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Artigo de método

Retroductal submandibular Glândula instilação e localizada fracionado irradiação em um modelo de rato de salivar Hipofunção

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DOI:

10.3791/53785

24 de abril de 2016

Neste artigo

Resumo

A hipofunção das glândulas salivares, um dos principais efeitos adversos da radioterapia de cabeça e pescoço, diminui a qualidade de vida do paciente. A demonstração da eficácia de novas terapias em modelos animais é um pré-requisito antes da transição clínica. Este protocolo descreve a administração retroductal e a irradiação local das glândulas submandibulares de ratos.

Resumo

Os tecidos normais que se encontram dentro dos portais de radiação são inadvertidamente danificados. As glândulas salivares são frequentemente lesadas durante a radioterapia de cabeça e pescoço. O dano celular irreparável resulta em uma perda crônica da função salivar que prejudica as atividades orais básicas e aumenta o risco de infecções orais e cárie dentária. A hipofunção salivar e suas complicações afetam gravemente o conforto do paciente. O manejo sintomático atual da condição é ineficaz e são necessárias terapias mais recentes para amenizar a condição.

As glândulas salivares são glândulas exócrinas, que expelem suas secreções para a boca através de ductos excretores. A canulação desses ductos fornece acesso direto às glândulas. A administração retroductal de um agente de contraste às principais glândulas salivares é um procedimento ambulatorial de rotina para diagnóstico por imagem. Usando um procedimento semelhante, o tratamento localizado das glândulas é viável. No entanto, realizar essa técnica em estudos pré-clínicos com pequenos animais apresenta desafios únicos. Neste estudo, descrevemos a técnica de administração retroductal em glândulas submandibulares de ratos, um procedimento que foi refinado no laboratório do Dr. Bruce Baum (NIH)1, e estabelecemos um procedimento para irradiação de glândulas locais.

Introdução

destruição colateral dos tecidos saudáveis ​​é responsável por uma série de efeitos colaterais deletérios dos tratamentos de câncer. Uma parte ou a totalidade das glândulas salivares maiores que se encontram com os campos de radiação são inevitavelmente destruídos. Portanto, a maioria dos pacientes submetidos à radioterapia para câncer de cabeça e pescoço, linfoma do colo do útero, ou a radiação de corpo inteiro antes do transplante de medula óssea sofrem um dos efeitos adversos mais comuns e persistentes de radiação, glândula salivar hipofunção 2-6.

As células acinares produtoras de fluido das glândulas salivares são extremamente sensíveis à radiação. Os danos para as glândulas salivares provoca uma diminuição drástica do fluxo salivar, uma condição referida como hipofunção salivar. A redução crônica do fluxo salivar prejudica principais atividades orais, tais como mastigação, deglutição, fala e gosto, mas as sequelas mórbido de intensa dor, as lágrimas das mucosas, disfagia, infecções oportunistas e cárie dentária piora abem-estar e função de 2,3 paciente de.

Uma vez que a perda de células salivar associada a radioterapia é irreversível, não há nenhum tratamento correctivo de xerostomia. O tratamento actual que incide sobre assuaging sintomas com substitutos salivares artificiais e drogas prosecretory é ineficaz para alívio de longo prazo 6. Embora a melhoria das técnicas de aplicação de radiação ter ajudado a diminuir a gravidade da condição, a toxicidade do tecido normal e as suas complicações continuam a ser um factor limitante no tratamento de cancro 6,7. medidas preventivas para evitar complicações associadas à radioterapia são, portanto, tornando-se a norma. Agentes radioprotetores que limpam espécies de oxigênio de radicais livres, repovoamento celular adotiva, ou melhorar o reparo do DNA estão sendo exploradas para evitar a hipofunção salivar 8-11.

Secreções das glândulas salivares exócrinas escorrer para dentro da boca através dos principais ductos excretores. punção intra-oral de the ductos excretores para injeção de agentes de contraste é feito rotineiramente como um procedimento ambulatorial. Utilizando uma abordagem similar, glândulas salivares podem ser directamente alvo de tratamento localizado 12. Além de reduzir o risco de efeitos colaterais sistêmicos, retroductal instilação glândula adicionou benefícios. O arranjo de monocamada de células salivares em torno da árvore ductal permite a segmentação de todas as células epiteliais salivares, e a encapsulação fibrosa dos actos de glândula como uma barreira para reduzir a propagação indesejada terapêutico. Em essência, as glândulas salivares são perfeitamente adaptados para o tratamento alvo de aflições da glândula, como a hipofunção salivar induzida por radiação.

radiação convencional para o tratamento do câncer é entregue em pequenas doses (1,8-2,5 Gy / fração / dia, cinco dias por semana) por um período de semanas. Portanto, uma terapêutica de rádio-protetora que mostra eficácia contra um esquema de radiação prolongada em modelos experimentais tem maior rolamento clínica. Comprofunção salivar mised após a radiação fracionada foi gravada em pequenos animais, mas fonte de radiação, a fração de dose e protocolos utilizados são variados 9,10,13.

Este relatório estabelece métodos para a entrega retroductal para e radiação localizada do rato glândula submandibular usando fonte de radiação no paciente relevante e fração dose.

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Protocolo

Todos os procedimentos foram aprovados pela Saúde LSU, Shreveport, Animal Care e do Comitê Use e estavam em conformidade com as diretrizes do NIH para o cuidado e uso de animais de laboratório.

1. A canulação do Rat Submandibular glândulas salivares

  1. Preparação da Seringa-Tubing Assembléia
    1. Cortar um comprimento de 10 cm de tubagem de polietileno PE10 com um bisturi. Segurar as duas extremidades da tubagem entre o dedo indicador e o polegar. Aqueça a parte do meio da tubulação acima de uma chama suave e delicadamente esticar o tubo amolecida para dobrar seu comprimento puxando ambos os lados.
    2. Cortar o tubo no meio com um bisturi, num ângulo de 45 ° para obter duas cânulas - cada um com uma extremidade afilada. Expandir a extremidade não-cónica da cânula de encaixe ao longo de uma agulha 29 G de 0,5 cc seringa de insulina.
    3. Remover a cânula, e chamar a 220 ul de solução salina para dentro da seringa. Toque para desalojar bolhas de ar. Montar o cannulum sobre a agulha e empurre o êmbolo da seringa para expelir ar e assegurar um fluxo livre de solução através da cânula. Ajustar o volume para 200 ul.
  2. Canulação Intra-Oral de Submandibular Gland Duct
    NOTA: instrumentos Autoclave antes do procedimento, e esterilizar in-between procedimentos em um esterilizador quente talão.
    1. Pesa-se o rato Sprague Dawley, e dispensar o volume calculado de cetamina (42 mg / kg) / xilazina (8 mg / kg) / acepromazina (1,4 mg / kg) mistura de uma seringa hipodérmica.
    2. Conter o animal segurando-o pela base da cauda entre o dedo indicador eo polegar de uma mão e deslizando a outra mão sobre o corpo para segurá-lo. Coloque o dedo indicador e médio ao longo dos lados da cabeça, enquanto segurar o torso com o polegar e os dedos restantes.
    3. Injetar o anestésico na musculatura dos membros posteriores. Confirmar profundidade da anestesia por pitada dedo do pé e do reflexo palpebral. Aplique lubrificante olho para evitar a secura enquantoanimal está sob anestesia.
    4. Colocar o animal sobre uma plataforma especialmente concebido (Figura 1), e acoplar os dentes incisivos superiores na barra transversal. Puxar o maxilar inferior para baixo passando uma faixa de borracha em torno dos incisivos inferiores e ancorando-lo para a plataforma.
    5. Passe uma sutura estéril através da língua e levante-o para levantar o assoalho da boca. Prenda as suturas com uma pinça hemostática, e passá-lo por cima da barra transversal.
    6. Expandir as bochechas com um mordente espalhador feito sob medida (Figura 1), e sob um microscópio de dissecação localizar as papilas sublingual no chão da boca.
    7. Agarrar a extremidade cónica do tubo PE10 pré-formada usando uma delicada fórceps. Suavemente manipular a ponta da cânula dentro do orifício ductal nas papilas sublingual. Confirmar a colocação da cânula enfiando-o 3-5 mm dentro da conduta; garantir que ele passa sem qualquer obstrução.
  3. Submandibular Glândula Instillation
    1. Injectar atropina (0,5 mg / kg) por via subcutânea na nuca do pescoço, e esperar 10 minutos para a redução das secreções salivares.
    2. Segurar a cânula ao orifício de conduta com uma gota de cianoacrilato (cola), e deixa-se secar. Instilar a solução na glândula (200 ul / glândula) pressionando-se lentamente o êmbolo da seringa a uma taxa de ~ 50 mL / min.
    3. Esmagar o tubo com uma pinça hemostática, e remova cuidadosamente a seringa. Manter o tubo no duto de 30 - 60 min até que o animal recupere a consciência. Remover o fio de sutura que mantém a lingueta.
    4. Transferir o animal para uma gaiola separada, e usar uma lâmpada de calor para mantê-lo aquecido durante a recuperação. Não deixe o animal sem supervisão até que tenha recuperado a consciência para manter decúbito esternal.
    5. Depois que o animal é totalmente ambulatorial, abrigá-lo no biotério, com livre acesso a comida e água.

2. Localizada fracionado Irradiaçãoda glândula submandibular

  1. Conter o animal, tal como descrito antes, e anestesiar com a administração intramuscular de cetamina (33 mg / kg) / xilazina (6 mg / kg) / acepromazina (1 mg / kg) mistura no membro posterior. Confirmar profundidade da anestesia, e aplicar lubrificante para os olhos.
  2. Coloque o supino animal na mesa acelerador linear, e estender o pescoço inclinando a cabeça. Colimar o campo de radiação (3 cm de largura de fenda) para abranger a área do bordo inferior da mandíbula para a parte superior do esterno.
  3. Coloque um bolus de tecido equivalente 1 cm sobre a região, e ajustar a distância entre a origem eo topo do bolo para 100 cm de radiação.
  4. Irradiar o animal (2,5 Gy), utilizando um feixe de 6 MV fotões de um acelerador linear. Taxa de dose, tamanho do campo e distância da fonte de radiação para bolus superfície vai ditar o tempo de exposição. No actual definido acima, os animais foram irradiados a uma taxa de dose de ~ 1 Gy / min.
  5. Repita a exposição; 2,5 Gy / dia durante um total de oitodias; 4 dias / semana, com um intervalo de 2 dias no meio. Manter o animal aquecido durante a recuperação. Transferir o animal para biotério após ele é totalmente ambulatorial.
  6. Recolha estimulada submandibular da glândula salivar 8 semanas após a radiação para medir a função da glândula 14. Euthanize animais sob anestesia por perfusão cardíaca de frio paraformaldeído a 4% / tampão fosfato pH 7,2. Extirpar a glândula submandibular para histológica e imuno-histoquímica 14.

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Resultados

Adaptar uma técnica sialografia minimamente invasivo, o tratamento local das glândulas salivares maiores é viável. Retroductal administração em ratos glândulas salivares submandibulares foi tentada por punção intra-oral de condutas de Wharton (Figura 2). Os canais salivares de Wharton abertos nas papilas sub-lingual, localizado no chão da boca, mas os orifícios não são facilmente visíveis. A inserção da cânula foi, por conseguinte, feito por sondagem suave. Para evitar s...

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Discussão

glândulas salivares muitas vezes recebem doses de radiação além do limiar da recuperação do tecido em pacientes submetidos à radioterapia para cancro do pescoço, ablação eletiva de linfonodos cervicais, ou malignidades hematológicas regionais. Embora as células acinares secretoras de fluido da glândula são terminalmente diferenciado, elas são paradoxalmente sensível à radiação. A função secretora cai dentro das primeiras semanas de radiação, e irreversíveis glândula dano resultou em uma produção crônica de baixo saliva....

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Divulgações

Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

Agradecemos ao Dr. John Chang (Oncologia de Radiação, LSU Health Science Center) pela assistência nas medições da dose de radiação. O estudo foi apoiado pela American Cancer Society (número de concessão: 116945-RSG-09-038-01-CCE), Instituto Nacional de Saúde (número de concessão: R21CA173162) e Feist-Weiller Cancer Center.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Tubo de Polietileno Intramédico (PE10)Becton Dickson427401
Seringa de Insulina de 1/2 cc U-100Becton Dickson309306
Lágrimas ArtificiaisMiller Vet Supply 5098-9840-64
Hot Bead SterilizerFine Science Tools18000-45
Perma-Hand sutura de sedaEthiconK833H
Graefe forcepFine Science Tools11051-10
Olympus SZX16 Microscópio EstéreoHunt Óptica e Imagem 6
MV Acelerador LinearElekta
Bolus - Sem pele Lâmpada de Calor CivcoMTCB410
Braintree ScientificHL-1  110V

Referências

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