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Simultânea de dois fótons In Vivo Imagem de Synaptic Entradas e metas pós-sinápticos no córtex do rato retrospl�ico

DOI:

10.3791/53528

March 13th, 2016

In This Article

Summary

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Este vídeo mostra o procedimento de craniotomia que permite imagens crônicas de neurônios no córtex retroesplenial de camundongos usando microscopia in vivo de dois fótons na linha transgênica Thy1-GFP. Essa abordagem é combinada com a injeção de vírus adeno-associado que expressa mCherry no hipocampo dorsal. Essas técnicas permitem o monitoramento de longo prazo da plasticidade estrutural dependente da experiência em RSC.

Abstract

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Este vídeo mostra o procedimento de craniotomia que permite a aquisição de imagens crônicas de neurônios no córtex retroesplenial de camundongos (RSC) usando microscopia de dois fótons in vivo na linha de camundongos transgênicos Thy1-GFP. Essa abordagem cria a possibilidade de investigar a correlação de manipulações comportamentais com mudanças na morfologia neuronal in vivo.

O procedimento de implantação da janela craniana foi considerado limitado apenas às regiões do córtex de fácil acesso, como o campo do barril. Nossa abordagem permite a visualização de neurônios no RSC altamente vascularizado. A RSC é um elemento importante do circuito cerebral responsável pela memória espacial, anteriormente considerado problemático para imagens in vivo de dois fótons.

A implantação da janela craniana sobre o RSC é combinada com uma injeção de vírus adeno-associado recombinante que expressa mCherry (rAAVmCherry) no hipocampo dorsal. O mCherry expresso se espalha para projeções axonais do hipocampo para o RSC, permitindo a visualização de mudanças nos botões axonais pré-sinápticos e nas espinhas dendríticas pós-sinápticas no córtex.

Esta técnica permite o monitoramento de longo prazo da plasticidade estrutural dependente da experiência no RSC.

Introduction

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microscopia de dois fótons revolucionou a observação de atividade cerebral em viver e se comportar animais. Desde a sua introdução, em 1990, rapidamente ganhou popularidade e agora é implementado como uma das abordagens mais interessantes e inovadores no sentido de exame dos vários aspectos da atividade do cérebro in vivo 1,2. Estas aplicações incluem medições de fluxo de sangue, ativação neuronal (por exemplo, usando indicadores de nível de cálcio ou genes precoces imediatos de expressão) e a morfologia das células neuronais. Um número crescente de laboratórios usam microscópios de dois fótons, implementando a técnica em todo o mundo cie....

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Protocol

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Todos os procedimentos experimentais descritos abaixo foram aprovados pelo Comitê de Ética local no Instituto Nencki of Experimental Biology, da Academia Polonesa de Ciências.

Nota: Algumas das cenas do vídeo associado são acelerados. fator de velocidade é indicado nestas cenas.

1. Cirurgia Preparação

  1. Esterilizar todas as ferramentas, recipientes de vidro para líquidos e cotonetes na autoclave. Use luvas dispensáveis. Limpar a mesa cirúrgica, o quadro estereotáxico e toda a área circundante com 70% de etanol. Usar uma almofada cirúrgica estéril para criar um espaço estéril para todo o equipamento es....

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Results

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A expressão de GFP em um subconjunto de neurónios no ratinho repórter Thy1-GFP permite a imagem in vivo dos dendritos corticais e projecções axonais locais no RSC. A Figura 1A mostra a projecção máxima de uma pilha de imagens múltiplas com dendrites GFP positivas visíveis. O corpo da célula é obscurecida por uma artéria. A Figura 1B mostra uma imagem ampliada único plano (zoom digital de 3x) do ramo dendríticas indicado no 1A. Detalhes da morfol.......

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Discussion

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No presente trabalho apresentamos um protocolo para a utilização simultânea de dois fótons de imagem in vivo das entradas sinápticas e metas pós-sinápticos em RSC através de uma janela craniana. O procedimento de implantação consistem em vários passos-chave. Em primeiro lugar, o animal é anestesiado profundamente e fixada na moldura estereotáxica, em seguida, o crânio sobre RSC é diluído com uma broca ao longo das linhas circulares marcados e o osso circular é removido. Após a hemorragia é parada, o rAAV2 / 1 <.......

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Disclosures

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Os autores (KL, MR, KR) têm direitos de patente pendentes (PL410001) para o chassis de suporte usado neste artigo.

Acknowledgements

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Os autores gostariam de agradecer a M. Steczkowski para gravações de voz, M. Borczyk para desenhos, A. Trąbczyńska para a produção de vírus, M. Ziókowska para genotipagem e A. Mirgos de assistência com as filmagens. KR reconhece o presente tipo do vírus adeno-associado recombinante (rAAV) que expressam a proteína fluorescente mCherry sob o controlo do promotor de CaMK K. Deisseroth. Este projeto foi realizado nas instalações centrais do Laboratório de modelos animais e Laboratório de Estrutura do tecido e função, Centro de Neurobiologia, Nencki Instituto de Biologia Experimental, com a utilização da infra-estrutura da CEPT, financiado pela União Europeia - Fundo Euro....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Medicamento
IsofluranoBaxterAErrane 8DG96235-2% pré-operatório
IsofluraneBaxterAErrane 8DG96231,5-2% durante a cirurgia
DexametasoneScan VetDexasone 2mg/ml0,2mg/kg intramuscular
BaytrilBayer2,50%5 mg/kg por via subcutânea
TolfedinaVetoquinol4%4 mg/kg por via subcutânea
ButomidorRichter Pharma10 mg/ml2 mg/kg por via subcutânea
CarprofenoKRKA-PolskaRycarfa 50mg/ml10 mg/kg por via subcutânea
LidocaínaJelfaLignocainumpor via tópica
LidocaínaJelfa20 mg/gpor via tópica
Cirurgia
GelfoamEthiconSpongostan dental; REF MS0005
Pomada para os olhosDedraLubrithaltopicamente
CA colaPelikan Daniel20G Huste
Acrílico dentalSpofaDentalDuracryl Plus
Moldura estereotáxicaStoelting51500D
Tool
CoverglassHarvard AparelhoHSE-64-0720Broca
odontológicaSigmedKeystone KVet
Barra de fixação PorcasdeN/AM2 ou M3 personalizadas podem ser usadas
FórcepsRenexPN-7B-SA
Micro tesouraFalconBM.183.180
Microscópio de dissecçãoKOZOXTL6445T
Imaging
Holder frameFeito sob medida/A
Microscópio de dois fotõesZeissUpright Axio Examiner Z1Unidade do laser: Camaleão coerente 690-1040nm com oscilador paramétrico ótico 1050-1300nm. Objetivos: EC-PLAN-NEUFLUAR 10x/0,1 e LD Plan-APOCHROMAT 20x/1,0. Detecção: Filtros passa-banda Zeiss BP 500-550 (GFP) e BP 570-610 (mCherry) separados por divisor de feixe a 560nm e acoplados a dois fotodetectores GaAsP. 
Reagente
Víruspresente de K. DeisserothVírus adeno-associado recombinante (rAAV) expressando a proteína fluorescente mCherry sob o controle do promotor CaMK
de 3 mm de diâmetro parafuso N

References

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  1. Grutzendler, J., Gan, W. B. Two-photon imaging of synaptic plasticity and pathology in the living mouse brain. NeuroRx. 3, 489-496 (2006).
  2. Svoboda, K., Yasuda, R. Principles of two-photon excitation microscopy and its applications to neuroscience. Neuron

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Two photon ImagingRetrosplenial CortexCranial Window ImplantationAAV InjectionThy1 GFP MicemCherry ExpressionHippocampal ProjectionsDendritic Spine ImagingSynaptic Plasticity MonitoringIn Vivo Microscopy

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