Artigo de método

Clearing óptica do Sistema Nervoso Central Rato Usando a claridade passiva

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DOI:

10.3791/54025

30 de junho de 2016

Neste artigo

Resumo

As técnicas de limpeza óptica estão revolucionando a forma como os tecidos são visualizados. Neste relatório, descrevemos modificações do protocolo original Clear Lipid-exchanged Acrylamide-hybridized Rigid Imaging-hYdrogel (CLARITY) que produz resultados mais consistentes e menos dispendiosos.

Resumo

Tradicionalmente, a visualização do tecido exige que o tecido de interesse seja seccionado e fotografado em série, sujeitando cada seção de tecido a deformações não lineares únicas, prejudicando drasticamente a capacidade de avaliar a morfologia celular, distribuição e conectividade no sistema nervoso central (SNC). No entanto, as técnicas de limpeza óptica estão mudando a forma como os tecidos são visualizados. Essas abordagens permitem investigar profundamente as preparações de órgãos intactos, fornecendo uma tremenda visão sobre a organização estrutural dos tecidos na saúde e na doença. Técnicas como o Clear-Lipid-exchanged Acrylamide-hybridized Rigid Imaging-compatible Tissue-hYdrogel (CLARITY) atingem esse objetivo fornecendo uma matriz que se liga a biomoléculas importantes, permitindo que os lipídios espalhados de luz se difundam livremente. A remoção de lipídios, seguida pela correspondência do índice de refração, torna o tecido transparente e prontamente visualizado em 3 dimensões (3D). No entanto, a limpeza eletroforética do tecido (ETC) usada no protocolo CLARITY original pode ser difícil de implementar com sucesso e o uso de uma solução proprietária de correspondência de índice de refração torna caro o uso rotineiro da técnica. Este relatório demonstra a implementação de um protocolo de limpeza óptica simples e barato que combina CLARITY passivo para melhorar a integridade do tecido e 2,2′-tiodietanol (TDE), uma solução de correspondência de índice de refração descrita anteriormente.

Introdução

A capacidade de obter imagens de estruturas neuroanatômicas completas é imensamente valiosa para a compreensão do cérebro na saúde e na doença. Tradicionalmente, a imagem 3D requer seccionamento de tecido para fornecer a resolução axial e visualizar estruturas anatômicas profundas. Essa abordagem pode produzir conjuntos de dados de alta resolução, mas requer técnicas sofisticadas de reconstrução de imagens e é muito trabalhosa. Como resultado, tem sido limitado à imagem de pequenos volumes de tecido1-3. O seccionamento óptico, por outro lado, é adequado para a criação de imagens 3D de alta resolução de tecidos marcados com fluorescência. Como o seccionament....

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Protocolo

Todos os experimentos foram realizados em conformidade com o Animal Care Institucional e diretrizes Use Committee (IACUC). THY1-YFP, PLP-EGFP e PV-TdTomato ratos foram usados ​​para estas experiências, mas nenhum camundongos que expressam proteínas fluorescentes pode ser apagada e fotografada com sucesso.

1. Preparação do Tecido

Cuidado: paraformaldeído (PFA) e acrilamida são tóxicos e irritantes. Realizar experimentos utilizando estes reagentes em um exaustor e com equipamento adequado de proteção individual (jaleco, luvas e proteção para os olhos).

  1. Sacrificar o animal na câmara de eutanásia com ~ ....

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Resultados

Visualizando a organização estrutural do cérebro é fundamental para a compreensão de como morfologia e conectividade afetar a função cerebral na saúde e na doença. técnicas de limpeza ópticas tornam possível a populações de células de imagem em 3D em tecidos intactos, o que nos permite estudar a morfologia e conectividade coesa.

Os ratinhos que expressam proteínas fluorescentes impulsionado por promotores específicos para sub-.......

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Discussão

clearing passiva de tecidos de hidrogel incorporado (clareza passiva) é um método simples e barato para limpar grandes pedaços de tecido. Esta abordagem não requer equipamento específico e pode ser facilmente realizada num agitador com temperatura controlada. Durante o período de algumas semanas, mesmo grandes, tecidos altamente mielinizados, como um cérebro inteiro ou medula espinhal, vai se tornar transparente e adequado para microscopia. Embora este relatório concentrou-se a limpeza de tecidos do SNC, Clareza passiva.......

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Divulgações

Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

Este trabalho foi generosamente apoiado pelos Institutos Nacionais de Saúde / Instituto Nacional de Distúrbios Neurológicos e Derrame (NIH / NINDS) concessão 1R01NS086981 eo Hilton Fundação Conrad N.. Agradecemos ao Dr. Laurent Bentolila e Dr. Matthew Schibler por sua inestimável ajuda com microscopia confocal. Agradecemos a todos os que contribuíram para o fórum CLAREZA (http://forum.claritytechniques.org). Agradecemos especialmente Dr. Karl Deisseroth para a abertura de seu laboratório para ensinar essa técnica fascinante. Os autores são gratos pelo apoio generoso da Organização Mapeamento Cerebral investigação médica, fundação Mapeamento Cerebral Suporte, Pierson-....

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
10x solução salina tamponada com fosfato (PBS)FisherBP399-1tampões
32% paraformaldeído (PFA)Ciências de Microscopia Eletrônica15714-5perfusão e hidrogel
2,2'-tiodietanol (TDE)Sigma-Aldrich166782-500Gsolução de correspondência de índice de refração
40% acrilamidaBio-Rad161-0140hidrogel
2% bis-acrilamidaBio-Rad161-0142hidrogel
VA-044 iniciadorWako Pure Chemical Industries, Ltd.VA044hidrogel
ácido bóricoSigma-AldrichB7901tampão de limpeza
Dodecil sulfato de sódio (SDS)FisherBP166-5tampão de limpeza
Hidróxido de sódioFisher55255-1tampões
Azida de sódioSigma-Aldrich52002-100Gconservante
Triton X-100Sigma-AldrichX100-500Gtampões
HeparinaSigma-AldrichH3393-50KUperfusão
Nitrato de sódioFisherBP360-500perfusão
DAPISondas MolecularesD1306coloração nuclear
99,9% isofluranoPhoenix57319-559-06anestésico
Ácido clolóricoFisherA1445-500tampões
Prato de fundo de vidroWillcoHBSB-5040Pratos Willco
Adesivo reutilizávelBostick371351Blu-Tack
Elastômero de siliconeWorld Precision InstrumentsKWIK-CASTKwik-Cast
Toalhete sem fiaposKimberly-Clark34120KimWipe
Matriz cerebral de ratoRobozSA-2175seccionamento de tecido
Lâminas matriciaisRobozRS-9887seccionamento de tecido
Bomba peristálticaCole-Parmer77122-24pefusion
Microscópio confocal de varredura a laserMicroscopiaLeicaSP5
Software de imagemLeicaLAS AFmicroscopia

Referências

  1. Micheva, K. D., Smith, S. J. Array tomography: a new tool for imaging the molecular architecture and ultrastructure of neural circuits. Neuron. 55, 25-36 (2007).
  2. Kleinfeld, D., et al. Large-scale automated histology in the pursuit of connectomes.

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Etiquetas

Transpar ncia TecidualCompatibiliza o do ndice de Refra oRemo o de Lip diosPolimeriza o de HidrogelMicroscopia Confocal22 TiodietanolC mara de Imagem

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