Exibição Inner-membrana bacteriana para o rastreio de uma biblioteca de anticorpo Fragments

Resumo

Fornecemos um método para rastrear simultaneamente uma biblioteca de fragmentos de anticorpos quanto à afinidade de ligação e solubilidade citoplasmática usando a via de translocação de arginina dupla de Escherichia coli, que possui um mecanismo de controle de qualidade inerente para dobramento de proteínas intracelulares, para exibir os fragmentos de anticorpos na membrana interna.

Resumo

Os anticorpos projetados para a função intracelular não devem apenas ter afinidade com seu antígeno alvo, mas também devem ser solúveis e corretamente dobrados no citoplasma. Os métodos comumente usados para a exibição e triagem de bibliotecas de anticorpos recombinantes não incorporam o controle de qualidade do dobramento de proteínas intracelulares e, portanto, a capacidade de ligação ao antígeno e o dobramento citoplasmático e a solubilidade dos anticorpos projetados usando esses métodos geralmente devem ser projetados separadamente. Aqui, descrevemos um protocolo para rastrear uma biblioteca recombinante de anticorpos de fragmento variável de cadeia única (scFv) para ligação ao antígeno e dobramento citoplasmático adequado simultaneamente. O método aproveita o mecanismo intrínseco de controle de qualidade de dobramento intracelular da via de translocação de arginina gêmea (Tat) de Escherichia coli para exibir uma biblioteca scFv na membrana interna de E. coli. A via Tat garante que apenas proteínas solúveis e bem dobradas sejam transportadas para fora do citoplasma e exibidas na membrana interna, eliminando assim scFvs mal dobrados antes da interrogação para ligação ao antígeno. Após a remoção da membrana externa, os scFvs exibidos na membrana interna são comparados a um antígeno-alvo imobilizado em esferas magnéticas para isolar os scFvs que se ligam ao antígeno alvo. Uma triagem secundária baseada em ensaio imunoenzimático (ELISA) é usada para identificar os scFvs mais promissores para caracterização adicional. A ligação ao antígeno e a solubilidade citoplasmática podem ser melhoradas com rodadas subsequentes de mutagênese e triagem para projetar anticorpos com alta afinidade e alta solubilidade citoplasmática para aplicações intracelulares.

Introdução

Os anticorpos capazes de se dobrar e funcionar no ambiente intracelular são ferramentas promissoras para pesquisa e aplicações terapêuticas. Eles têm a capacidade de modular a actividade da proteína de ligação a uma proteína alvo dentro de células para prevenir interacções proteína-proteína, romper interacções proteína-ácido nucleico, ou impedir o acesso do substrato para enzimas ^1-5.

Embora os anticorpos têm um grande potencial para aplicações intracelulares, engenharia-los para a dobragem correcta e a solubilidade no ambiente intracelular enquanto se mantém a capacidade de se ligar a um antigénio alvo é um desafio. O ambiente citoplasmático redução previne a formação das ligações dissulfureto normalmente necessários para a dobragem estável de anticorpos de comprimento completo e fragmentos de anticorpos, incluindo o anticorpo de cadeia única (scFv) Anticorpos ^6,7. Um número de abordagens de evolução dirigida têm sido utilizados para conceber anticorpos com Hafinidades IGH para alvo antígenos ^8-10. Estas abordagens geralmente usam exibição de fagos, display de superfície de levedura, ou a exposição da superfície bacteriana para rastrear grandes bibliotecas de anticorpos ^11-13. Estes métodos são poderoso e eficaz para a identificação de anticorpos que se ligam a alvos, ainda que eles dependem da via de secreção para proteínas de transporte que vai ser exibido ^14-16. A via secretora transloca proteínas desdobradas a partir do citoplasma para dentro do lúmen reduzindo retículo endoplasmático em levedura ou para o periplasma das bactérias. As proteínas, em seguida, dobrar sob condições de oxidação e são exibidas na superfície da célula ou empacotado em partículas fágicas para o rastreio de afinidade de ligação ^17,18. Como resultado, os anticorpos isolados utilizando essas técnicas não irão necessariamente dobra bem no citoplasma, e a solubilidade intracelular deve muitas vezes ser manipuladas separadamente, se os anticorpos irão ser utilizados em aplicações intracelulares.

Melhorara eficiência de anticorpos de engenharia que são bem dobradas no citoplasma, que previamente relatado o sucesso de MAD-Trap (visualização ancorado à membrana para reconhecimento baseado-Tat de proteínas associando), um método para o rastreio de uma biblioteca de anticorpos scFv utilizando Escherichia coli inner- visor membrana ^19. Bacterianas apresentam-membrana interna baseia-se na via de duplo-arginina translocação (TAT) para o transporte de anticorpos exibidos, em contraste com outros métodos de apresentação comum que utilizam a via de secreção. A via de Tat contém um mecanismo de controlo de qualidade que só permite, proteínas correctamente dobradas solúveis a serem transportados a partir do E. coli citoplasma, através da membrana interior, e para o periplasma ^20,21. Substratos sobre-expressa Tat (ie., As proteínas direccionadas para a via de Tat com uma fusão N-terminal com o péptido de sinal Tat ssTorA) que são bem dobrada no citoplasma formar uma translocação de longa duração com o intermediário N-terminal in o citoplasma e o C-terminal no periplasma ^19. Isto permite a exibição de substratos Tat correctamente dobradas, incluindo fragmentos de anticorpo, sobre a face periplasmática da E. coli membrana interna. Após a remoção da membrana externa por digestão enzimática para gerar esferoplastos, os anticorpos são expostos para o espaço extracelular (Figura 1). Isto permite que os substratos Tat indicadas na membrana interna para ser rastreados para a ligação a um alvo específico. Importante, aproveitando a via de Tat para a exposição da superfície da célula assegura que apenas os anticorpos da biblioteca que são bem dobradas no citoplasma será interrogado para a ligação, o que permite a engenharia simultânea de afinidade e de dobragem de ligação intracelular. Neste protocolo, descrevemos como exibir uma biblioteca de scFv sobre a E. membrana interna coli, deslocar a biblioteca contra um antigénio alvo, e executar uma tela secundária para identificar os componentes mais promissores da biblioteca. Enquanto nos concentramos o protocolo de scFvs, o método pode ser aplicado a engenharia de qualquer proteína cuja aplicação requer dobrar vinculativo e intracelular.

Figura 1. Tela interna da membrana Tat. Em E. coli, anticorpos scFv, expressos como uma fusão com a sequência sinal ssTorA e correctamente dobradas no citoplasma são transportados através da membrana interna. Uma translocação formas intermédias, onde os scFvs são ancoradas na membrana interna com o terminal N no citoplasma e o C-terminal no periplasma. A E. membrana externa de E. coli é digerido enzimaticamente para formar esferoplastos, expondo assim os anticorpos ancorados para o espaço extracelular e torná-los disponíveis para a detecção utilizando um anticorpo que se liga ao marcador de epítopo C-terminal fundido no anticorpo exibido.carga / 54583 / 54583fig1large.jpg "target =" _ blank "> Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Protocolo

1. Prepare a biblioteca scFv como uma fusão com a ssTorA Signal Sequence

1. Obter uma biblioteca de ácido desoxirribonucleico (ADN) contendo variantes de um gene de scFv.
   NOTA: A biblioteca também podem ser construídos utilizando qualquer modo adequado para gerar a diversidade ao longo de todo o gene de scFv ou domínios visados ²² (por exemplo, a terceira regiões determinantes da complementaridade, as CDR3.).
2. Inserir a biblioteca de ADN no plasmídeo pIMD (Figura 2), utilizando métodos de clonagem molecular padrão ^23.
   NOTA: Este plasmídeo expressa scFv como uma fusão genética para a sequência de sinal ssTorA (N-terminal para scFv) e o epitopo marcador FLAG (do terminal C para o scFv). O design do plasmídeo para a exposição da membrana interna foi descrito anteriormente ^19. O plasmídeo pIMD está disponível a partir dos autores.

Figura 2. visor plasmídeo da membrana interna (pIMD) mapa (Passos 1.2 a 1.3). Este plasmídeo contém um promotor lac, a origem ColE1 de replicação, e um gene de resistência ao cloranfenicol. O gene scFv inserido está fundido com a sequência de sinal para direccionar o ssTorA scFv para a via de Tat e a uma etiqueta de epitopo FLAG, com todos os três na mesma grelha de leitura. sítios de enzimas de restrição estão indicados. Para uma biblioteca inserida entre os locais de enzimas de restrição XbaI e NotI, o tamanho do plasmídeo é 2219 pb, mais o tamanho do scFv. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

3. Transformar o plasmídeo de ADN contendo a biblioteca em E. MC4100 ²³ células de E. coli. Recuperar e crescer esta forma bacteriana da biblioteca. Centrifugar a 4000 × g durante 15 min à temperatura ambiente para recolher as células. Remover o sobrenadante e ressuspender as células recolhidasem 25% de glicerol em Luria-Bertani (LB) de mídia. alíquotas armazenar a -80 ° C até ser necessário, ou prosseguir para a Etapa 2.
   NOTA: O protocolo foi verificada com células MC4100, embora outras E. Também se espera que as estirpes de E. coli para ser compatível com o protocolo. A electroporação é o método preferido para a transformação, devido à sua elevada eficiência de transformação. A biblioteca devem normalmente consistir em pelo menos 10 ⁹ scFv variantes, nesta fase, e cada alíquota deverá conter suficientes células de tal modo que a biblioteca está coberta de 100 vezes.

2. Expressar a Biblioteca e preparar esferoplastos

1. Descongelar uma alíquota da biblioteca bacteriana (a partir do Passo 1,3) à temperatura ambiente, e adicionar a alíquota para um frasco contendo 100 ml de meio LB com 20 ug / ml de cloranfenicol (Cm). Crescer durante 3 h a 37 ° C e 225 rpm num agitador incubadas.
2. Após 3 h, remover o recipiente de recolha do agitador incubadas a 37 ° C. Permitir a expressão da biblioteca de scFvproceder O / N durante 15 a 22 h a 20 ° C e 225 rpm num agitador incubadas.
   NOTA: Não indutor é necessária para utilizar o plasmídeo pIMD, como o promotor é furado. Note-se que as células MC4100 não sobre-expressam o repressor lac (Lacl e não é encontrada no plasmídeo).

Figura 3. células de E. coli e esferoplastos. (A) E. células de E. coli são de forma cilíndrica. (B) Após spheroplasting utilizando EDTA e lisozima, a membrana exterior da E. células de E. coli é rompido, e os esferoplastos resultantes são de forma esférica. Diferencial de contraste de interferência (DIC) imagens de microscopia foram obtidos usando uma objectiva 100X de um microscópio invertido. Por favor Clamber aqui para ver uma versão maior desta figura.

3. Prepare os esferoplastos biblioteca.
   NOTA: Os esferoplastos são formadas pela ruptura da membrana exterior da E. coli e são de forma esférica (Figura 3).
   1. Prepare os tampões necessários.
      NOTA: Todos os buffers deve ser estéril.
      1. Prepare 1 × solução salina tamponada com fosfato (PBS; pH 7,4) por dissolução de 8 g de NaCl, 0,2 g de KCl, 1,44 g de Na ₂ HPO _4, e 0,24 g _de KH ₂ PO ₄ em _H2O destilada a um volume final de 1000 ml. Manter em gelo.
      2. Prepare PBS com 0,1% (w / v) de soro de albumina de bovino (BSA) por dissolução de 0,2 g de BSA em 200 mL de 1 x PBS. Manter em gelo.
      3. Preparar o tampão de fraccionamento (FB) por mistura de 7,5 ml de H esterilizada por filtração a 1 M de sacarose, 1 ml de tampão Tris 1 M (pH 8,0), e 1,5 ml de destilado ₂ O. Manter em gelo.
      4. Prepare 1 mM de ácido etilenodiaminotetra-acético (EDTA) por adição de 30 ul de OF 0,5 M de EDTA para 14,97 ml _{de H2O} destilada
      5. Prepare 0,5 M _MgCl2 por dissolução de 4,76 g de MgCl ₂ em 100 ml de _H2O destilada Manter em gelo.
   2. Retirar o frasco do agitador, e medir a densidade óptica (DO) a 600 nm utilizando um espectros otómetro para determinar a densidade celular. Calcular o volume da cultura induzida necessária de modo a que cada amostra para spheroplasting tem 1 x 10 ¹⁰ células.
      NOTA: A aproximação de uma DO ₆₀₀ de 1, indicando uma concentração de 10 ⁹ células / ml para E. coli pode ser utilizado ^24.
   3. Centrifugar o volume calculado de cultura induzida num tubo de microcentrífuga de 1,5 ml a 12.000 x g à temperatura ambiente durante 5 min. Preparar pelo menos duas amostras, no caso de surgir um problema na preparação da amostra.
   4. Remover o sobrenadante das culturas centrifugadas e ressuspender cada pelete de células em 100 ul de FB gelada. Centrifugar a 12.000 ×g à temperatura ambiente durante 1 min, e, em seguida, remover o sobrenadante por pipetagem. Ressuspender cada sedimento em 350 ul de FB arrefecido em gelo suplementado com 3,5 uL de 10 mg / ml de lisozima.
   5. Lentamente vortex cada tubo enquanto se adiciona, gota a gota, 700 mL de EDTA a 1 mM, e depois incubação dos tubos à temperatura ambiente durante 20 min enquanto gira lentamente num rotor tubo para misturar as amostras. Retire os tubos da rotador, adicionar 50 ul de gelado 0,5M _MgCl2 a cada tubo, e incubar em gelo durante 10 min. Centrifugar os tubos a 11.000 x g a 4 ° C durante 10 min.
   6. Isolar o sedimento de esferoplastos.
      1. Use uma micropipeta com uma ponta de 1 ml para puxar lentamente parte de pellet. Mantendo o tubo em ângulo com a abertura directamente acima de um novo tubo de 1,5 mL, lentamente levantar a ponta da pipeta para fora do sobrenadante e o sedimento deslizar no novo tubo.
      2. Se um volume significativo de sobrenadante é transferido para o novo tubo, removê-lo por pipetagem. Se a pastilha não é firme ENOurg para transferir, re-centrifugar a 11000 × g durante 2 min e tentativa de isolamento de novo pelete.
   7. Ressuspender o sedimento em esferoplastos a cada tubo em 1 ml de gelado 1 × PBS. Alternam entre pipetagem e lentamente vórtex num suporte vortex até que o sedimento é ressuspenso completamente. Não manter as amostras fora do gelo durante mais de 2 minutos de cada vez, e retornar para o gelo durante pelo menos 5 minutos antes da remoção do gelo novamente. Mantenha os esferoplastos a 4 ° C (até 2 dias) até ser usado para filtração no Passo 4.

3. imobilizar o antigénio alvo em esferas magnéticas

1. Biotinilar o antigénio alvo in vivo durante a produção recombinante em E. células de E. coli. Como alternativa, use a conjugação química ²⁵ ou compra antigénio alvo que já foi biotinilado, e continue na Etapa 3.2.
   1. Adicione 816 g bicina a 50 ml de água para fazer 10 × bicina buffer. Dilui-se a buffer para 1 × em _H2O destilada e aquecer a 50 ° C. Adicionar 14,7 mg de biotina e 12 ml de tampão aquecida a 1 × bicina para fazer uma solução de biotina que é biotina 5 mM em 10 mM de tampão bicina. Armazenar a -20 ° C até ser necessário.
   2. Express e biotinilar a proteína alvo utilizando o plasmídeo pAK400cb ^BCCP-26, que permite a produção do antigénio alvo como uma fusão com a proteína transportadora de biotina carboxilo (BCCP).
      NOTA: E. células de E. coli nativa biotinilar BCCP, eliminando a necessidade de purificar e quimicamente biotinilar a proteína alvo antes da imobilização em esferas revestidas com estreptavidina. O E. nativa coli biotina ligase BirA é suficiente para biotinilação da proteína de fusão.
      1. Crescer E. coli contendo o plasmídeo de biotinilação (com o antigénio alvo inserido como uma fusão com o terminal N de BCCP) O / N durante 15 a 18 horas em 5 ml de meio LB suplementado com 20 ug / ml de Cm, a 37 ° C sob agitação à 225 rpm.
      2. Medir a OD a 600 nm utilizando um espectrofotómetro e calcular o volume de cultura necessário (v _Adicionar) para subcultura a uma OD inicial de 0,05 em 25 ml de meio LB fresco com 20 ug / ml cm, usando a equação: V _add = (0,05 × 25 mL) / (OD _600-0,05), em que OD ₆₀₀ é a densidade óptica da cultura o / N e V _{de adição} é o volume de o / N cultura para adicionar ao LB fresco Subcultura e crescer até uma densidade óptica de 0,5 a 0,8 em um agitador incubadas a 37 ° C e 225 rpm.
      3. Adicionar β-D-1-tiogalactopiranósido para uma concentração final de 100 uM e biotina até uma concentração final de 5 uM de isopropilo. Induzir a expressão num agitador incubadas durante 15 a 22 h a 20 ° C e 225 rpm.
   3. Colheita bactérias por centrifugação a 4000 x g a 4 ° C durante 10 min. Remover o sobrenadante. Armazenar o sedimento a -20 ° C até que esteja pronto para uso.
   4. Adicionar1 ml de um detergente de lise de células por 0,2 g de sedimento de células. Ressuspender por pipetagem e rodar cuidadosamente durante 20 min para lisar as células. Após a lise, centrifugar a 16000 x g e 4 ° C durante 20 min. Pipetar o lisado solúvel (sobrenadante) para um novo tubo de 1,5 mL.
   5. Usar uma coluna peso molecular de corte de 3 kDa, para remover a biotina não ligada. Pipetar o lisado na coluna, e centrifuga-se a 20 ° C de acordo com as instruções do fabricante. Lava-se com 1 x PBS até a biotina no lisado foi diluída 100 vezes e o volume do lisado lavado é igual ao volume original de lisado. Transferir o lisado para um novo tubo.
2. Imobilizar o antigénio alvo biotinilado em esferas magnéticas revestidas com estreptavidina.
   1. Prepare 1 × PBS e 1 x PBS com BSA a 0,1% (v / w) tal como descrito no passo 2.3.1.
   2. Prepare os grânulos magnéticos.
      NOTA: Este requer a utilização de uma cremalheira de separação magnética.
      1. Ressuspender streptavIDIN-pérolas magnéticas revestidas no seu recipiente original. De qualquer vórtice durante pelo menos 30 seg ou girar durante 5 min.
      2. Transferir 7-10 × 10 ⁹ esferas para um tubo de 1,5 ml.
         NOTA: O volume necessário será dependente da concentração de talão fornecido pelo fabricante.
      3. Colocar o tubo contendo os grânulos sobre o bastidor íman durante 2 minutos para recolher as esferas, no lado do tubo. Com o tubo ainda no ímã, remova cuidadosamente o sobrenadante por pipetagem sem perturbar as contas.
      4. Para lavar, remover o tubo do ímã, e ressuspender as contas em 1 ml de 1 × PBS por pipetagem sem gerar bolhas. Devolver o tubo para o ímã por 2 min para recolher as contas, e remova cuidadosamente o sobrenadante por pipetagem. Repetir o processo mais duas vezes para um total de três lavagens. Certifique-se de que nenhum líquido é deixado no tubo após a lavagem final.
   3. Adicionar o ligado contendo o antigénio biotinilado para o BEA magnéticads.
      1. Remover o tubo do íman e voltar a suspender as pérolas em 1 ml de lisado (a partir do passo 3.1.5). Incubar à temperatura ambiente durante 30 min enquanto rotação suave.
      2. Colocar o tubo sobre o íman durante 3 min para recolher as esferas revestidas com antigénio. Lavam-se as esferas revestidas com cinco vezes com 1 x PBS com BSA a 0,1% da mesma maneira como descrito nos Passos 3.2.2.3 a 3.2.2.4. Após a lavagem final, voltar a suspender as pérolas em 1 × PBS com 0,1% de BSA até o mesmo volume utilizado no passo 3.2.2.2.
      3. Se o antigénio alvo imobilizado é estável a 4 ° C, armazenar as pérolas revestidas a 4 ° C até ser necessário para a filtração. Caso contrário, vá para a Etapa 4.

4. Tela Biblioteca scFv por Efeito panning contra o antigénio alvo (Figura 4)

Figura 4. Efeito panning (Passo 4). Antigen-pérolas magnéticas revestidas com are incubadas com esferoplastos que expressam variantes biblioteca de anticorpos. O DNA de plasmídeo a partir de esferoplastos ligado a pérola é recuperada e utilizada para gerar uma sub-biblioteca, que é rastreada utilizando o ecrã secundário baseado em ELISA. Correspondentes etapas do protocolo são anotados. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

1. Incubar as contas revestidas com esferoplastos.
   1. Usar um grânulo de esferoplastos a proporção de aproximadamente 5: 1. Adicionar 4 x 10 esferoplastos ⁹ e 8 × 10 ⁸ esferas para um tubo estéril de 15 ml.
      NOTA: Assume-se que não há células foram perdidas durante o processo de spheroplasting, de modo que a concentração é ainda 1 × 10 ¹⁰ esferoplastos / ml.
   2. Adicionar 1 × PBS com BSA a 0,1% para levar o volume total a 4 ml. Aliquota em quatro tubos de 1,5 ml com 1 ml de cada vez. Incubam-se as reacções a 4 ° C durante 5 h, enquanto se suavemente rotativa.
2. Prepare os esferoplastos-bound grânulo por reacção em cadeia da polimerase (PCR).
   1. Colocar os tubos de reacção panning no íman durante 3 min. Remover o sobrenadante por pipetagem, e lava-se os esferoplastos-bound grânulo quatro vezes com gelo frio 1 × PBS com BSA a 0,1% da mesma maneira como descrito nos Passos 3.2.2.3 a 3.2.2.4. Ressuspender as esferoplastos-bound talão em cada um dos tubos em 25 ul de _H2O destilada Armazenar os grânulos à temperatura de -20 ° C ou prosseguir para a Etapa 4.3.
3. Executar todo o plasmídeo de PCR em esferoplastos ligado com pérolas para amplificar os plasmídeos contendo os genes de scFv ligado a grânulos.
   1. Obter iniciadores com as seguintes sequências: 5'CCAACTCTTTTTCCGAAGGTAACTG3 '(iniciador directo) e 5'TAGCTCTTGATCCGGCAAACAAA3' (iniciador inverso).
      NOTA: Estes irão ligar-se de ponta a ponta em cadeias opostas do plasmídeo pIMD (Figura 2) e são concebidos para emparelhar com uma característica comum de pIMD, de modo a amplificação irá ocorrer independentemente doscFv sequência variante.
   2. Fosforilar os iniciadores.
      NOTA: Sem fosforilação, re-ligação não irá ocorrer. Iniciadores também podem ser encomendados com 5'-fosforilação, em vez de usar este método fosforilação neste protocolo.
      1. Em um tubo de 0,5 ml, configurar uma reacção de fosforilação para o iniciador de PCR para a frente, como descrito na Tabela 1. Repetir este processo para o iniciador inverso.
      2. Incubam-se as reacções a 37 ° C durante 1 h. Em seguida, incubam-los a 65 ° C durante 20 minutos para desactivar a quinase de polinucleótidos de T4 (PNK). Armazenar os iniciadores fosforilados a -20 ° C.
   3. Executar PCR.
      1. Num tubo de PCR, preparar a reacção de PCR tal como descrito na Tabela 2.
         NOTA: Vários reações podem ser preparados para maior rendimento. Os esferoplastos ligado com pérolas não utilizados podem ser armazenados a -20 ° C.
      2. Aquecer as reacções de PCR a 98 ° C durante 15 minutos num termociclador para assegurar a lise completa dos esferoplastos. Retire os tubos do termociclador, e adicionar 0,5 mL de uma polimerase de alta fidelidade de cada. Retorno tubos para o termociclador e executado utilizando o programa pormenorizado na Tabela 3.
      3. Reúnem-se os produtos de PCR conforme apropriado. Armazenar a -20 ° C ou prosseguir para a etapa 4.4.

Tabela 1. PNK reacção de fosforilação (Passo 4.3.2.1).

Reagente	Volume (uL)
H2O destilada	15
10x T4 ADN tampão de reacção de ligase	2
iniciador 100 uM	2
Polinucleotídeo cinase de T4 (PNK)	1

ent "fo: manter-together.within-page =" 1 "fo: manter-com-next.within-page =" always "> Tabela 2. reação de PCR Whole-plasmídeo (Passo 4.3.3.1).

Reagente	Volume (uL)
H2O destilada	28,5
5x de alta fidelidade tampão polimerase	10
iniciador de sentido directo 10 uM fosforilado	2.5
iniciador inverso 10 uM fosforilado	2.5
40 mM mistura de dNTP (10 mM de cada dNTP)	1
esferoplastos ligado-Bead	5

Tabela 3. programa de PCR (passo 4.3.3.2).

Passo	Temperatura (° C)	Time (min: seg)	Número de ciclos
desnaturar inicial	98	00:30	1
Desnaturar	98	00:10	35
Recozimento	69	00:30
Extensão	72	00:30 por kb
extensão final	72	06:00	1
Aguarde	12	Infinito	1

4. Re-circularizar os produtos de PCR a todo o plasmídeo, e usar o produto ligado para transformar MC4100 de E. células de E. coli.
   1. Purifica-se o produto de PCR, executando a reacção de PCR num gel de agarose a ^23, a coloração do ADN no gel ^23, e utilizando umkit de limpeza de gel para purificar o plasmídeo linearizado, seguindo as instruções fornecidas pelo fabricante. Medir a concentração, utilizando um espectrofotómetro a 260 nm. Armazenar o fragmento purificado a -20 ° C até ser necessário, ou continuar para o passo 4.4.2.
   2. Re-circularizar plasmídeo a partir do produto de PCR.
      1. Para evitar a ligação intermolecular do produto de PCR, levar a cabo a reacção de ligação com uma baixa concentração ²⁷ de 1 ng / ul do produto de PCR. Calcular o volume necessário para a preparação de uma reacção de ligação de 800 ul a esta concentração.
      2. Preparar a reacção de ligação em gelo. Num tubo, adicionar o volume calculado no passo 4.4.2.1 do produto de PCR, 80 pi de tampão ligase 10 x de DNA, e _H2O destilada até 800 ul. Adicionar 4 ul de DNA-ligase de T4, e colocar imediatamente os tubos a 16 ° C num banho de água ou termociclador. Incubar a 16 ° CO / N durante 14 a 18 h. Armazenar as reacções de ligação completaram a -20 ° Caté que seja necessário, ou prosseguir para a etapa 4.4.3.
   3. Coloque a reacção de ligação num bloco de calor a 65 ° C durante 15 minutos para aquecer-inactivar a ligase de ADN. Em seguida, use um kit de membrana de microdiálise ou limpeza DNA de-sal o DNA ligado. Armazenar a 20 ° C ou prosseguir para a etapa 4.4.4.
   4. Use todo o, produto de ligação com sal-de inactivado pelo calor para transformar MC4100 de E. ²³ células de E. coli. Preparar stocks de glicerol, conforme descrito no Passo 1.3, das células que contêm a sub-biblioteca panned resultante, e alíquotas armazenar a -80 ° C.
5. Repita Passo 4 na sua totalidade usando uma alíquota do Passo 4.4.4 para fazer um segundo deslizamento sobre a sub-biblioteca.
   NOTA: A segunda panning ajuda a enriquecer, para componentes de biblioteca que se ligam bem ao antígeno alvo ^19.

5. Execute uma tela secundária Usando um Immunosorbent Método de ensaio ligado a enzima para identificar clones promissores para posterior caracterização (Figura 5)

Rastreio baseado em ELISA Figura 5. secundário (Passo 5). Variantes (A) a partir da sub-biblioteca da biblioteca enriquecida durante pan são inoculadas em poços individuais de uma placa de cultura para o crescimento e expressão. (B) Uma placa de ELISA revestida com o antigénio alvo. (C) As variantes de bibliotecas são rastreadas utilizando o ecrã secundário à base de ELISA descrito no protocolo. Após a análise de dados obtidos a partir do ecrã secundário, variantes de interesse são seleccionados e caracterizado pelo facto adicional. Correspondentes etapas do protocolo são anotados. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

1. Descongelar um tubo da sub-biblioteca criticado (a partir do Passo 4.4.4) e placa em placas de agar LB. Placa várias diluiçõesem concentrações suficientemente baixas para garantir colónias individuais (por exemplo, 10 ² - 10 ⁶ vezes de diluições). Incubar as placas durante 15 a 18 horas a 37 ° C. Armazenar as placas a 4 ° C ou prosseguir para a Etapa 5.2.
2. Cultura e induzem colônias da sub-biblioteca criticado. Executar todas as etapas sob condições estéreis. Usar uma pipeta de canais múltiplos para as etapas que envolvem as placas de 96 poços.
   1. Adicionar 200 mL de LB com 20 ug / ml de Cm para cada poço de uma placa de cultura de 96 poços de fundo redondo.
   2. Escolher uma colónia individual da placa de agar com uma ponta de pipeta, coloque a ponta no primeiro poço da placa de 96 poços, e agitar suavemente para inocular. Utilize uma nova ponta para cada poço. Inocular uma colónia em cada poço. Como controlo, incluem, pelo menos, um controlo de esterilidade bem sem colónias inoculadas.
   3. Repita os passos 5.2.1 e 5.2.2 para inocular várias placas de 96 poços.
   4. Colocar as placas de 96 poços num agitador de microplacas a 310 rpm. Incubar a 376; C durante 20 a 24 horas para expressar o scFv.
3. Para cada placa de cultura preparada no Passo 5.2, um revestimento de 96 cavidades de placas de ELISA com o antigénio alvo.
   1. Diluir antigénio alvo purificada até uma concentração apropriada (por exemplo, 1 ng / ml a 4 mg / ml) em 1 × PBS para fazer a solução de revestimento. Adicione 5 ml de solução de revestimento para cada placa de 96 poços.
      NOTA: A concentração apropriada depende do antigénio específico a ser usado e podem necessitar de ser ajustadas.
   2. Adicionar 50 ul da solução de revestimento, para cada poço de uma placa de ELISA de poliestireno de 96 poços clara de alta ligação. Bater levemente a placa sobre a superfície da bancada para garantir que toda a superfície de cada poço é revestido. Repita o procedimento para cada placa. Incubar as placas a 4 ° CO / N.
4. Replicar as colónias das placas de cultura de 96 cavidades em placas de agar.
   1. Coloque um replicador de poliestireno estéril para os poços de uma placa de cultura para recolher uma pequena quantidade de Liquidentidade. Cuidadosamente elevar o replicador e transferir para um LB placa de agar 15 cm de tal modo que todas as dicas estão tocando a placa. Uma vez que o líquido tenha transferido, levante o replicador para cima. Repita para cada placa de cultura.
   2. Rotular a placa de agar com a orientação correcta de modo que os resultados a partir do ecrã secundário na placa de 96 poços pode ser combinado com a colónia replicado correcta sobre a placa, se caracterização adicional é desejado. Crescer a 37 ° C durante 15 a 18 horas, e, em seguida, armazenar a 4 ° C até ser necessário.
5. Executar a tela secundária ELISA.
   1. Preparar a solução de bloqueio, fazendo 2% (w / v) de leite em pó em PBS 1 ×. Esvaziar a solução de revestimento a partir das placas de ELISA. Adicionar 100 ul da solução de bloqueio a cada poço. Incubar à temperatura ambiente durante pelo menos 2 h, ou bloco de O / N a 4 ° C.
   2. Preparar o tampão de lavagem através da adição de polissorbato 20 a uma concentração final de 0,05% em 1 x PBS. Adicione 250 ml por placa de ELISA.
   3. Adicionar 20 ul de umaconcentrado de detergente de lise celular a cada poço da placa de cultura de fundo redondo, e incuba-se a placa de cultura num agitador de microplacas à temperatura ambiente durante 15 a 20 min. Comece a lise, ao mesmo tempo que o bloqueamento das placas de ELISA é completa, de modo que a lise e a lavagem Passo 5.5.4 podem ser executados simultaneamente.
   4. Esvaziar a solução de bloqueamento das placas de ELISA. Lavam-se as placas de ELISA bloqueadas quatro vezes com 200 ul de tampão de lavagem por poço por lavagem. Esvaziar o tampão de lavagem dos poços.
   5. Transferir 50 uL de cada poço da placa de lise de células para o correspondente poço da placa de ELISA, utilizando-se uma nova ponta de cada poço. Incubar a placa para ELISA a TA, durante 1 a 2 horas.
   6. Prepare a solução de anticorpos para detectar scFvs ligados.
      1. Utilize uma peroxidase de rábano (HRP) -conjugated anticorpo primário que se liga ao marcador de epítopo FLAG fundido com os scFvs da biblioteca.
      2. Dilui-se o anticorpo para a diluição apropriada para usar num ensaio ELISA (ver fornecedor & #39; s recomendações) em 2% (w / v) de leite seco em 0,05% de polissorbato 20 em 1 × PBS. Prepare 5 ml para cada placa.
   7. Lavam-se as placas de ELISA quatro vezes com tampão de lavagem, tal como descrito no Passo 5.5.4.
   8. Adicionar 50 ul de solução de anticorpo a cada poço da placa de ELISA. Incubar durante 1 a 2 horas à temperatura ambiente.
   9. Prepara-se o substrato de HRP por dissolução de comprimidos de dicloridrato de o-fenilenodiamina (OPD) em _H2O destilada acordo com o protocolo do fabricante, evitando a luz. Prepare 20 ml por placa ELISA.
   10. Preparar 3 H ₂ SO ₄ por diluição de H ₂ SO ₄ concentrado com _H2O destilada como necessário. Prepare 5 ml por placa ELISA.
       Cuidado: H ₂ SO ₄ é um ácido forte. Certifique-se de usar equipamento de protecção individual adequado.
   11. Lavam-se as placas de ELISA quatro vezes com tampão de lavagem, tal como descrito no passo 5.5.4.
   12. Incubar as placas de ELISA com o substra HRPte.
       1. Adicionar 200 ul de substrato de HRP a cada poço. Para minimizar a exposição à luz, adicionar o substrato a uma placa de ELISA de cada vez, e embrulhar com uma folha de alumínio, antes de prosseguir para o próximo placa. Incubar as placas durante 30 a 60 min à temperatura ambiente no escuro.
       2. Após os primeiros 30 minutos, as placas para verificar escurecimento do substrato, e incuba-se mais longo, se necessário para visualizar o desenvolvimento de cor.
   13. Adicionar 50 ul de 3 H ₂ SO ₄ a cada poço para parar a reacção. Usando uma dica diferente para cada bem, misture a solução nas cavidades cuidado pipetando para cima e para baixo sem formação de espuma. Por razões de consistência e para evitar a saturação, adicionar H ₂ SO ₄ e rapidamente com cuidado para todas as placas de ELISA antes de se misturar a solução para cada placa.
   14. Medir a absorvância da solução nos poços de cada placa a 492 nm utilizando um leitor de placas.
   15. Analisar os dados de absorvância para identificar scFv variantes que exhib-lo prometendo sinais de ligação e caracterizar estes scFvs promissores. Escolha scFvs que apresentam sinais de absorvância maior do que o sinal de fundo e mais elevadas do que a média do sinal em cada placa.
       Observação: O nível de absorvância será dependente das propriedades do antigénio e o anticorpo anti-FLAG utilizado, juntamente com a força das variantes de scFv que foram isolados no rastreio.

Resultados

O mecanismo de controlo da qualidade da proteína intracelular dobragem da via Tat em E. coli limita o transporte através da membrana celular interna de proteínas que são bem dobradas no ambiente citoplasmático redutor. Por sobre-expressando uma fusão de um scFv com a sequência de sinal ssTorA (a sequência de sinal da proteína Tora, que é transportado naturalmente Tat pela via ^20), a translocação está parado, o que resulta na exibição de scFv sobre a membrana interna ^19. Após interrupção enzimática da membrana externa, os anticorpos exibidos são disponibilizados para o rastreio para a actividade de ligação ao antigénio. A capacidade para tirar vantagem da via de Tat para exibição de scFv foi demonstrada por Karlsson et al. ¹⁹ (Figura 6). Os anticorpos scFv scFv13 scFv13.R4 e foram fundidas com quer a sequência nativa ou uma ssTorA ssTorA modificado que carece do par de resíduos arginina-arginina reconhecido pelaa via de Tat. scFv13.R4 foi manipulado por Martineau et al., a partir de scFv13 através de quatro ciclos de evolução dirigida e é conhecido para dobrar bem no citoplasma ^9. Este scFv foi apresentado na membrana interna, mas apenas quando expresso como uma fusão com a sequência sinal nativa ssTorA (Figura 6). Contrariamente, scFv13 não é bem dobrada citoplasmaticamente ^9, de modo que não é apresentada também na membrana interna, independentemente de a sequência de sinal a qual se encontra fundido. Além disso, se os scFvs foram expressos em células que não tinham a proteína TATC, um componente vital da máquina Tat ^20,28, display não foi observado, mostrando a importante ligação entre a tela do interior da membrana e da via Tat. Estes resultados demonstram que apenas as proteínas que contêm o péptido de sinal de Tat e que são correctamente dobrado no citoplasma são exibidas na membrana interna, permitindo o transporte através da via Tat para funcionar como uma tela para fol intracelularding.

Figura 6. Detecção de scFv exibidos sobre a membrana interna. A citometria de fluxo foi realizada a análise para detectar a exposição de mal dobrado scFv13 e bem dobrada scFv13.R4 na membrana interna. Os scFv foram fundidos com ssTorA nativa ou ssTorA (KK), em que o par Arg-Arg na sequência ssTorA foi modificado para Lis-Lis. As etiquetas de epitopo FLAG C-terminal as scFv foram detectados com um isotiocianato de fluoresceína (FITC) -conjugated anticorpo anti-FLAG. As células sem a proteína TATC (ΔtatC) e ssTorA-scFv13 sem o marcador FLAG foram testados como controlos. H indica o valor de fluorescência média. Reproduzido de referência ¹⁹ com permissão. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

19. Para demonstrar isto, uma biblioteca de PCR propensa a erro com base na scFv13, que tem um baixo grau de afinidade de ligação para β-galactosidase, foi deslocada contra o antigénio alvo β-galactosidase usando o visor e panning método descrito no protocolo. scFv 1-4 foi isolado depois de um ciclo de mutagénese e deslizamento, e exibiu maior afinidade de ligação para a p-galactosidase do que scFv13 (Figura 7A) e um nível mais elevado de solubilidade citoplasmático (Figura 7B).

Uma nova biblioteca, com base em 4/1 de scFv, foi feito usando propensa a erros de PCR, e panning desta biblioteca de segunda geração contraβ-galactosidase foi feito utilizando uma modificação do protocolo descrito. O panning contra β-galactosidase para a segunda fase da evolução foi feito na presença de purificada, solúvel scFv 14 como um concorrente para melhorar a probabilidade de isolar clones com maior afinidade do que scFv 1-4. Após esta segunda rodada de mutagênese e panning, scFv 2-1 e 2-3 scFv foram isolados usando a triagem secundária baseada em ELISA. Estes scFvs não só exibiu maior afinidade de ligação para β-galactosidase que scFv13, mas também exibiu uma melhor ligação do que o clone primeira rodada scFv 1-4. scFv 2-1 exibiram β-galactosidase de ligação comparável à do scFv13.R4 (Figura 7A). scFv 2-3 também mostra um aumento adicional na solubilidade em comparação com o scFv citoplasmática 14, com destaque para a engenharia simultânea de solubilidade e de ligação ao antigénio. Uma vez que a afinidade e a expressão solúvel dos scFvs são rastreados para simultaneamente, é possível que um scFv seleccionados foi modsolubilidade rar, mas de alta versa ligação ou vice. Por exemplo, o scFv tem 2-1 expressão solúvel scFv menor do que 3/2, mas apresenta maior afinidade de ligação para p-galactosidase.

Figura 7. alvo de ligação e expressão citoplasmática de scFv variantes isolado usando o visor interior da membrana. ScFv (A) foram expressas no citoplasma da E. coli (por exemplo., sem a sequência de sinal ssTorA) com uma hexa-histidina (6 × His) tag e purificado usando ácido spin-colunas de níquel-nitrilotriacético. A ligação dos scFvs purificados a p-galactosidase foi medida com um ensaio ELISA. scFv purificadas foram carregadas em placas de ELISA revestidas com β-galactosidase, e os scFvs ligados foram detectados com um anticorpo anti-His 6 ×. Os dados são uma média de seis replicados, e a barra de erro mostra o erro padrão da média.(B) As fracções solúveis e insolúveis dos lisados celulares a partir de células que expressam scFvs citoplasmaticamente foram analisados por Western blot sondada com um anticorpo anti-His 6 ×. A concentração total de proteína foi utilizada para normalizar o carregamento das amostras. Reproduzido (A) e adaptado (B) a partir da referência ¹⁹ com permissão. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Discussão

Engenharia anticorpos para a actividade citoplasmática é uma tarefa difícil, devido ao ambiente redutor do citoplasma, o que impede a formação de ligações dissulfureto de estabilização ^6,7. Isto faz com que a maioria dos anticorpos a ser inactiva no citoplasma, a menos que são concebidos para a estabilidade e a solubilidade no citoplasma, para além de ser manipulado para a afinidade de ligação. Os métodos existentes de exibição de fagos, exibição de superfície bacteriana, e métodos de exposição de superfície de levedura todos utilizam a via secretora ^14-16 para a exibição de anticorpos manipulados, mas estes métodos não têm meios para dobragem engenheiro intracelular. Os anticorpos manipulados utilizando visor interior da membrana citoplasmática melhoraram a estabilidade e solubilidade porque o controlo da via da Tat qualidade dobragem previne a translocação de anticorpos que são mal dobrados e instáveis ​​no citoplasma. Este método simplifica o processo iterativo de engenharia de anticorpos intracelulares para uma afinidadeND solubilidade, como as duas propriedades são concebidos em um passo. Embora este método foi concebido para engenharia de anticorpos com a solubilidade no ambiente intracelular de redução, também poderia ser aplicada para anticorpos de engenharia para funcionar em condições não redutoras, uma vez que as proteínas por engenharia utilizando este método de manter a sua dobragem no ambiente oxidante do periplasma.

Embora esta técnica simplifica o processo de engenharia de anticorpos com elevada afinidade e alta solubilidade citoplasmática, várias limitações são importantes a considerar quando se usa este protocolo. Quando se analisam os sinais de ELISA ecrã secundário para identificar variantes de scFv promissor, o limiar para discernir entre as variantes potencialmente interessantes e aqueles que não podem apresentar adequada de ligação do antigénio não é provável que seja aparente até depois de vários clones foram ainda caracterizados. É importante olhar para a ligação melhorada ao longo do anticorpo parental; Contudo,um sinal anormalmente elevada pode ser um indicativo de avidez de ²⁹ ou efeitos de agregação ^30, um desafio que não é exclusivo para a abordagem de triagem visor interno da membrana. Uma limitação chave para recordar quando se usa este protocolo é a incapacidade de recuperar esferoplastos depois de percorrer, como eles são não viáveis ​​(dados não publicados). Isto necessita os passos de amplificação de ADN e transformação para recuperar os plasmídeos que codificam anticorpos.

Vários passos críticos do protocolo permitir a engenharia simultânea de dobragem e de ligação de anticorpos. Para o rastreio para ser bem sucedido, a biblioteca de scFv serem projectados devem ser expressos como uma fusão com o péptido sinal ssTorA. Sem esta sequência, os anticorpos não irão ser dirigidos para a via de Tat e, portanto, não vai ser translocada para o periplasma ^19. Além disso, é imperativo que uma etiqueta de epitopo no terminal C está fundido com os anticorpos para permitir a detecção dos anticorpos exibidos no escaninhoensaios de ding. Claramente, a E. estirpe de E. coli utilizada para expressar os scFvs também deve ter a maquinaria necessária via de Tat, mas isto é verdade para a E. utilizada estirpes de E. coli.

Modificações a este protocolo é possível melhorar o seu potencial para isolar anticorpos com as características desejadas. Um passo panning subtrativo pode ser concluída antes do panning contra o antigénio alvo para esgotar a biblioteca scFv de constituintes não-desejada. Os esferoplastos de bibliotecas podem ser incubados com esferas magnéticas revestidas com BCCP sozinho ou revestido com uma proteína não desejada, e os esferoplastos que se ligam a essas esferas pode ser descartada antes de rastreio dos restantes esferoplastos não ligadas para a ligação ao alvo desejada. Como mencionado nos resultados representativos, um método para melhorar a afinidade de um scFv isolado é incluir um competidor solúvel na reacção de deslizamento para competir com os scFv exibidos sobre os esferoplastos. Porque a amostra solúveletitor é uma proteína purificada, sem ADN é amplificado a partir dele, de modo que apenas sequências dos scFv exibidos sobre os esferoplastos são recuperados na reacção de PCR. Além disso, este método pode ser alargado a outros tipos de engenharia de anticorpos ou a proteínas de ligação que não anticorpos.

E. visor interior da membrana coli é uma plataforma poderosa para anticorpos de engenharia com afinidade elevada e elevados níveis de solubilidade intracelular. Este método é particularmente adequado para a engenharia eficiente de anticorpos concebidos para funcionar no ambiente intracelular. Estes anticorpos intracelulares já estão a ser explorados como potenciais terapêuticos em vários campos, incluindo doenças neurodegenerativas, câncer e infecções virais ^31. Esta técnica permitirá uma utilização mais generalizada de anticorpos intracelulares como ferramentas de pesquisa e medicina nestes domínios e qualquer outro campo onde estudar é desejado um alvo proteínas in situ.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo

Nome	Empresa	Número de catálogo	Comentários
Biblioteca scFv	Varia		Uma biblioteca scFv adequada deve ser obtida de uma fonte comercial ou acadêmica.
Células MC4100 E. coli	Centro de Estoque Genético Coli	6152	As células precisam ser quimicamente competentes ou eletrocompetentes, dependendo do método de transformação selecionado.
Glicerol	Fisher Scientific	BP229-4
Difco meio de cultura desidratado LB Caldo, Miller (Luria-Bertani)	BD	244610
Cloranfenicol (Cm)	Fisher Scientific	BP904-100
Cloreto de sódio (NaCl)	Fisher Scientific	BP358-1
Cloreto de potássio (KCl)	Fisher Scientific	BP366-500
Fosfato de sódio, dibásico (Na2HPO4)	Fisher Scientific	BP332-500
Fosfato de potássio, monobásico (KH2PO4)	Fisher Scientific	BP362-500
Albumina de soro bovino (BSA)	Fisher Scientific	BP9706-100
Sacarose	Fisher Scientific	BP220-1
Base Tris	Fisher Scientific	BP1521
Ácido etilenodiaminotetracético (EDTA), 0,5 M	Fisher Scientific	BP2482-500
Cloreto de magnésio (MgCl2)	Fisher Scientific	BP214-500
Lisozima	Sigma Aldrich	L3790-10X1ML
Misturador de vórtice	VWR	97043-564
Bicine	Fisher Scientific	BP2646100
D-Biotina	Fisher Scientific	BP232-1
Isopropil β-D-1-tiogalactopiranosídeo	Fisher Scientific	BP1755-1
BugBuster Master Mix (detergente de lise celular)	EMD Millipore	71456
Vivaspin 2 MWCO, 3,000  daltons	GE Healthcare Sciences	28932240
Antígeno alvo	varia	N/A	O antígeno-alvo purificado pode ser comprado ou produzido/purificado.
Dynabeads MyOne Streptavidin T1	Invitrogen	65601
Ímã Dynamag-2	Invitrogen	12321D
Rotador de tubo	VWR	13916-822
Primers de PCR	IDT	N/A	As sequências de primers são as descritas no protocolo.
10x tampão de reação de DNA ligase T4	New England BioLabs	B0202S
T4 Polinucelotide quinase (PNK)	New England BioLabs	M0201S	Certifique-se de que o tampão de ligase T4 usado na reação de fosforilação do primer contém 1 mM de ATP.
5x pacote tampão Phusion HF	New England BioLabs	B0518S
Mistura de solução de desoxinucleotídeo (dNTP), 10 mM cada dNTP	New England BioLabs	N0447L
Phusion DNA polimerase	New England BioLabs	M0530S	Outras polimerases de alta fidelidade podem ser usadas como alternativa, mas a temperatura de recozimento em Tabela 3 deve ser ajustada.
Termociclador C1000 Touch com módulo duplo de reação rápida 48/48	Bio-Rad	185-1148
Agarose	Promega	V3121
SYBR Safe DNA gel stain	Invitrogen	S33102
Wizard SV gel e sistema de limpeza de PCR	Promega	A9281
T4 DNA ligase	New England BioLabs	M0202S
Microdiálise filtro de membrana	EMD Millipore	VSWP04700
Agar	BD	214030
Placas de cultura de células de fundo redondo de poliestireno de 96 poços	VWR	10062-902
Tampas de placas de ensaio de poliestireno geral Costar Corning		3931
Agitador de placas de microtitulação	VWR	12620-926
Costar 96 bem EIA / RIA Easy Wash transparente de fundo plano poliestireno microplaca de alta ligação	Corning	3369
Bel-blotter policarbonato 96-well ferramenta replicante	Bel-Art Products	378760002
Leite em pó desnatado instantâneo	Qualidade Biológica	A614-1000
Tween 20 (polissorbato 20)	Fisher Scientific	BP337-500
Reagente PopCulture (detergente concentrado de lise celular)	EMD Millipore	71092-3
Anticorpo monoclonal ANTI-FLAG M2-Peroxidase(HRP) produzido em camundongo	Sigma Aldrich	A8592
SigmaFast OPD	Sigma Aldrich	P9187-50SET
Ácido sulfúrico (H2SO4), 10  N solução	Fisher Scientific	SA200-1
Reynolds Wrap folha de alumínio	VWR	89079-075
BioTek Epoch microfotômetro de microplacas	Fisher Scientific	11120570