
Branson 1800 Banho Ultrassônico	Branson	Z769533  SIGMA	Ligue 15 min antes de usar.
Anticorpo secundário anti-rato IgG1 de cabra, conjugado Alexa Fluor 488	Life Technologies	A-21121	Use a uma diluição de 1:2.000 em
lâminas PBS Silane-Prep	Sigma	S4651-72EA	Aberto em um gabinete de fluxo laminar
SuperSignal West Pico Substrato quimioluminescente	Pierce ThermoScientific	34080