Artigo de método

Observando mitótico Division e Dinâmica em um embrião de peixe-zebra ao vivo

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DOI:

10.3791/54218

15 de julho de 2016

Neste artigo

Resumo

A mitose é crítica para todos os organismos vivos e os defeitos geralmente levam ao câncer e distúrbios do desenvolvimento. Usando este protocolo de imagem e o peixe-zebra como sistema modelo, os pesquisadores podem visualizar a mitose em um organismo vertebrado vivo e a infinidade de defeitos que surgem quando os processos mitóticos são defeituosos.

Resumo

A mitose é essencial para o crescimento do organismo e diferenciação. O processo é muito dinâmico e requer ordenou eventos para realizar a condensação adequada cromatina, o apego microtúbulos-kinetochore, segregação cromossômica, e citocinese em um pequeno período de tempo. Erros no delicado processo pode resultar em doenças humanas, incluindo defeitos de nascença e câncer. As abordagens tradicionais investigam estados de doença mitótico humanos muitas vezes dependem de sistemas de cultura celular, que não têm a fisiologia natural e contexto de desenvolvimento / específicas do tecido vantajoso quando estudar doenças humanas. Este protocolo supera muitos obstáculos, fornecendo uma forma de visualizar, com alta resolução, a dinâmica de cromossomos em um sistema de vertebrados, o peixe-zebra. Este protocolo irá detalhar uma abordagem que pode ser usada para obter imagens dinâmicas de células em divisão, que incluem: a transcrição in vitro, produção de peixe-zebra / registo, a incorporação de embrião e de imagem time-lapse. Otimização e modifications deste protocolo também são explorados. Usando H2A.F / Z-EGFP (etiquetas cromatina) e mCherry-CAAX (membrana celular etiquetas) embriões com injecção de mRNA, mitose em AB-tipo selvagem, auroraB hi1045 e hi2865 ESCO2 peixe-zebra mutante é visualizado. Alta resolução de imagem ao vivo no peixe-zebra permite observar várias mitoses quantificar estatisticamente defeitos mitóticas e tempo de progressão da mitose. Além disso, a observação de aspectos qualitativos que definem processos inadequados de mitose (ou seja, defeitos congression, segregação errada dos cromossomas, etc.) e os resultados cromossômicas imprópria (isto é, a aneuploidia, poliploidia, micronúcleos, etc.) são observados. Este ensaio pode ser aplicado para a observação de tecido diferenciação / desenvolvimento e é receptivo à utilização de peixe-zebra mutante e agentes farmacológicos. Visualização de como defeitos na mitose levar a distúrbios de câncer e de desenvolvimento será muitomelhorar o entendimento da patogênese da doença.

Introdução

A mitose é essencial um processo celular fundamental para o crescimento, a diferenciação e regeneração de um organismo vivo. Após a preparação exacta e a replicação de ADN na interfase, a célula é preparado para dividir. A primeira fase da mitose, profase, é iniciada por activação de ciclina B / Cdk1. Prophase é caracterizada por condensação de material cromatina em cromossomas. repartição envelope nuclear ocorre na zona de transição entre a profase e prometáfase. Em prometáfase, centrossomas, o centro de nucleação para a formação do fuso, começam a migrar para os pólos opostos enquanto estende microtúbulos em busca de apego kinetochore. Após a fixação, as conversões....

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Protocolo

1. transcrição in vitro

  1. Linearizar pCS2-H2A.F / Z-EGFP e / ou vetores pCS2-mCherry-CAAX por restrição NotI enzima digerir 31. Utilizando um kit de ARN in vitro a transcrição, gerar produtos 5 'de ARNm tapados de cada molde, de acordo com o protocolo do fabricante.
  2. Purifica-se o ARNm utilizando um kit tapados purificação. Siga as instruções do fabricante. Eluir com livre de RNase H 2 O.
  3. Determinar a concentração de ARN por absorvância a 260 nm utilizando um espectrofotómetro. (OD 260 x diluição x 40 ug / ml).
  4. Diluir o RNA a 100 ng / mL para cada H H2A.F / Z-EGFP e mCherry-C....

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Resultados

A Figura 2 demonstra a capacidade de observar muitas divisões celulares utilizando uma ampla visão de campo de um tipo selvagem de cauda de peixe-zebra AB. Mais de sete células mitóticas são gravadas em um prazo de 14 min (Filme 1). Dentro de duas horas tempo de curso, mais de 40 eventos de mitose foram capturados. Em média, 50 células em divisão foram observados no AB e 30 células que se dividem em AUR B M / m embriões

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Discussão

A utilização deste método permite inferir colapso nuclear de envelope, a formação de uma placa de metafase por anexos microtubule-cinetocoro, e a segregação de cromatídeos irmãos para formar duas novas células in vivo e de um modo dependente do tempo. A capacidade de observar a mitose no peixe-zebra é vantajosa em relação a amostras fixadas e sistemas de cultura de células porque as células estão a ser trabalhada na fisiologia natural, o tecido é transparente, o que permite que as proteínas fluorescentes a sere.......

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Divulgações

Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

Agradecemos a Kristen Kwan pelos vetores pCS2-H2A.F/Z-EGFP e pCS2-mCherry-CAAX. Agradecemos a Chris Rodesch por nos ensinar imagens ao vivo em peixe-zebra. Agradecemos a Shawn Williams, Erik Malarkey e Brad Yoder pela assistência em imagens confocais na UAB e no High Resolution Imaging Facility da UAB. A instalação de imagem de alta resolução é apoiada pelo UAB Comprehensive Cancer Center Support Grant (P30CA013148) e pelo Rheumatic Disease Core Center (P30 AR048311). O J.M.P. é apoiado pelo Instituto Nacional de Doenças Neurológicas e Derrame (NIH R21 NS092105) e por bolsas piloto da American Cancer Society (ACS IRG-60-001-53-IRG) e do UAB Comprehensive Cancer Center....

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Vetores pCS2Presente de K. KwanPara plasmídeo de interesse
NotI-HF enzima de restriçãoNew England BioLabsR3189SPara digestão de restrição de plasmídeo
mMessage SP6 kitLife TechnologiesAM1340Para transcrição in vitro
RNeasy Mini kitQiagen74104Para purificação de mRNA
100 x 15 mm Placas de PetriFisher ScientificFB0875712Para abrigar embriões molde
de microinjeçãocaseiroPara segurar embriões durante a microinjeção
Agarose IIAmresco0815-25GPara embriões de embutir
TricaineSigma-AldrichE10521-10GPara anestesiar embriões
Cloreto de sódioSigma-AldrichS9888Para água embrionária (E3 Blue), dissolvida em UltraPure H2O
Cloreto de PotássioSigma-AldrichP3911Para água embrionária (E3 Blue), dissolvido em UltraPure H2O
Cloreto de Cálcio DihidratadoSigma-AldrichC8106Para água embrionária (E3 Blue), dissolvido em UltraPure H2O
Sulfato de MagnésioFisher ScientificM7506Para água embrionária (E3 Blue), dissolvida em UltraPure H2O
Methylene Blue HydrateSigma-AldrichMB1Para água embrionária (E3 Blue), dissolvida em tubo de cultura UltraPure H2O
100 mmFisher Scientific50-819-812ágar derretido
35 mm MatTek CorpP35G-0-20-C Nº 0, vidro de 20 mm, Para embriões embutidos
#5 pinçasDumont72701-DPara descorionar embriões
21 G Agulha de calibre 1 1/2Becton Dickinson305167Para posicionar embriões em ágar
Microscópio de dissecaçãoNikon AZ100Para triagem e incorporação de embriões, qualquer escopo de dissecação servirá
Microscópio confocalNikon A1+Para imagens de lapso de tempo
Software confocalNIS Elements AR 4.13.00Para aquisição e processamento de imagens
Para prato de cultura de fundo de lamínula de

Referências

  1. Musacchio, A., Hardwick, K. G. The spindle checkpoint: structural insights into dynamic signalling. Nat Rev Mol Cell Biol. 3 (10), 731-741 (2002).
  2. Li, X., Nicklas, R. B. Mitotic forces control a cell-cycle checkpoint. Nature. 373 (6515), 630-632 (1995).
  3. Rieder....

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