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O uso de uma bateria de métodos químicos e ecotoxicológicos para a avaliação da eficácia dos Processos de Tratamento de Águas Residuais remover estrogénica Potência

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DOI:

10.3791/54243

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11 de setembro de 2016

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1Institute of Environment Health and Societies, Brunel University London, 2Department of Chemistry, Carnegie Mellon University

Neste artigo

Resumo

Desreguladores endócrinos (EDC) representam um risco significativo para o ambiente aquático. plantas municipais de tratamento de esgoto são grandes contribuintes para a potência estrogênica das águas superficiais. A metodologia prevista neste artigo permite uma avaliação da eficácia e adequação dos processos de tratamento de águas residuais em relação à remoção de EDC.

Resumo

Os compostos desreguladores endócrinos representam um risco substancial para o ambiente aquático. O etinilestradiol (EE2) e a estrona (E1) foram recentemente incluídos em uma lista de observação de poluentes ambientais sob a Diretiva-Quadro Europeia da Água. As estações de tratamento de águas residuais municipais são os principais contribuintes para a potência estrogênica das águas superficiais. Grande parte da potência estrogênica dos efluentes da estação de tratamento de águas residuais (ETAR) pode ser atribuída à descarga de estrogênios esteróides, incluindo estradiol (E2), EE2 e E1, devido à remoção incompleta dessas substâncias na estação de tratamento. Uma avaliação da eficácia dos processos de tratamento de águas residuais requer a determinação quantitativa de substâncias individuais mais frequentemente realizada usando métodos de análise química. Os métodos mais usados incluem cromatografia gasosa-espectrometria de massa (GCMS/MS) ou cromatografia líquida-espectrometria de massa (LCMS/MS) usando monitoramento de reação múltipla (MRM). Embora muito útil para fins regulatórios, a análise química direcionada só pode fornecer dados sobre os compostos (e metabólitos específicos) monitorados. Os métodos de ecotoxicologia também garantem que quaisquer subprodutos produzidos ou compostos estrogênicos desconhecidos presentes também sejam avaliados por meio da medição de sua atividade biológica. Vários bioensaios in vitro, incluindo a Tela de Estrogênio de Levedura (YES), estão disponíveis para medir a atividade estrogênica de amostras de águas residuais. A análise química em conjunto com bioensaios in vivo e in vitro fornece uma caixa de ferramentas útil para avaliar a eficácia e adequação dos processos de tratamento de águas residuais em relação a compostos desreguladores endócrinos estrogênicos. Este artigo utiliza uma bateria de testes químicos e ecotoxicológicos para avaliar os processos convencionais, avançados e emergentes de tratamento de águas residuais em estudos de laboratório e de campo.

Introdução

Preocupações sobre os efeitos adversos de compostos de desregulação endócrina sobre a vida selvagem da saúde reprodutiva, levou a União Europeia a colocar duas substâncias estrogênicas (estradiol e etinilestradiol) em uma "lista de observação" no âmbito da Directiva-Quadro da Água (DQA). EDC abrangem uma variedade de classes químicas, incluindo estrogénios naturais e sintéticos de esteróides, medicamentos, pesticidas e produtos químicos industriais e componentes de produtos de consumo, com efeitos nocivos conhecidos sobre a vida selvagem. Alguns destes compostos podem ter impacto sobre a saúde humana 1.

A pesquisa mostrou que os efluentes da ETAR são estrogênica a pescar 2 e, como consequência muitas águas receptoras são também estrogênica para os peixes 3. Isto foi demonstrado pela primeira vez através de inquéritos nacionais no Reino Unido, que mostrou aumento das concentrações de vitelogenina (um precursor específica do sexo feminino proteína gema 4) no sangue dos peixes machos selvagens e um alto prevalência de intersex (desenvolvimento de ovos e / ou condutas sexuais no testículo de peixes machos) em espécies de peixes normalmente gonochoristic 5,6.

tratamento de águas residuais convencional é tipicamente um processo de três fases que consiste de um rastreio preliminar, seguido por tratamento primário e secundário que remove ambos dissolvidos e suspensos matéria orgânica. A eficácia da remoção de EDC indivíduo é dependente das propriedades físico-químicas das substâncias e sobre a eficácia do processo de tratamento aplicado. Para muitos remoção EDC via adsorção e degradação biológica pode ser significativo, mas incompleta. O tratamento terciário, tais como filtração de areia, pode ser eficaz no aumento da remoção de EDC 7 enquanto que o tratamento avançado utilizando oxidação avançada (por exemplo ozono) ou carvão activado podem ser eficazes em conseguir a remoção completa próximo de 7.

A avaliação de qualquer nova tecnologia para nee tratamento de águas residuaisDS para determinar a eficácia do processo proposto na remoção de EDC. Uma bateria de testes, incluindo a análise química direcionada ao lado de testes ecotoxicologia, usando in vivo e in bioensaios in vitro, fornece dados completos para esta finalidade. Embora muito útil para fins de regulamentação, análise química alvo só pode fornecer dados sobre os compostos (e metabolitos específicos) monitorados. Bioensaios, adicionalmente, permitir que a "detecção" de efeitos adversos de metabolitos e transformação de águas residuais gerados pelo tratamento de subprodutos que poderiam ser detectada 8,9. Este documento descreve a utilização de uma bateria de ensaios laboratoriais químicos e ecotoxicidade para avaliar a eficácia de um número de processos de tratamento de águas residuais avançados e emergentes na remoção da potência estrogénica de esgoto em bruto e tratado e águas receptoras.

Protocolo

declaração de ética: Protocolos para avaliar a desregulação do sistema endócrino atividade de substâncias / misturas em peixes foram aprovados pelo Bem-Estar Animal da Universidade de Brunel e Ética Corpo Review (AWERB) e pela UK Home Office sob os Animais (Scientific Procedures) Act de 1986.

1. Água Coleta de Amostras, Preservação e Extração

  1. coleta de amostras e preservação
    1. Antes da utilização, limpar os frascos com um agente de limpeza tensio-activo adequado. Após a limpeza, lavar as garrafas com água, escorrer e secar.
    2. Recolha de amostras em frascos de vidro de capacidade de 2 L contendo um conservante consistindo em 0,5 g de cobre (II), nitrato e 6 ml de 3,6 M solução de ácido clorídrico. Armazene as amostras abaixo de 10 ° C. Extrair e analisar o mais rapidamente possível a recolha e preservação seguinte.
  2. Extração e clean-up (para análise de estrogénio esteróide) 10
    1. Solid Phase Extraction (SPE)
      1. Antes de extração, para reduzir os sólidos em suspensão, amostras de água do filtro, utilizando 1 um papel poros do filtro tamanho.
        1. Depois filtrou-se amostras de pico com padrão interno por adição de 100 ul de solução spiking padrão interno deuterado estoque contendo 2,4,16,16-d 4 -estrone: 2,4,16,16-d 4 -17β-estradiol (E2) : e 2,4,16,16-d 4 -17α-etinilestradiol (EE2) (todos a 40 ng / L, em metanol) a 1000 ml de efluente (ou 100 ml de efluente), resultando em aumento interno de 2 ng / L para o esgoto amostras de efluentes, e 20 ng / L para amostras de esgoto afluente.
      2. Anexar forros descartáveis ​​válvulas, cartuchos SPE estireno divinil benzeno e reservatórios de cartucho para o aparelho de SPE. Ligar a bomba de vácuo para testar o equipamento está adequadamente vedado.
      3. Pipeta de 5 ml de acetato de etilo em cada reservatório, para condicionar os cartuchos. Ligar a bomba de vácuo (abaixo de 10 inHg para permitir uma taxa de fluxo inferior a 10 ml por minuto)e puxe através do líquido. Não deixe os cartuchos de SPE secar. Repita processo com 5 ml de metanol seguidos por 5 ml de água.
      4. Ateste cada reservatório do cartucho com água e ligar 1/8 "tubos de PTFE entre os reservatórios de cartucho de vidro e frascos de amostras. Ligue o vácuo, a uma taxa de fluxo inferior a 10 ml por minuto e permitir que toda a amostra a passar através do cartucho. esvazie o frasco de resíduos, se necessário.
      5. Seque bem os cartuchos SPE sob vácuo (ou usando ar ou azoto) até que o conteúdo do cartucho de mudar de cor (por exemplo, do marrom escuro ao castanho claro).
      6. Coloque frascos de 10 ml para recolha de vidro limpas e secas em rack e no interior do colector de extração. Verifique se cada forro é acima de um frasco. Pipeta 8 ml de diclorometano em cada reservatório de amostra, ligar a bomba de vácuo (taxa de fluxo inferior a 10 ml por minuto) e puxar o líquido através para dentro de frascos de recolha.
      7. Remova frascos de 10 ml do colector SPEe utilizar um concentrador para reduzir o volume de 1 ml. Transfira cada amostra em frasco de auto-amostrador e mais concentrar para 100 ul usando nitrogênio derrubar equipamento.
    2. Gel cromatografia de permeação (GPC) clean-up
      1. Injecte 95 ul do extracto de amostra eluída no HPLC equipado GPC usando as condições descritas na Tabela 1. Concentra-se o extracto até à GPC 200 mL utilizando um concentrador de azoto e soprar para baixo aparelhos e completa-se até 2,0 ml com hexano.
    3. SPE clean-up
      1. Anexar forros descartáveis ​​válvulas, cartuchos de aminopropilo e reservatórios de cartucho para o colector de SPE. Coloque frascos de 10 ml para recolha de vidro limpas e secas em rack e no interior do colector de extração. Pipetar 2 ml de hexano em cada reservatório, para condicionar os cartuchos. Permitir que o líquido passe através dos cartuchos.
      2. Pipetar o extracto da amostra a GPC para o reservatório e, novamente, para permitir que o líquidopassar através do cartucho. Recolher o fluido de amostra no frasco e retire do colector. Não descarte eluato.
      3. Coloque um novo frasco de 10 ml coleta seca limpa em rack e colocar dentro de colector de extração. Para lavar o cartucho, adicionar 2 ml de acetato de etilo em hexano (30% v / v) para o reservatório e puxar o líquido através do cartucho. Repetir com mais 2 ml de acetato de etilo em hexano, descartando-se todas as lavagens.
      4. Coloque o original 10 frasco ml coleção (passo 1.2.3.2) de volta na prateleira dentro do colector de extração. Pipetar 2 ml de acetato de etilo em acetona (50% v / v) para dentro do reservatório, ligar a bomba de vácuo (abaixo de 2 inHg para permitir um débito de menos do que 2 ml por minuto) e puxar o líquido através de dentro do frasco . Repetir o processo com mais 2 ml de acetato de etilo.
      5. Retirar o frasco de amostras e utilizar um concentrador para reduzir o volume de extracto para 1 ml. Transferir a amostra para um frasco de vidro menor e usar azoto soprar para baixo equipamento, para evaporar tele extrair à secura incipiente.
      6. Adicionar 100 ul de metanol e misturar bem. Transfira o extrato com um auto-amostrador frasco (com 0,3 ml de inserção) e tampa do frasco. Analisar as amostras usando LCMS / MS (ver secção 2).
Coluna: gel de PL, 50 A, 300 x 7,5 mm, 5? M
Coluna Guard: gel de PL, 50 x 7,5 mm, 5? M
Na fase móvel: diclorometano
Quociente de vazão: 1 ml por minuto
Temperatura da coluna: 25 ° C
Detector de UV: 210 nm
Volume de injecção: 95 ul
Modo de injeção: Ficar de péard
Desenhe velocidade: 500 ml por minuto
Ejectar velocidade: 500 ml por minuto
Posição Draw: 3 milímetros
Fracção recolhida: 3 ml da fracção (7 - 10 min) em 10 ml de frascos

Tabela 1. Condições e parâmetros para Gel cromatografia de permeação (GPC) clean-up de amostras de águas residuais extraídos. Detalhes da tabela coluna GPC, fase móvel, temperatura, volume de injeção, eo comprimento de onda do detector.

  1. extração da amostra (para tela Yeast estrogênio)
    1. amostras de filtro, conforme detalhado no ponto 1.2.1.1. Anexar forros descartáveis ​​válvulas, cartuchos C18 SPE e reservatórios de cartucho para o aparelho de SPE. Ligar a bomba de vácuo para testar o equipamento está adequadamente vedado.
    2. Pipetar 5 ml de metanol em cada reservatório, para condicionar o C18 cartuchos. Ligue vácuo (a cerca de 5 inHg para permitir um fluxo de cerca de 5 ml por minuto) e deixar a corrida líquido através, parando por 1 min meio do caminho. Não deixe os cartuchos de correr seca. Repita o processo com qualquer grau HPLC ou água bidestilada (ddH2O). Mais uma vez não secam.
    3. Extrair amostras de água como descrito na seção 1.2.1.4. Continuar a vácuo durante pelo menos 30 min para secar completamente os cartuchos.
    4. Coloque os frascos de coleta de 10 ml limpas e secas em um rack no colector de extração. Verifique se cada forro é acima de um frasco. Adicionar 5 ml de metanol para cada reservatório. Ligue o vácuo (fluxo máximo de 5 ml / min) e permitir que o líquido passe através do cartucho para o frasco, detendo-se durante 2 min a meio.
    5. Antes da análise usando a tela de SIM, reduzir o extracto à secura incipiente usando nitrogênio e reconstituir com 500-1.000 etanol ul. Selar as tampas dos frascos de amostra para evitar a evaporação e manter a 4 ° C (em um free-faíscageladeira).

2. Análise química usando LCMS / MS

  1. Optimizar as condições de funcionamento do sistema LCMS / MS utilizando as instruções do fabricante.
  2. Analisar soluções de calibração padrão, os extractos da amostra, em branco e analítico de controle de qualidade amostras (AQC), utilizando a cromatografia líquida e condições de espectrometria de massa, e monitorar as transições de íon como detalhado na Tabela 2. Determinar a concentração de estrogênios esteróides no extracto de amostra usando interna normas 10.
LCMS
Cromatografia líquida
Coluna: C18 (2), 150 x 4,6 mm, 5 um.
Volume de injecção: 20 ul
Fluxo: 0,5 ml por minuto.
Mfase óvel: Solvente A: água contendo 0,1% de amoníaco.
Solvente B: acetonitrilo.
Programa de gradiente:
Tempo (min) 0 10 18 24 28
Na relação A: solvente B 90:10:00 50:50:00 0.479167 0.479167 90:10:00
Espectrometria de massa
Fonte: Electrospray (iões negativos)
Gás e fonte: CUR: 20 psi, GS1: 70 psi, GS2: 30 psi
TEM: 600 ° C, gás CAD 5 e IonSpray tensão -900
transições de MRM:
E1: 269/145 e 269/143
E2: 271/145 e 271/143
EE2: 295/145 e 295/143
E1-D4: 273/147
E2-D4: 275/147
EE2-D4: 299/145

Tabela 2. Detalhes parâmetros e condições para a análise LCMS / MS de estrogênios esteróides em extratos de águas residuais. Tabela dá volume injeção da amostra e taxa de fluxo, as condições de fase móvel Agradiente nd.

3. estrogénica Atividade Usando In Vitro Tela Yeast estrogênio (YES) Ensaio 8

  1. Preparar e armazenar o mínimo de componentes de média e média de acordo com a Tabela 3 (a) a (g).
(a) meio mínimo (pH 7,1):
Prepara-se uma Fe 2 (SO 4) 3 pela adição de solução de 40 mg de Fe 2 (SO 4) 3 a 50 ml de água bidestilada (ddH2O)
Adicionar 1 L ddH2O para um copo de vidro de 2 L
Adicionar os seguintes componentes para a proveta:
13,61 g KH 2 PO 4
1,98 g de (NH 4) 2 SO 4
4,2 g de KOH
0,2 g de MgSO4
1 ml de Fe 2 (SO 4) 3 solução
50 mg de L-leucina
50 mg de L-histidina
50 mg de adenina
20 mg de L-arginina-HCl
20 mg de L-metionina
30 mg de L-tirosina
30 mg de L-isoleucina
30 mg de L-lisina-HCl
25 mg de L-fenilalanina
100 mg de ácido L-glutâmico
150 mg de L-valina
375 mg de L-serina
Coloque o copo no agitador aquecida com uma pulga magnética e mexa até que tudo é dissolvido
Verifique se o pH é 7,1 e ajustar, se necessário
Usando um 50 ml seringa estéril dispensar 45 ml alíquotas em frascos de vidro com tampas superior parafuso de metal
Esteriliza-se o meio mínimo a 121 ° C durante 10 minutos numa autoclave
Armazenar em temperatura ambiente
(b) D - (+) - Glucose:
Prepara-se uma solução de 20% w / v em ddH2O
Dispensar 20 ml alíquotas para frascos de vidro com tampas superior parafuso de metal
Esterilizar a solução de glucose a 121 ° C durante 10 minutos numa autoclave
Armazenar em temperatura ambiente
(c) Ácido L-Aspártico:
Produzir uma solução stock de 4 mg / ml em ddH2O
Dispensar 20 ml alíquotas para frascos de vidro com tampas superior parafuso de metal
Esterilizar a solução de L-ácido aspártico a 121 ° C durante 10 minutos numa autoclave
Armazenar em temperatura ambiente
(d) Solução de vitamina:
Prepara-se uma solução de biotina por adição de 2 mg de biotina a 100 mL de ddH2O
Pesar 8 mg de tiamina, piridoxina 8 mg, 8 mg de ácido pantotênico, 40 mg inositol. Adicionar todos os componentes secos e 20 ml de solução de biotina a 180 ml ​​de ddH2O
Adicione 10 ml alíquotas estéreis por filtração através de um filtro descartável de tamanho de poro de 0,2 | iM em frascos de vidro estéreis, numa câmara de fluxo laminar de ar
Armazenar a 4 ° C
(e) L-Treonina:
Preparação de 100 ml de 24 mg / ml de L-treonina em ddH2O
Dispensar 10 ml alíquotas para frascos de vidro com tampas superior parafuso de metal
Esterilizar a solução de L-treonina a 121 ° C durante 10 minutos numa autoclave
Armazenar em temperatura ambiente
(f) de cobre (II) Sulfato:
Preparar 25 ml de uma solução 20 mM de cobre (II) Sulfato em ddH2O
Faça alíquotas de 5 ml esterilizadas por filtração através de um filtro de tamanho de poro de 0,2 | iM em frascos de vidro estéreis, numa câmara de fluxo laminar
Armazenar em temperatura ambiente
(g) vermelho de clorofenol-β-D-galactopiranósido (CPRG):
Preparar 25 ml de uma solução a 10 mg / ml de CPRG em ddH2O
Faça alíquotas de 5 ml esterilizadas por filtração através de um filtro de tamanho de poro de 0,2 | iM em frascos de vidro estéreis, numa câmara de fluxo laminar
Armazenar a 4 ° C

Tabela ensaio Tela estrogênio 3. levedura; preparação e armazenamento dos mínimos componentes de média e média.

  1. Preparação e storage de 10x cultura de levedura concentrado
    1. No dia 1, preparar o meio de crescimento (tal como descrito no ponto 3.4.1) e despeje em um frasco cónico estéril. Adicionar 125 ul de 10x concentrado a partir de levedura frasco criogénico armazenado a -20 ° C. Incubar o meio inoculado a 28 ° C durante cerca de 24 horas num agitador orbital.
    2. No dia 2, fazer duas garrafas de meio de crescimento (~ 50 ml) e despeje em frascos cónicos estéreis separadas. Adicionar 1 ml de 24-hr de levedura cultivadas em cada frasco de meio de crescimento. Incubar o meio inoculado a 28 ° C durante cerca de 24 horas num agitador orbital.
    3. No dia 3, verter cada cultura de 24 h para um tubo de centrífuga de 50 mL estéril. Centrifugar os tubos de 50 ml a 4 ° C durante 10 min a 2000 x g. Decantar o sobrenadante, e re-suspender cada sedimento em 5 ml de meio mínimo com 15% de glicerol. Faça alíquotas de 0,5 ml da cultura de levedura concentrado 10x em criotubos e armazenar estéreis de 1,2 ml a -20 ° C durante um máximo de 4 meses.
  2. Prepastocks químicos ração e armazenamento de curvas padrão para
    1. Lavar todos os vidros e espátulas duas vezes com etanol absoluto e deixar secar antes de usar para remover qualquer vestígio de contaminantes.
    2. Pesar E2 directamente num frasco de vidro numa câmara de pesagem pó e ajuste a concentração em volume em etanol absoluto. Dilui-se a uma concentração de 2x10 -7 M (54,48 g / L). tampa de vedação e armazenar a 4 ° C (no frigorífico livre de faísca).
  3. produtor ensaio
    1. No dia 0, preparar o meio de crescimento. Para a garrafa de 45 ml de meio mínimo de 5 ml da solução de glicose, 1,25 ml de solução de ácido L-aspártico, 0,5 ml de solução de vitaminas, 0,4 ml de solução de L-treonina, e uma solução de sulfato de cobre 125 ul (II). Pour meio de crescimento num balão cónico estéril.
      1. Adicionar 125 ul de estoque de 10x concentrado (descongelada do armazenamento a -20 ° C) ao balão e incubar o meio inoculado a 28 ° C durante cerca de 24 horas num agitador orbital.
    2. No dia 1, um rótulo de 96 cavidades 'placa de diluição "estéril e fazer diluições em série (100 ul volume em etanol) de E2 curva padrão e químico (s) de teste / extracto de efluente (s) (por exemplo, EE2).
    3. Etiqueta estéreis de 96 poços 'placa de ensaio (s)' opticamente fundo plano microtitulação. Em cada placa incluir espaços em branco (mais / menos) de solventes e uma curva padrão de E2, além de linhas de produto químico (s) de teste / extracto (s) de efluente.
    4. Pipetar 10 ul de cada concentração de (E2, químicos ou extracto) para o poço apropriado da placa de ensaio. Pipetar 10 ul de etanol em cada poço 'solvente em branco "da placa de ensaio. Deixar placa de ensaio com a tampa para evaporar à secura.
    5. Adicione um frasco de meio de crescimento (~ 50 ml) e adiciona-β vermelho-D-galactopiranósido 0,5 ml de solução de clorofenol (CPRG) por frasco. Determinar a densidade de células de levedura em cultura a 24 horas pela medição da turbidez da cultura a 620 nm num leitor de placas. Inocular o ummédio ssay com 4x10 células de levedura 7 a partir da cultura de 24 horas.
    6. Pour meio de ensaio inoculado em uma calha estéril. Usando uma pipeta de multi-canal adicionar 200 uL de meio de ensaio inoculado para cada poço da placa de 96 poços de ensaio.
    7. Coloque a tampa sobre a placa de ensaio de 96 poços e selar as extremidades com fita. Agitar a placa (s) de ensaio vigorosamente durante 2 min num agitador de placas de titulação e incubar a 32 ° C numa câmara de aquecimento naturalmente ventilado.
    8. No dia 2, agitar a placa (s) de ensaio vigorosamente num agitador de placa de titulação durante 2 min. Voltar para 32 ° C incubadora.
    9. No dia 4, agitar a placa (s) de ensaio vigorosamente durante 2 min num agitador de placas de titulação. Deixar a placa (s) em repouso durante cerca de 1 h, em seguida, ler a placa (s) de ensaio a uma absorvância de 540 nm (absorção óptima para CPRG ~ 575 nm) e 620 nm (para a turbidez) utilizando um leitor de placas. Deixar placa (s) à temperatura ambiente e lido mais tarde, se necessário.
  4. cálculos atividade estrogênica
    1. leituras correctas de ensaio para a turvação, utilizando a equação seguinte: Valor corrigido = amostra ou padrão (E2) de absorvância a 540 nm - [absorvância padrão (E2) ou amostra a 620 nm - em branco absorvância a 620 nm]. Lote E2 curva padrão com espaços em branco apropriados (para verificar se há contaminação) 8.
    2. Utilizar o exemplo corrigido (extrato ou químico) para calcular 'equivalentes' Estradiol. Use as E2 valores curva padrão plotados e equação de regressão (3 parâmetros polinomial ou linear, dependendo fit) para interpolar a amostra / extrair os valores de absorção para valores equivalentes E2. Uso factor de concentração (isto é, água e extraiu-se o volume de etanol ao extracto é re-suspenso em) para calcular a actividade estrogénica na amostra pré-extraída.

4. Avaliação Based Laboratório de estrogênico Atividade Usando In Vivo VITELOGENINA Indução em Male Fathead Minnows

  1. Use peixinhos fathead do sexo masculino (PimephalesPimephales)> 4 meses de idade, que exibem características sexuais secundárias (isto é, o desenvolvimento de tubérculos nuptial e um fatpad dorsal) indicativo de determinação sexual masculina.
    1. Para evitar que a atividade de desova, separada madura machos três semanas (± 3 dias) antes do início do teste. Configure pelo menos dois 45 L aquários de vidro com uma carga máxima de 3 g / L. Para assegurar um número suficiente de peixe saudável para o teste, utilizar um mínimo de 100 machos.
    2. Manter o peixe macho sob condições ambientais idênticas como será experimentada no teste (ou seja, a temperatura da água de 25 ± 1 ° C e 16: 8 hr de luz: escuro fotoperíodo). Manter a taxa de fluxo da água de diluição para cada tanque de garantir um tempo de substituição de 95% de, pelo menos, a cada 6 a 8 horas, ou seja, 330 ml / min para um tanque de 45 litros.
  2. equipamento de ensaio e delineamento experimental
    1. Use tanques de vidro grandes para acomodar uma carga de até 3 g de peixe por litro de water. Para 8 machos adultos (nominalmente 4,5 g cada), use um tanque de 10-20 L.
      1. Use dois tanques repetidos para cada tratamento e proteger cada tanque de quaisquer distúrbios visuais desnecessários (isto é, usar telas cartão laminado entre os tanques). Identificar cada tanque com um número de estudo, uma concentração de exposição e um número de identificação da embarcação.
    2. Para os estudos de efluentes de águas residuais
      1. Na chegada, imediatamente transferir efluente para um tanque de armazenamento a 10 ± 1 ° C. Iniciar a dosagem efluente dentro de duas horas após a recepção do efluente.
      2. Alimentação do efluente, através de uma bomba peristáltica, a partir do tanque de armazenamento de 10 ° C para um recipiente de aclimatação. Aquecer o efluente no recipiente de aclimatação a 18 ± 2 ° C. Bombear o efluente aquecido a partir do recipiente para a dosagem de aclimatação / recipientes de mistura e, em seguida, para o teste de aquários (que contém o peixe). Aquecer os aquários a uma temperatura de 25 ± 1 ° C.
    3. Para os estudos de dosagem química
      1. Pesar produtos químicos de teste em um gabinete de pó de pesagem. Prepare existências químicas concentradas em ddH2O de preferência sem a utilização de solventes.
        Nota: Se solventes são necessários para solubilizar os compostos de teste, utilizar controlos do solvente, além da água de diluição de controlo.
      2. alimentação por gravidade ou água de diluição da bomba de um tanque de cabeçalho de temperatura controlada via dispositivo (s) de controle de fluxo para dosagem / vaso de mistura. Bomba de concentrado da (s) químico utilizando um sistema de bombagem peristáltica para o doseamento / recipientes de mistura. Controlar a taxa de bomba (de química estoque) e taxa de fluxo de água (água de diluição) para atingir a concentração de exposição desejado.
        Nota: Use tubo de silicone para alimentar químico das águas / teste para cada recipiente de ensaio da dosagem / vaso de mistura. Usar um caudal que é suficiente para proporcionar uma substituição vaso de 75% em pelo menos 24 horas, isto é, 20 ml / min para um tanque de 20 litros. Manter o caudal a ± 10% do valor nominal especificado.
    4. Manter a temperatura da água do tanque de exposição a 25 ± 1 ° C, o oxigénio dissolvido acima de 70% do valor de saturação de ar (5,8 mg L-1 a 25 ° C) e ± 0,5 unidades de pH a partir de pH (entre 6,5 e 8,5) ao longo do estudo. Definir condições de iluminação ao fotoperíodo de luz 16 horas: 8 h escuro, com períodos de transição / crepúsculo amanhecer de 20 min.
    5. Alimentar os peixes duas vezes por dia com recém-descongelado adulto congelada salmoura camarão (Artemia) a 2,5 (± 0,1) g por tanque por feed. Também alimentar os peixes uma vez por dia com uma pequena quantidade (dois pitada dedo) de um alimento em flocos peixes tropicais. Deixar um mínimo de 3 horas entre cada feed.
      1. Mantenha um registro alimentação diária para monitorar a resposta de alimentação / comportamento (boa, moderada ou pobre, em comparação com os controles). Sifão os tanques, pelo menos, duas vezes por semana (de preferência diariamente) para remover qualquer restos de comida e fezes. Limpe os lados e fundo dos recipientes de ensaio pelo menos uma vez por semana.
    6. Tome amostra de água semanals de cada tanque para confirmar atividade estrogênica (via tela de levedura) e composição química (via química analítica). Consulte as secções 1-3 para detalhes de amostragem de água, extração e análise.
      Nota: Para cada experiência, utilizar água de diluição de controlo (controlo negativo), controlo positivo (E2 ou EE2) e de pelo menos três diluições de efluente (100, 50 e 25%) ou produtos químicos de teste para monitorizar a resposta de dose. Se novas tecnologias são testados, utilizar composto / efluente com ou sem tratamento (por exemplo, EE2 sem tratamento, com EE2 TAML / peróxido de hidrogénio (H 2 O 2) tratamento de 12; Figura 1).

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Figura 1. Diagrama representando delineamento experimental de um bioensaio in vivo vairão vitelogenina para determinar a remoção de ecotoxicidade do 17α-etinilestradiol usando TAML / tratamento de água peróxido. A experimental configurar consiste em oito 11 L aquários de vidro cada alimentados com fluxo contínuo de água. soluções de produtos químicos individuais e água (filtrada de-clorada) são entregues para as câmaras de mistura. Concentrações nominais (sem reação) nos vasos de mistura são de 2 ng / L EE2, 80 nM TAML e 0,16 g / LH 2 O 2. Soluções de Química (EE2, H 2 O 2 e TAML) são preparadas e doseadas separadamente para que as reacções de início nos vasos de mistura. Peixe (8 do sexo masculino peixinhos fathead por tanque) são expostas à mistura (s) depois de um tempo de contacto de reacção de cerca de 45 minutos. As amostras de água são retirados dos tanques de exposição semanais. As amostras de plasma são tomadas a partir peixinhos fathead para medir a vitelogenina biomarcador estrogénica (VGT) a partir de um grupo de linha de base, no início do estudo, e todos os outros peixes após 21 dias de exposição. Os tratamentos específicos são: 'C'; controle negativo (água de diluição apenas), '+'; controlo positivo de EE2,'+ H'; EE2 mais H 2 O 2, '+ T'; EE2 mais H 2 O 2, mais TAML. Este valor foi modificado a partir Mills et al. 2015 12. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

  1. Procedimento de teste
    1. período de aclimatação
      1. Medir o peso molhado (g) de cada peixes machos sexualmente maduros, e alocar aleatoriamente para cada tanque (8 machos por tanque).
      2. Manter os peixes não afectados do mesmo lote e mantê-las sob as mesmas condições de ensaio. Use estes peixes para substituir todos os indivíduos que apresentam sinais de danos físicos ou a falta de condições durante o período de aclimatação de 7 dias. Assegurando, ao fim do período de aclimatação de cada tanque de tratamento tem 8 machos que tenham completamente aclimatados às condições de ensaio.
      3. Tome amostras de plasma 'de base' de um adicional de 8 machos da mesma batch de peixes machos. Siga o método de amostragem de sangue na secção 4.4 e o método de análise vitelogenina (VTG) em 4,5.
    2. Após o período de aclimatação, entregar stocks de dosagem de efluentes ou químicos para os tanques de exposição durante 21 dias, conforme descrito no 4.2.2 ou 4.2.3. Monitor de mortalidade, o comportamento e a aparência física dos peixes em cada tanque de replicar diariamente antes da primeira refeição do dia. Grave qualquer comportamento ou incidentes anormais.
      Nota: Certifique-se de condições ambientais e as taxas de alimentação manter a saúde dos peixes (pontos 4.2.4 e 4.2.5).
  2. Amostragem de peixes após o período de exposição de 21 dias
    1. 12 horas antes da amostragem, parar de alimentar os peixes.
    2. Etiqueta tubos micro-centrífuga para a recolha de amostras de sangue, adicione ~ 5 mL de aprotinina (um inibidor de protease) e colocá-los no gelo.
    3. Adicione uma solução de 500 mg / L de MS222 (anestésico) por dissolução de 500 mg de MS222 por 1 L de água clorada-des (previamente aclimatadoa 25 ± 1 ° C). Neutraliza-se a MS222 para pH 7,4 ± 0,4 usando NaOH 1 M.
    4. Mova cada peixe do tanque para o MS222 tamponada. Mantenha na solução até à cessação de todo o movimento opérculo (tipicamente 5 ± 1 min).
    5. Meça e registre o comprimento do garfo (mm) sob a anestesia terminal. Usar um bisturi descartável para amputação da cauda, ​​e usar um tubo heparinizado o hematócrito para recolher o sangue a partir da artéria caudal (Figura 2). Cuidadosamente dispensar o sangue para dentro do tubo de microcentrífuga pré-rotulados e manter em gelo.
    6. Matar os peixes imediatamente depois de desenhar o sangue. Confirmar morte por cessação permanente da circulação e / ou a destruição do cérebro. Meça e registre o peso do peixe total (a mais próxima de 0,01 g), e dissecar tecidos, conforme necessário.
    7. Centrifuga-se o sangue (7000 x g durante 5 min a 4 ° C) dentro de 2 horas de recolha. Transferir o sobrenadante de plasma com uma pipeta em um novo 0,4 ml banheira de microcentrífuga rotuladoes e armazenar no gelo. Congelar os tubos contendo plasma em gelo seco dentro de 30 min de centrifugação e armazenar a -80 ° C antes da análise das concentrações de plasma VTG.

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Figura 2. Fotos que retratam peixinho masculino fathead (Pimephales promelas), coleta de plasma e localização dos testículos. No final da exposição de 21 dias todos os peixes devem ser mortos para recolher amostras de sangue. Uma vez sob este comprimento terminal de anestésico peixe (comprimento do garfo, mm) deve ser medido, rapidamente seguido por recolha de sangue da artéria caudal Photo-A:. ​​Linha pontilhada vermelha indica o local de amputação de cauda (um bisturi descartável deve ser utilizado para amputar a cauda ). Photo-B mostra um tubo heparinizado o hematócrito usado para coletar o sangue. Cada peixe deve então ser mortos imediatamente após a sua amostra de sangue foi feita, neste caso, toda a cabeçafoi separada do corpo (Foto-C). Uma vez que o peixe foi morto na cavidade do corpo pode ser aberto para revelar os órgãos internos. Photo-C mostra a localização dos testículos (gônadas) em relação à bexiga natatória (SB) em peixes ciprinídeo, por exemplo, vairão, barata, carpa, etc. Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

  1. Medir as concentrações VTG plasma com um kit de ligado a enzima homóloga VGT ensaio imunoabsorvente (ELISA) desenhado especificamente para peixinhos fathead.
    1. Preparar padrões e tampões VTG como descrito no protocolo do fabricante. Dilui-se a amostra de plasma 1:50, 1: 5000 e 1: 500000 e ensaiar-los em duplicado para obter leituras dentro da gama da curva padrão VTG conforme as instruções do fabricante. Siga as orientações do fabricante para calcular as concentrações de vitelogenina.

5. avaliações de campo da Advanced / Novel Tratamento de Águas Residuais Technologies para Mitigar estrogénica Atividade Usando In Vivo vitelogenina e Intersex Indução em Roach (Rutilus Rutilus)

  1. Captura de Roach selvagens que vivem a jusante do emissários ETAR
    Nota: Use roach (Rutilus Rutilus) ou outras espécies abundantes água doce ou salgados, que são gonochoristic e conhecido por ser sensível à desregulação endócrina estrogênica.
    1. Captura de peixes utilizando pesca elétrica, compensação, prendendo ou outros métodos de pesca reconhecidas, dependendo da situação 13. Transportar o peixe em tanques gaseificadas volta ao laboratório para amostragem.
    2. Preparar tubos de microcentrífuga como detalhado em 4.4.2. Prepare tamponada MS222 como descrito em 4.4.3. Anestesiar os peixes como detalhado em 4.4.4.
    3. Medir o comprimento dos peixes e peso sob anestesia terminal.
    4. Recolha de sangue do caudal da artéria usando disposeringa heparinizada sable. Matar uns aos peixes imediatamente após a coleta de amostra de sangue. Cuidadosamente dispensar o sangue em tubos de microcentrífuga pré-rotulados e manter em gelo. Prepare de plasma tal como descrito no passo 4.4.7 e medir VGT por ELISA (4,5).
    5. Utilizando uma pinça remover 2-3 escamas de peixe de cada peixe e colocar em envelopes de papel pequenas marcados individualmente. envelopes Armazenar à temperatura ambiente em condições secas para determinação da idade dos peixes mais tarde e análise de crescimento.
    6. Abrir a cavidade do corpo com um bisturi para revelar os órgãos internos. Retire o intestino para revelar a bexiga natatória com uma gonadal localizados em cada lado (figura 2). Remova cuidadosamente as gônadas emparelhados com uma pinça de nariz fino e coloque em um frasco de vidro. Cobrir as gónadas com fixador de Bouin, na proporção de 1:10 de tecido: fixador.
    7. Deixar o tecido em Bouin durante 6-24 horas, dependendo do tamanho do tecido (fixador penetra a 1 mm por hora). Uma vez fixado, despeje um fixador do BouinD Substituir com 70% de álcool desnaturado industrial (IMS). Armazenar o tecido fixado à temperatura ambiente até que os tecidos são processados ​​para histopatologia (secção 5.3).
  2. Campo avaliação baseada da atividade estrogênica usando indução in vivo vitelogenina e intersex na roach
    1. O delineamento experimental e configurar
      Nota: Configure os tanques e planta piloto com bastante antecedência da in vivo o trabalho de partida. Iniciar os tanques de fluxo de 3-4 semanas antes de qualquer adição de peixe para o sistema. Monitorar as taxas de fluxo de água, qualidade e condições (pH, temperatura, oxigênio dissolvido, etc.) regularmente para se certificar parâmetros de água pode ser mantida.
      1. Construir tanques grandes (por exemplo, 300-1,000 L) no local, a planta piloto, que pode receber "controle" de-clorada água da torneira, efluente tratado padrão (s) e avançado de efluentes (s) tratada em paralelo. Anexar bomba de ar / aeradores para os tanques. caudais de água estabelecidos para cumprir, pelo menos, 6 tanque de vtrocas OLUME por dia.
        Nota: Certifique-tanques com certeza são bem isolado e protegido para evitar flutuações de temperatura diurna excessiva. Tanques de design para permitir a observação do peixe, por alterações comportamentais (falta de alimentação, etc.), sinais de doença e mortalidade.
    2. Comece a exposição flutuante os sacos de barata (a partir da fazenda de peixes) nos respectivos tanques durante 1 h. Adicione a água do tanque para os sacos gradualmente até a temperatura da água e as condições são ambiente. Solte o peixe em seus tanques.
    3. Alimente roach adulto diariamente em comida de peixe peletizada (tamanho 0,5-0,8). Alimente roach juvenil diariamente na pequena peletizada (tamanhos de pelotização 100-300) não estrogênica de alimentação 14 ad libitum, ajustado com base em alimentos não consumidos. Mantenha um registro de alimentação resposta de alimentação documentação / comportamento diário (bom, moderada ou pobre, em comparação com os controles).
    4. Recolher amostras de água semanais de cada tanque para confirmar atividade estrogênica e composição química. See seções 1-3 para detalhes de métodos de amostragem de água e análise.
  3. O exame histopatológico de peixes gônadas 15
    1. Remova cuidadosamente as gônadas dissecados e fixos (descritas nos passos 5.1.6 e 5.1.7) do recipiente com uma pinça e coloque sobre uma placa de corte.
    2. Use uma lâmina de micrótomo para cortar cada gônada em 3 partes (anterior, médio e posterior) e de cada parte cortada uma secção transversal de espessura de 3-5 mm. Cuidadosamente colocar todas as seis peças numa cassete de biópsia de plástico rotulados e colocar em processador de tecidos usando as temporizações listados na Tabela 4.
    3. Cera tecidos incorporar e seção sobre micrótomo rotativo (3-5 mm). secções de transferência para lâminas de vidro revestido de bio-adesivo e rotulados Colocar as lâminas em uma placa aquecida (fixada em 45 ° C) para secar durante 24 h.
    4. Corar as lâminas, quer manualmente ou utilizando um corante automatizado, utilizando os intervalos descritos na Tabela 5. Colocar uma gota de agente de montagem sobre o tecido manchado, e Lay uma lamela de vidro sobre o agente de montagem para proteger o tecido.
    5. Em primeiro lugar, examine cada slide com pequeno aumento (20X, ou seja objectiva 2X, com linhas 10X olho ampliação) para determinar o sexo eo número de pontos de anexos para a cavidade do corpo 15. Nota alguma anomalia para cada peixe.
    6. Numa ampliação mais elevada (100X ou 400X), examinar o tecido para avaliar as fases gametogenesis, anomalias e a presença de oócitos em tecido testicular. Grave a gravidade da hermafroditas usando o seguinte sistema de classificação que varia de 0 (tecido normal do sexo masculino) para (tecido ovariano 100%) 7 6 (ver Tabela 6).
Número etapa Tratamento propósito Tempo (h)
1 70% de IMS Desidratação 3
2 90% de IMS Desidratação 2.5
3 95% de IMS Desidratação 1,5
4 100% IMS Desidratação 1,5
5 100% IMS Desidratação 1,5
6 100% IMS Desidratação 1,5
7 100% IMS Desidratação 1,5
8 Agente de Compensação Histologia clareira 1,5
9 Agente de Compensação Histologia clareira 1,5
10 Agente de Compensação Histologia clareira 1.5
11 CERA infiltração de cera 1,25
12 CERA infiltração de cera 1,25
Total 20 hr

Tabela 4. regime de Processamento para a cera impregnar tecidos para exame histopatológico. Os tecidos devem ser tratados em um processador de tecido automático. Os tecidos devem ser imersos nas soluções detalhadas para o período de tempo especificado.

Mancha não. Mancha propósito Tempo (min)
1 agente de Histologia Clearing dissolve a cera 15
2 100% IMS hidratação 2
3 90% de IMS hidratação 2
4 70% de IMS hidratação 2
5 ÁGUA DA TORNEIRA (em execução) Rinse 2
6 HAEMOTOXYLIN núcleos celulares manchas azuis 10
7 ÁGUA DA TORNEIRA (em execução) Retire o excesso de 10
8 acidificada IMS dechlorination 20 seg
9 ÁGUA DA TORNEIRA (em execução) Rinse 20 seg
10 Lico 3 sal 20 seg
11 ÁGUA DA TORNEIRA (em execução) Rinse 20 seg
12 1% Eosina (aquoso) Manchas rosa citoplasma 20 seg
13 ÁGUA DA TORNEIRA (em execução) Retire o excesso de 5
14 70% de IMS Desidratação 2
15 90% de IMS Desidratação 2
16 100% IMS Desidratação 5
17 agente de Histologia Clearing Remover IMS agente de ligação 5

Tabela 5. Soluções e tempos de imersão para hematoxilina e eosina (H & E) coloração de tecidos gonadal dos peixes. As lâminas devem ser colocados em cada banho para a alocaçãociado vez em sequência. coloração H & E de tecidos é necessária para determinar os impactos de desenvolvimento ou organização de efluentes de águas residuais estrogênicos nas gónadas de peixe.

Ponto seção Descrição
0 testículo normal masculino
1 Multifocal ovotestis com 1-5 oócitos (geralmente sozinhos) espalhados entre o tecido testicular
2 ovotestis multifocal, 6-20 oócitos muitas vezes em pequenos grupos espalhados entre o tecido testicular
3 ovotestis multifocal, 21-50 oócitos em clusters
4 > 50 <100 e oócitos. Secção é geralmente multifocal e tem a aparência de um mosaico de testeicular e tecido ovariano.
5 > 100 oócitos, geralmente multifocal, mas também poderia ser focal com zonas claramente identificáveis ​​de tecido de ovário e de testículo separada do tecido testicular.
6 > 50 por cento do tecido gonadal sobre a secção é do ovário e é claramente separada do tecido testicular por células epiteliais e tecidos fagocíticas.
7 100 por cento de tecido gonadal sobre a secção é ovário.

Tabela 6. Sistema de pontuação para avaliar a gravidade da condição intersexual em Roach. Histologicamente lâminas preparadas de tecido gonadal deve ser examinado sob microscópio de luz, em 20X, 100X e 400X ampliação, para avaliar qualquer anormalidade e a presença de ovócitos no tecido testicular. Esta tabela é modificada a partir Jobling et al. 2006 6.

Resultados

As tentativas de compreender o impacto de melhorias para os processos de tratamento de águas residuais ou para determinar a tecnologia mais apropriada para retrofit de equipamentos como tratamento terciário na ETAR existente em relação à eficácia da remoção da atividade perturbação do sistema endócrino dos efluentes descarregados, exige não só a medição da química chave componentes que entram as obras, mas requer a análise dos produtos de degradação, que também podem ter actividade perturbação do sistema endócrino. Nos efluentes de esgoto doméstico, as substâncias mais estrogênicos presentes são os hormônios esteróides, estrona (E1), 17β-estradiol (E2) e 17α-etinilestradiol (EE2) 5,8. Estrogénios esteróides são primariamente excretados a partir do corpo, como uma mistura de conjugados inactivos 16,17. Estes estrogênios conjugados são substancialmente desconjugado no sistema de esgotos pela atividade bacteriana e mais degradação ocorre na ETAR. Os esteróides AR desconjugadoe removidos da corrente de águas residuais por adsorção às lamas ou biodegradado durante o tratamento secundário resultando na formação, em primeiro lugar, subprodutos de transformação e, em última análise completa mineralização pode ocorrer do componente activo inicial. A análise química de todos os compostos individuais na corrente de efluente seria difícil, demorado e caro e não iria cobrir componentes activos desconhecidas presentes numa amostra. Além disso, uma soma de a contribuição de cada componente estrogénico só irá fornecer uma indicação da potência estrogénica cumulativa de uma amostra dos compostos analisados. Este é um risco no caso de processos de transformação gerar substâncias estrogênicas desconhecidos ou onde o efluente é de origem industrial. Combinando com análise química in vivo e in vitro em bioensaios Ecotoxicology fornece uma solução para a presença de componentes estrogénicos desconhecidos em misturas, tais como esgotos tratados. Em ensaios in vitro, tais como a levedura Estrogen Screen (SIM) têm sido amplamente utilizados para determinar a actividade estrogénica de efluentes de esgoto e para ajudar a identificar os componentes activos em amostras tratadas 8,18,19. No entanto, as comparações entre in vivo e em ensaios in vitro, podem ser significativos 11 e uma avaliação abrangente de novos processos no que diz respeito ao tratamento de potência de desregulação endócrina requer uma bateria de testes químicos e ecotoxicologia.

A determinação de se as plantas de tratamento individuais ou processos de remoção de compostos activos a partir do fluxo de águas residuais pode ser alcançado por meio de análise química que se segue a extracção da amostra, concentração e limpeza do extracto antes da análise, na maioria das vezes realizada utilizando LCMS (/ MS) ou GCMS (/ EM). Os dados obtidos a partir da análise química pode ser usado para determinar o cumprimento indivíduo concentrações previsivelmente sem efeitos (PNEC) 20 ou norma de qualidade ambientals (NQA) 21 de compostos individuais específicas e, por conseguinte, tais métodos são vitais para os dados de conformidade regulamentar. Além disso, métodos alvo ou não-alvo de análise química permitir a identificação e quantificação de compostos individuais ou isómeros, quando comparada com métodos biológicos, que proporcionam uma resposta total. métodos de análise química, portanto, permitir a avaliação de compostos discretos a ser feita para atender e para enfrentar esses desafios de tratamento de esgoto em regime de estação de tratamento individual. Estudos têm mostrado que o tratamento de águas residuais convencional (por exemplo, plantas de lamas activadas) pode ser altamente eficaz na remoção das hormonas esteróides naturais, embora a remoção da hormona sintética EE2 tende a ser menos eficaz. Ensaios de campo usando um tratamento avançado utilizando técnicas, tais como o ozono, o carbono activado granulado (GAC) e membranas demonstraram, embora a um custo elevado, que pode ser usado como uma solução final de ciclo para remover a EE2 abaixo predinfligido níveis de efeito e para abaixo dos limites de detecção. A Figura 3 mostra a remoção de EE2 usando GAC numa instalação de tratamento de águas residuais municipais em escala piloto. Estudos realizados em escala piloto em estações de tratamento de águas residuais municipais que utilizam extremidade do tubo tratamento GAC também mostram a redução da potência estrogénica seguinte GAC medida usando a tela de levedura estrogênio (YES), como visto na Figura 4.

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Figura 3. dados de campo Exemplo mostrando a remoção de etinilestradiol após o tratamento terciário avançado. As amostras (A) são recolhidos a partir da ETAR após o tratamento convencional (Instalação de lama activada) seguindo os procedimentos descritos para a preservação da amostra. (B) As amostras são extraídos usando extração em fase sólida, limpa-up para remover substâncias interferentes utilizando SPE a fase normal ecromatografia de permeação em gel. (C) O extracto concentrado limpo é concentrada até um volume baixo e analisados ​​utilizando iões negativos por electropulverização LC MS / MS em modo MRM. Os resultados são calculados utilizando padronização interna utilizando padrões internos isotopicamente marcados. No exemplo mostrado, o EE2 está presente no efluente final de ASP, a uma concentração acima do previsto nenhum nível de efeito (PNEC) de 0,1 ng / L e é removido usando GAC e ozono (O3) a uma concentração segura para o ambiente. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

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Figura 4. A foto de uma placa de ensaio de tela Levedura de estrogénio (SIM) (A), que mostra a mudança de cor de amarelo para vermelho, relativos à actividade estrogénica das amostras. Tramas criadas a partir da exibição placa de ensaio SIM corrigido absorvância (540nm) do padrão de estradiol (B), activado efluentes processo de lodo (ASP) e Carvão ativado granular (GAC) amostras de efluentes de águas residuais tratadas (C). Cada amostra foi testada em duplicado. ASP e do GAC efluentes foram extraídos e concentrou-se utilizando os métodos SPE descritos na seção 1. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Ozonização também é eficiente na remoção de estrogénios esteróides e atividade estrogênica de estações de tratamento de águas residuais tratados de maneira convencional. O ozono é capaz de oxidar uma vasta gama de contaminantes orgânicos e matéria orgânica dissolvida em amostras de águas residuais e fornece propriedades de desinfecção. A eficácia de ozonização depende de características da água, tais como pH, quantidade de matéria orgânica e a dose aplicada de ozono. Os estrogénios que são mal removido por tratamento convencional pode serremovido de águas residuais com doses entre 0,8 mg e 2 O 3 / mg de COD. O ozono é um agente oxidante selectivo, o qual reage com sítios de electrões ricos (ligações insaturadas carbono-carbono, compostos aromáticos incluindo álcoois aromáticos), o que torna o ozono aplicável para a repartição de uma série de EDC. No entanto, a eliminação dos compostos individuais não conduz necessariamente a completa mineralização do composto inicial. As substâncias orgânicas na sequência de ozonização podem ser transformadas intermediários gerar ou oxidação transformação dos subprodutos que incluem um número de peso molecular baixo, as classes de compostos polares, tais como aldeídos, cetonas, ácidos carboxílicos, ácidos ceto, e compostos bromados. Exemplos incluem, bromato, formaldeído, acetaldeído e ácidos carboxílicos. Usando in vivo e in bioensaios in vitro foi demonstrado que, embora apenas parcialmente ozono oxida algumas substâncias químicas, os principais metabolitos resultantes têm uma estrog inferiorpotência ENIC e, portanto, a aplicação de ozônio em uma apropriadas da dose resulta em uma alta remoção de atividade estrogênica.

Um dos principais benefícios do tratamento adicional de efluentes é a redução na feminização dos peixes machos em águas receptoras; um efeito adverso que pode levar à redução da fertilidade 3. Estudos in vivo usando peixe (por exemplo, barata ou vairão) expostas a águas residuais mostrar células germinativas femininas ou oócitos nos testículos de peixe macho (por exemplo, como pode ser visto na Figura 5). Intersex ou VTG masculino é ausente ou significativamente reduzido em peixes após o tratamento avançado, como GAC 7 ou ozono 22. Estes estudos mostram que os produtos de transformação produzidos durante a ozonização são não estrogénico, no entanto, isto não se dirige a toxicidade do efluente produzido. Esta questão foi abordada em outros estudos, por exemplo, um estudo de Magdeburg et al. 23, que mostra que a oxidação de ozono subprodutos são tóxicos para truta arco-íris, mas esta toxicidade pode ser removido por meio de filtração de areia a jusante seguinte ozonização.

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Figura 5. As fotomicrografias de um macho normal (A) e hermafroditas (B, C) ​​gónadas de adulto da barata (Rutilo rutilus) expostas a águas residuais em um campo com base avaliação. Fotomicrografia-A, descreve uma secção histológica de testículo do sexo masculino normais. Photomicrograph-B e -C, retrata cortes histológicos de um peixe macho intersex, tendo sido expostos ao efluente de águas residuais processo de lamas activadas durante seis meses. As setas indicam os oócitos presentes no tecido testicular. Barra de escala representa 100 mm em cada fotomicrografia. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

O alto custo do final do tratamento tubulação usando ozônio, GAC ou tecnologia de membrana requer o desenvolvimento de baixo custo alternativa, métodos sustentáveis ​​de desregulação endócrina remoção química (EDC). Além disso, os métodos de adsorção e separação simplesmente separar EDC de uma fase para outra, em vez de eliminá-los através de degradação. Activadores TAML têm sido desenvolvidos para catalisar a oxidação de peróxido de hidrogénio de micro-poluentes em águas residuais 12,24 - 26. TAML ativadores com H 2 O 2 efetivamente degradar EE2 e outros estrogênios esteróides em água pura de laboratório, bem como nos efluentes das estações de tratamento de águas residuais municipais e em amostras de urina perfurantes 12. Os estudos de laboratório, mostra TAML / H 2 O 2 de tratamento proporciona uma elevada remoção de estrogénio esteróide incluindo a remoção de EE2 e reduz substancialmente actividade estrogénica medida in vitro utilizando o bioensaio SIM e substantially diminui feminização peixe in vivo medida usando o bioensaio VGT (Figura 1 e Figura 6).

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Figura 6. Concentração média EE2 actividade estrogénica e em tratados e não tratados águas de tanque (A) e vitelogenina no plasma da linha de base e peixes expostos macho (B). A) EE2 concentração (ng / L, barras azul escuro) foi medida por LCMS / MS , actividade estrogénica (EE2 equivalente ng / L, escuras barras verdes) foi medido através in vitro tela Levedura de estrogénio (SIM). B) vitelogenina Plasma (ng / ml, luz barras azuis) concentração em peixinhos fathead machos foram medidos por meio de uma enzima quantitativa -linked ensaio imunoabsorvente (ELISA). EE2 resultados da análise química indicados como <0,03 ng / L EE2 (isto é, menor do que o limite de detecção (LOD)) foram tratados como tendo metade LOD (isto é, 0,015 ng / L EE2) para uso em cálculos de médias, desvio padrão e a análise estatística. EE2 e atividade estrogênica são concentrações medidos médios da amostra sobre a exposição 21 dias. Plasma VGT foi medida antes da exposição (linha de base) e após 21 dias de exposição. O regime de tratamento consistiu em; controlo negativo (apenas água de diluição), EE2 + H 2 O 2 + TAML, EE2 + H 2 O 2, e somente EE2. As barras de erro em gráfico-A representam o erro padrão da média, as barras de erro em gráfico-B representam o desvio padrão. Letras acima bares em gráfico-B representam semelhança estatística. Este valor foi modificado a partir Mills et al. 12 Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Discussão

estações de tratamento de águas residuais são a principal via de contaminação da água de superfície com EDC. Uma avaliação da eficácia da remoção da actividade endócrina de processos convencionais de tratamento, avançados ou emergentes requer o uso de uma variedade de ensaios químicos e biológicos. A análise química por meio de análise não-alvo e orientada fornece dados qualitativos ou quantitativos sobre a eficácia da remoção de componentes individuais e, portanto, permite uma avaliação a ser feita em relação aos padrões de qualidade ambiental ou concentrações previsivelmente sem efeitos para os compostos ou misturas de compostos analisados.

A geração de produtos de transformação resultante da mineralização incompleta de substâncias após o tratamento e a presença de componentes biologicamente activos desconhecidos nas águas residuais limita a utilidade do teste de produto químico por si só. Uma combinação de in vivo e in bioensaios in vitro em combinação com o químico analíticorastreio ry proporciona uma caixa de ferramentas útil para determinar a eficácia da remoção de EDC por processos de tratamento de águas residuais emergente. Estes testes, quando realizadas juntamente com os parâmetros tradicionais de qualidade da água e outros pontos finais toxicológicos e microbiológicos permitem uma avaliação crítica de tecnologias de tratamento de águas residuais atuais e emergentes.

É importante notar que a levedura telas à base de estrogénio (por exemplo, SIM) não são os únicos ensaios in vitro para determinar a potência estrogénica de produtos químicos e águas residuais. Uma série de ensaios baseados em células de mamífero transfectadas de forma estável foram desenvolvidos também, por exemplo, o ER-CALUX 27 e hERa-HeLa-9903 28 com células humanas de cancro da mama ou células de tumor do colo do útero, respectivamente. O SIM tem sido comparado a ensaios baseados em células de mamíferos semelhantes e foi encontrado para ter um alto nível comparável de reprodutibilidade, verdadeiras taxas estrogênicos positivos e negativos verdadeira identificação 29, although às vezes é considerado ligeiramente menos sensíveis 27. Uma das vantagens de ensaios de repórter de levedura base é que em laboratórios sem experiência significativa com a cultura de células de mamífero o SIM pode ser mais facilmente adoptado, uma vez que requer medidas de controle biológicos menos rigorosas e técnicas estéreis (SIM pode ser executada no topo da bancada, se necessário) . Os ensaios baseados em células humanas também exigem incubadoras de CO 2 e luminômetros comparação com o padrão de incubadoras e de microplacas leitores utilizados no SIM. Ensaios de repórter de estrogênio com base Dois levedura (sim, Saccharomyces cerevisiae e A-SIM, adeninivorans Arxula) estão actualmente submetidos a inter-laboratoriais trilhas para a validação da ISO 19040 "Qualidade da água - Determinação do potencial estrogênico da água e das águas residuais", destacando as indústrias interesse nestas técnicas.

Há um certo número de limitações dos métodos descritos que incluem a contaminação potencialde amostras durante a amostragem, o armazenamento da amostra e análise com substâncias estrogénicas provenientes do ambiente de campo ou laboratório, ou pela contaminação humana (por exemplo, plastificantes, agentes tensioactivos, produtos para cuidados pessoais). Este tipo de contaminação no ensaio SIM (ou outros ensaios baseados em células repórter) irá elevar o fundo e impactam a utilização do ensaio. As amostras de água ou solventes armazenados em garrafas de plástico podem facilmente provocar falsos positivos. Falsos negativos são também motivo de preocupação tanto como LCMS / MS e no ensaio SIM exigem SPE para concentrar estrogênios a níveis detectáveis. A matriz, a escolha de SPE e solvente de eluição sorvente pode afectar a eficiência da extracção e os tipos de compostos eluídos. Usando cartuchos de C18 SPE para a extração usando as condições descritas neste protocolo pode gerar um viés negativo, como compostos altamente polares e básicos seria mal retida pelo adsorvente. Além disso, este protocolo exige que a reconstituição do eluente SIM eluído a partir metanol em etanol por meio de evaporação até à secura azoto financiador resultando na perda de compostos voláteis. Como resultado, o protocolo poderia fornecer subestimada actividade estrogénica de amostras testadas. Estas limitações são especialmente importantes quando se considera o ensaio SIM como compostos desconhecidos ou inesperados pode ser desperdiçada, porque eles não foram extraídos, quer sejam perdidos devido à evaporação. Além disso, a técnica LCMS / MS faz uso de padrões internos marcados para corrigir para a valorização; esta abordagem não pode ser utilizado com o ensaio SIM.

Limitações significativas de ensaios in vivo de efluentes incluem elevado custo e tempo requerido para a avaliação em comparação com métodos in vitro. Actualmente a utilização de testes de embriões de peixes para detectar a actividade estrogénica é limitada. No entanto, tem havido algum sucesso com a produção de estrogênio transgênica responde brilhando embriões de peixes 30, que poderiam ter aplicações futuras. peixinhos Fathead (usados ​​neste PROTOCol) são uma espécie de laboratório comuns e indução VGT em peixes machos é um bio-marcador bem documentada de exposição estrogénica e uma medida quantificável dos efluentes de águas residuais estrogenicidade 22 ou outros compostos estrogénicos ou misturas 31. Orientações de ensaio da OCDE para os produtos químicos de desregulação endócrina foram validados usando adulto vairão, medaka japonês e peixe-zebra 32,33, com VTG ser um biomarcador sensível de exposição estrogênio em todas as três espécies. No entanto, a indução VTG não se correlaciona diretamente a insuficiência reprodutiva e, portanto, as consequências ecológicas da exposição de águas residuais, como visto em severamente roach intersex 3. Por outro lado, barata não são um clássico espécie de laboratório 'para a investigação ecotoxicologia devido ao seu grande tamanho, tempo de geração (2-3 anos para atingir a maturidade sexual), estilo reprodutiva; desova grupo (reprodução) ocorre uma vez por ano, e a dificuldade para identificar os machos das fêmeas (exceto durantea época de desova). No entanto, esta espécie normalmente gonochoristic foi muito bem estudadas, no Reino Unido, devido à descoberta de que a jusante de efluentes de águas residuais estrogénicos, peixes machos exibiram perturbações ao seu Endocrinology (por exemplo, a presença de vitelogenina-específica fêmea no sangue) e histopatologia (ovotestis - o desenvolvimento de ovos nos testículos e / ou condutas reprodutivos femininos) 5,6. Portanto, como uma futura aplicação desses protocolos, barata (ou espécies semelhantes) poderia ser um útil espécies sentinela selvagens para mostrar se melhorias reais para a qualidade das águas residuais (e estrogenicidade reduzida) são vistos nos rios que recebem os efluentes tratados avançados. Eles também podem ser empregadas em final de sistemas de tubagens para monitorar efluentes tecnologicamente melhorado a partir de plantas em escala piloto 7. Ao considerar quais as espécies para usar em nas avaliações de águas residuais in vivo, há uma troca entre espécies de laboratório relativamente rápidas e controladas de teste usando comparação com omais campo com base, mas ambientalmente mais relevantes, testando com espécies nativas. No entanto, tais testes in vivo são de alto custo e só deve ser considerada como o conjunto final de testes seguintes avaliações usando análise química e ensaios in vitro.

As etapas críticas dentro dos protocolos descritos incluem a preparação e manipulação de amostras e material de vidro (ou seja, garrafas e equipamento de amostragem devem ser pré-tratadas com superfície adequada agente de limpeza ativa) para evitar a contaminação das amostras de contaminantes ambientais, incluindo a limitação de contacto das amostras com plásticos e outros materiais que podem produzir falsos positivos. Isto é igualmente importante na concepção e construção de sistemas de exposição aquários e peixes. Idealmente aquários (ações da habitação e durante exposições) deve ser construído a partir de materiais com baixa adsorção 32 com risco de contaminação mínima. O aço inoxidável pode ser usado para tanques de retenção de efluentes ou água.Considerando tanques de uma construção de vidro são preferidos para tanques de peixes (pois isso também proporciona fácil observação do peixe). A utilização de tubos de plástico de grau baixo ou na tubagem deve ser evitado 32, 34 de PVC e ABS pode ser usado se 'adequadamente temperado', isto é, da esquerda para lixiviar para fora quaisquer contaminantes em água corrente de diluição, pelo menos, 12 h antes da utilização. tubo de silicone de grau médico tem sido empregada com sucesso em nossas instalações para entrega bomba peristáltica de produtos químicos e de água de águas residuais / diluição para tanques. Além de considerar a contaminação estrogênica na construção e funcionamento do sistema aquatics, também é importante pensar sobre a dieta do peixe; muitos alimentos decoro peixes foram encontrados para ser estrogénica para peixes. Por isso, é importante testar todos os alimentos para a atividade (por exemplo, na Tela de estrogênio levedura, Veja Beresford et al. 14) antes de usá-los neste tipo de estudos.

Solução de problemasdos protocolos de ensaio de análises químicas ou sim descritos é simplificado se as amostras de garantia de qualidade, incluindo viagens múltiplas, laboratório e espaços em branco de solventes são analisados ​​juntamente com controlos positivos e amostras reais para eliminar resultados falsos positivos e falsos negativos. Positiva (por exemplo, EE2) e negativo (apenas água de diluição) de controlo deve também ser sempre utilizado nos ensaios in vivo para confirmar a sensibilidade de biomarcador biológica esperada ou ponto de extremidade (isto é, VTG ou histopatologia), e permitir que qualquer contaminação inesperado para ser detectada ( por exemplo, de arranjo experimental, dieta, ou águas de diluição). As alterações ao protocolo devem ser validados antes da realização de qualquer estudo.

Com regulação mais estrita dos compostos estrogênicos que entram no ambiente através de efluentes ETAR que se preveja que as tecnologias mais eficazes de tratamento de esgoto terá de ser desenvolvido. A bateria de testes descritos neste manuscrito cumprimentar otestes de avaliação ecotoxicológicos e químicos normalmente aplicado a tratamento de águas residuais as descargas de efluentes da planta. Portanto, a futura aplicação deste tipo de bateria holística de teste deve permitir que desenvolvedores de tecnologia de águas residuais, e operadores de plantas, para implementar os projetos ecologicamente mais segura, considerando os melhores métodos para remover os produtos químicos estrogênicos regulamentadas específicas e atividade biológica em geral.

Divulgações

Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

Os projetos apresentados neste artigo foram financiados pela Severn Trent Water e pela Brunel University London. Os autores gostariam de agradecer a Alan Henshaw e John Churchley por fornecerem assistência de campo e laboratório. T.J.C. agradece ao Heinz Endowments pelo apoio. M.R.M. agradece ao Instituto Steinbrenner por uma bolsa de doutorado Steinbrenner e à Carnegie Mellon University por uma bolsa presidencial.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Lavadora de placas Wellwash VersaThermo Scientific5165010
Leitor de placasMolecular DevicesSpectraMax 340PC
IncubadoraMemmertINB 40037 ° C incubação necessária para ensaio de carpa
Fisherbrand whirlimixer FisherScientific13214789
IcemakerScotsmanAF80
Pipeta digital multicanal F1 de 12 canaisThermo Scientific Finnpipette4661070
kits ELISABiosense LaboratoriesV01018401-096 (peixinho gordo)
V01003402-096 (carpa)
Tubos de microfuga, 0,5 mlAlpha labsLW2372
Tubos de microfuga, 1,5 mlAlpha labsLW2375
Ácido sulfúrico, 95-98%Sigma-Aldrich258105
Histologia
tecidosLeica BiosystemsTP1020
Dispensador de ceraThermo Scientific Raymond LambE66HC
Molde de incorporação de metalLeica BiosystemsVárias
placas quentesThermo Scientific Shandon3120063
Placa fria (EG1150 C)Leica Biosystems14038838037
Pinça aquecida (EG F)Leica Biosystems14038835824
micrótomoLeica BiosystemsRM2235
Banho de flutuação de seção de parafinaEletrotérmicoMH8517
Bancada de secagem de lâminasEletrotérmicoMH6616
Corante automatizado StainmateThermo Scientific ShandonE103/S10L
, Histosette II, biópsiaCera deM493
Thermo Scientific Raymond LambW1
Histo-Clear IINational DiagnosticsHS-202
IMS (mistura de etanol), IDA99TennantsID440
Corrediças de adesão de polisinaThermo Scientific Gerhard MenzelJ2800AMNZ
Lamínulas, 22x50 mmVWR631-0137
HistomountNational DiagnosticsHS-103
Haematoxylin Harris GURRVWR351945S
Eosin, 1%, aquosaPyramid InovationS20007-E
Caixas de lâminas Fisherbrand FisherScientific11701486
Lâminas de micrótomo, MB35Thermo Scientific Shandon3050835
Bouin' s soluçãoSigma AldrichHT10132-1L
Tela de levedura
fluxoforte Labcaire Systems LtdSC12R
Incubadorarefrigerada LMS Incubadora resfriada303
IncubadoraMemmertINB 400
ShakerGrantPSU-10i
Fisherbrand whirlimixerFisher Scientific13214789
Agitador de placasHeidolph Titramax 100544-11200-00
Pipeta digital multicanal F1 de 12 canaisThermo Scientific Finnpipette4661070
pipeta de 12 canais, eletrônicaSartorius735441
microplacas de fundo plano de 96 poçosMP Biomedicals
Thermo Scientific Nunc
Sarstedt		76-232-05
260860
82.1581.001		Descobrimos que todas essas placas multipoços produzem água de baixo nível
HPLCRathburnRH1020
Etanol absolutoHayman KimiaF200238
Fosfato de potássio monobásico anidroSigma-AldrichP-5655
Sulfato de amônioSigma-AldrichA-2939
Hidróxido de potássio, pelletsSigma-AldrichP-1767
Sulfato de magnésio, anidroSigma-AldrichM-2643
Sulfato de ferro (III)Sigma-Aldrich307718
L-LeucinaSigma-AldrichL-8912
L-HistidinaSigma-AldrichH-6034
AdeninaSigma-AldrichA-2786
L-Argenina, cloridratoSigma-AldrichA-6969
L-MetioninaSigma-AldrichM-5308
L-tirosinaSigma-AldrichT-8566
L-isoleucinaSigma-AldrichI-7403
L-lisina, cloridratoSigma-AldrichL-8662
L-fenilalaninaSigma-AldrichP-5482
Ácido L-glutâmicoSigma-AldrichG-8415
L-valinaSigma-AldrichV-0513
L-serinaSigma-AldrichS-4311
Tiamina, cloridratoSigma-AldrichT-1270
PiridoxinaSigma-AldrichP-5669
Ácido D-pantotênico, sal hemicálcicoSigma-AldrichP-5155
InositolSigma-AldrichI-5125
D-BiotinaSigma-AldrichB-4639
D-(+)-Glicose anidra; anômeros mistosSigma-AldrichG-7021
Ácido L-aspárticoSigma-AldrichA-4534
L-TreoninaSigma-AldrichT-8441
Sulfato de cobre (II), anidroSigma-AldrichC-1297
Clorofenolinado-&# 946;-D galactopiranosídeo (CPRG)Sigma-Aldrich10884308001
GlicerolSigma-AldrichG-2025
17 β-EstradiolSigma-AldrichE-8875
Steroids
AcetonaRathburn
AcetonitrilaRathburn
Solução de amôniaRathburn
EtilacetatoRathburn
Nitrato de cobre (II)Sigma-Aldrich
AcetonaRathburn
DiclorometanoRathburn
2,4,16,16-d4-17β-estradiolCDN Isótopos
2,4,16,16-d4-estronaCDN Isótopos
2,4,16,16-d4-17α-etinilestradiolCDN Isótopos
17β-estradiolSigma-Aldrich
EstroneSigma-Aldrich
17α-etinilestradiolSigma-Aldrich Hexano
Rathburn
Ácido clorídricoSigma-Aldrich
MetanolSigma-Aldrich
carbonato de hidrogênio de sódioSigma-Aldrich Sigma-Aldrich
Cartucho de divinil benzeno de estireno (Isolute ENV+) (200 mg/6 ml)CartuchoBiotage
Isolute aminopropil aminopropil (500 mg/6 ml)Estudo Biotage
FishTubo coletor de silício
laranja-branco, furo 0,63 pk 6Watson Marlow982.0063.000
conectores retos para furo 0,5/0,8 pk 20Watson Marlow999.2008.000
tubo de silício pumsil 0,8 furo 15 mWatson Marlow913.A008.016
Bomba persitáltica multicanal série 200Watson Marlow205CA
Tubo de silicone x 15 m (tanques de dosagem)VWRSFM1-3250
tubo de silicone x 15 m (grande para entrada/saída)VWRSFM1-5450
2.5 L vidro winchester pk 4Fisher ScienctificBTF-505-050B
barra de agitação magnética 51 x 8 mm pk 10Fisher ScienctificFB55595 
Etil 3-aminobenzoato metanossulfonato (MS222)Sigma AldrichE10521-10G
17&alfa; -EtinilestradiolSigma AldrichE4876-100MG
Etanol absolutoHayman KimiaF200238 <
forte> SPE< / forte>
1/8 polegada PTFE tubos 'canudos' codificados por cores pk 4Sigma Aldrich57276
forros descartáveis para coletorSigma Aldrich57059
tubos de filtração sem fritas 6 ml pk 30Sigma Aldrich57242
adaptadores de reservior pk 12Sigma Aldrich57020-U
peso em aço inoxidável para coletor pk 4Sigma Aldrich57278
plugue Luer macho para coletor pk 12Coletor de Vácuo Sigma Aldrich504351
SPESigma Aldrich57265
torneiras de parada para extração mainfold (supelco) pk 12WatersWAT054806
Sep-Pak Plus C18 caixa de cartuchos 50 WatersWAT020515
Metanol HPLC grau 2,5 LFisher ScientificM/4056/17
de 7 ml com tampas (58 x 17 mm) pk 399Fisher ScientificTUL-520-031K
Etanol absolutode vácuo F200238Hayman Kimia
, por exemplo, Bomba de vácuo série VPCamlab1136915
Processador de parafina Simport Cartucho de extração em fase sólida de de extração em fase sólida Frascos de vidro Bomba

Referências

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