In Situ Deteção e única célula quantificação de nanopartículas de óxido de Metal usando análise de microsonda Nuclear

Resumo

Descrevemos um procedimento para a detecção de elementos químicos presentes em situ em células humanas, bem como a sua quantificação em vitro . O método é adequado para qualquer tipo de célula e é particularmente útil para análises químicas quantitativas em células únicas em vitro exposição a nanopartículas de óxido metálico.

Resumo

Técnicas de microanálise com base nas imagens do elemento químico permitem a localização e quantificação de composição química a nível celular. Eles oferecem novas possibilidades para a caracterização dos sistemas vivos e são particularmente adequados para detectar, localizar e quantificar a presença de nanopartículas de óxido de metal, tanto em amostras biológicas e do ambiente. Na verdade, todas essas técnicas requisitos relevantes em termos de sensibilidade (i) (de 1 até 10-µg.g^-1 de massa seca), micrômetro (ii) escala de resolução espacial e a detecção de vários elemento de (iii). Tendo em conta estas características, imagens de elemento químico microbeam podem poderosamente complementar técnicas de imagem de rotina tais como óptica e microscopia de fluorescência. Este protocolo descreve como realizar uma análise microsonda nuclear em células cultivadas (U2OS) expostas a nanopartículas de dióxido de titânio. As células devem crescer e ser expostas diretamente em um suporte de amostra especialmente projetado usado no microscópio óptico e na fase de análise microsonda nuclear. Mergulho-congelamento criogênica fixação das amostras preserva a organização celular e a distribuição do elemento químico. Análise de simultânea microsonda nuclear (microscopia de transmissão íon, espectrometria de Retrodispersão de Rutherford e partícula induzida por emissão de raios x) realizada na amostra fornece informações sobre a densidade celular, a distribuição local de os elementos químicos, bem como o conteúdo celular de nanopartículas. Há uma necessidade crescente de tais ferramentas analíticas dentro biologia, especialmente no contexto emergente de Nanotoxicology e nanomedicina para o qual deve ser aprofundado nossa compreensão das interacções entre as nanopartículas e amostras biológicas. Em particular, como análise de microsonda nuclear não requer nanopartículas de ser rotulados, abundâncias de nanopartículas são quantificáveis para o nível de células individuais em uma população celular, independentemente do seu estado de superfície.

Introdução

Homeostase celular é determinado pelo controle de absorção, assimilação e localização intracelular de diferentes elementos de traço (íons, metais, compostos inorgânicos exógenos). Estes componentes são frequentemente sob a forma de vestígios, mas, no entanto, podem ter um impacto considerável na fisiologia do sistema. Assim, o estudo da bioquímica celular em situações normais e patológicos/estressado é um passo-chave para uma compreensão geral dos mecanismos metabólicos celulares. Portanto, o desenvolvimento de técnicas analíticas e de imagem, permitindo a investigação de abundâncias químicas intracelulares, organização estrutural e suas funções metabólicas relacionadas torna-se necessário. Muito poucos métodos são capazes de fornecer uma em situ parte quantitativa de informações relativas à natureza química geral de uma determinada amostra. Além de métodos de análise de amostras a granel, em situ análises consideram amostras biológicas em sua integralidade, sem perda de informações em massa e estruturais, preservando seus constituintes químicos (oligo-elementos e íons) e proteínas. Além disso, como as nanociências continuam a desenvolver, imagem melhorada e métodos analíticos para monitoramento ambiental à escala celular será necessários observar e quantificar as interações e comportamentos de nano-objeto. ¹

Nanopartículas (NPs) foram definidas como objetos exibindo ao menos uma dimensão facial na faixa 1 e 100 nm. ² devido a suas propriedades físico-químicas particulares, NPs são amplamente utilizado na indústria. O NPs é empregado em aplicações de bio e em nanomedicina. ^{3 , 4} apesar de numerosas características físico-químicas do NPs, eles podem gerar alguns riscos de efeitos adversos na saúde humana e o ambiente. Estes riscos podem ser induzidos por exposição prolongada e repetitiva em vários níveis de concentração e isto ainda não foi claramente estabelecido. ^{5 , 6 , 7 , 8} em particular, o destino do NPs dentro de células e a resposta celular associada são, até à data, não totalmente descrito. Isto é em parte devido à escassez de métodos que permitir a detecção e quantificação de NPs interiorizado em uma única célula. ⁹

As ferramentas analíticas clássicas usadas para estimar a dose celular de nanopartículas são microscopies, espectrometria de massa (MS), acoplado indutivamente plasma MS (ICP-MS)^10,11 e cromatografia líquida de que MS (LC-MS), mas eles só fornecem informações úteis à escala macroscópica. Nenhum deles pode fornecer uma avaliação exacta do NPs subcellular conteúdo nem a distribuição de NPs, sem o uso de métodos de fracionamento. Uma avaliação sistemática da dose-resposta, portanto, é impossível com esses métodos, ao contrário de métodos baseados em espectroscopia atômica como nuclear microsonda análise^12,13, microscopia de fluorescência de raios-x de síncrotron¹⁴ e espectrometria de massa de iões secundários (SIMS). ^{15 , 16} estes métodos são particularmente interessantes como se complementam as observações feitas usando microscopia de fluorescência, especialmente quando o NPs não podem ser rotulado com moléculas fluorescentes e, portanto, é estudado em seu estado nativo. Em certa medida, mesmo quando NPs é enxertado com fluorophores, (i) a quantificação continua a ser difícil porque o nível de marcação por NP é desconhecido e (ii) a modificação química da superfície NP pode modificar sua distribuição celular.

Neste artigo, nós centrar-se em um método com base em uma combinação de técnicas nucleares microsonda visando a morfologia e a composição elementar da espécimes biológicos em maior, menor, de imagem e rastrear as concentrações.

Microsonda nuclear análise revela-se particularmente adequado para a medição de oligo-elementos químicos em tecidos biológicos. A resolução lateral de feixe (0,3 a 1 µm) e a sensibilidade na deteção de elemento químico (de 1 a 10 µg.g^-1 massa seco) são adequados para estudos a nível celular. Microsonda nuclear técnicas baseiam-se na deteção de partículas (fótons, elétrons, íons) emitida depois que o feixe de iões (normalmente rodando a energias de MeV) interage com átomos presentes na amostra. Interações que ocorrem nas células são principalmente: 1) excitação/ionização de átomos, seguido de uma emissão de fótons depois de átomos retornam ao seu estado fundamental; e 2) difusão de partículas entradas levando a mudança em sua energia e direção. A medição de identificação de allowsthe de energia de partículas emitido dos átomos envolvidos na interação. Para executar o mapeamento de elementos, o íon microbeam é repetidamente verificada sobre a superfície da amostra, muitas vezes por uma área de cerca de 100 por 100 µm² contendo várias células. São detectadas partículas emitidas e sua energia é registrada para cada posição do feixe. Classificação de partículas de acordo com a posição do feixe, assim, identificar a estrutura responsável pela emissão de partículas é o objetivo do tratamento de dados. Aqui, descrevemos precisamente uma abordagem baseada na análise de microsonda nuclear para detectar bem como quantificar exógeno NPs nos celulares e celulares sub escalas, a fim de investigar as consequências das interações NP com vivos e microscopia de fluorescência sistemas. Nós particularmente concentrará sobre as oportunidades oferecidas por esse método em termos de quantificação em situ de dióxido de titânio (TiO₂ NPs) de nanopartículas agregados no nível subcellular.

Protocolo

1. preparação do suporte de amostra

1. Preparação e projeto de titular de amostra
   1. Fabricar um porta-amostras perfurando um quadrado de 5 x 5 mm em um quadro PEEK espesso de 1 mm.
   2. Limpe por lavagem com etanol 70% (v/v) e manter-se em placas estéreis até que esteja pronto para usar.
      Romance Um porta-amostras apropriado para cultura de células e manipulação de célula é necessário. Ele precisa ser projetado para cultivo, observações em vitro com microscopia óptica e análise microsonda nuclear e a imagem latente de célula. Este suporte é feito de um PEEK quadro¹³.
2. Preparação da amostra titular
   1. Prepare a solução de Formvar dissolvendo-se 1 mg de pó de Formvar em 100 mL de clorofórmio.
   2. Estica a folha de policarbonato em uma armação metálica para que ele não apresenta nenhuma dobra.
   3. Use uma ponta estéril para espalhar a solução de Formvar em torno do furo do suporte de amostra.
   4. Baixe delicadamente o porta-amostras com cola sobre a folha de policarbonato esticada (um quadrado de 5 x 5 mm).
   5. Repita a sequência anterior para preparar um porta-amostras para cada replicar.
      Romance O filme de policarbonato (PC) é biocompatível, suficientemente espessa e resistente para os diferentes protocolos e restrições analíticas.
      Cuidado- clorofórmio é tóxico. Evitar a inalação, ingestão ou contato com a pele. Utilize sempre uma funcionamento químico exaustora e filtros adequados.
3. Esterilização de titular de amostra
   1. Coloque o suporte de amostra montado em um balão de Erlenmeyer com 50 mL de etanol 70% (v/v), sob agitação a 180 rpm e + 37 ° C durante a noite, utilizando um agitador/incubadora.
   2. Enxágue o titular várias vezes em água destilada estéril.
   3. Ar secá-las em condições estéreis e expô-los à luz ultravioleta (Lâmpada germicida de biossegurança bancada, classe II) por 30 min de cada lado.
   4. Mantenha as amostras em placas estéreis de 12-poços (titular de uma amostra por alvéolo) até que esteja pronto para usar.
      Nota: Múltiplos suportes de amostra podem ser armazenados em temperatura ambiente estéril e secas chapas 12-bem selado com parafilme durante vários dias.

2. o crescimento das células no porta-amostras adequadas.

Atenção: Protocolo deve ser realizado em um banco do fluxo laminar de segurança biológica (classe II) para excluir os microrganismos contaminantes. Lidar com antibióticos (por exemplo, penicilina, estreptomicina) com luvas. Respeitar as práticas recomendadas ao manusear materiais biológicos (linhas celulares, geneticamente modificadas derivada de células humanas).

Crítica: linhas celulares utilizadas devem ser verificadas para garantir que eles não estão infectados com Mycoplasma.

1. Transfect U2OS linha de celular com plasmídeo Matrix-roGFP ^17,18,19 , usando um método de Transfeccao de acordo com o protocolo estabelecido pelo fabricante do rolamento.
2. Para confirmar a transfeccao com o plasmídeo-carregando o biosensor e para evitar a perda do plasmídeo, selecionar e manter as células transfectadas em meio de cultura apropriado.
3. Visualize células transfectadas por microscopia de fluorescência para garantir que a transfecção ocorreu e confirmar a expressão da fluorescência e a exibição de uma rede mitocondrial reticular e tubular¹⁹.
   Pausa ponto: As células podem ser congeladas em nitrogênio líquido durante vários anos.
4. Use a população de células transfectadas por cultivo de células em um meio adequado para obter populações de células sub confluente. Desenvolvem-se células a 37 ° C, 5% (v/v) de CO₂ em um ambiente saturado de água.
5. Semente de células em uma concentração, tais como eles estão na confluência de 80% no dia da fixação. Normalmente, uma concentração de 500 células por µ l poderia ser usada. Colheita de células usando a 400 µ l de EDTA-tripsina 0,25% (v/v) e manter por 3 min a 37 ° C. Pare a ação da tripsina com 1 mL de meio de cultura. Pelotas as células por centrifugação por 5 min em 230 x g e + 4 ° C, em seguida remover o sobrenadante e adicionar o volume desejado de meio de cultura fresco.
   Nota. O protocolo é aplicável para todos os tipos de celulares e o número de células semeado é dependente do tamanho da célula e na célula, tempo de duplicação.
   Atenção: Evite submeter a tripsina, antibióticos e soro a ciclos repetidos de congelamento-descongelamento. Mantê-las estéreis. Dividir a solução em alíquotas e congelá-los a −20 ° C. Armazene as alíquotas até a data de validade. Lave cuidadosamente o centrifugado a fim de remover completamente a tripsina. Vestígios de tripsina residual irão retardar e diminuir a eficiência do chapeamento.
6. Contar as células e realizar uma diluição com meio de cultura completo fresco mantido a 37 ° C, a fim de obter uma suspensão de células com 500 células por µ l.
   Nota: A concentração da suspensão celular deve ser adaptada em função do tipo de célula, a fim de uma gota de 40 µ l da placa.
7. Uma gota de 40 µ l no centro da folha do policarbonato da placa. Coloque cuidadosamente a amostra para 2 h a 37 ° C, 5% (v/v) de CO₂ em um ambiente saturado de água.
   Crítica: Uma vez que a amostra é colocada na incubadora, limite, tanto quanto possível qualquer movimento mecânico para favorecer a fixação rápida da célula. De acordo com o tipo de célula, pode ser necessário incubar mais de 2h para tecendo uma eficiência otimizada de células. Verifique que a atmosfera da incubadora está bem saturado para impedir a evaporação de gotas.
8. Verifique se as células estão bem ligadas na película de policarbonato, usando um microscópio óptico. Delicadamente, adicione 2 mL de meio fresco completo e manter por 24h.

3. nanopartículas preparação e exposição

Nota: Fluorescente tintura-modificado TiO₂ NPs foram projetados, sintetizado e quimicamente modificado com isotiocianato de tetrametil rodamina (TRITC). ^{20 , 21} esta modificação da superfície permite a deteção de nanopartículas, rastreamento e localização in situ e em cellulo nas células vivas e fixas ou em organismos multicelulares. ^{12 , 13 , 18}

Atenção: Nanomateriais e nanopartículas devem ser manipuladas com cuidado. Evitar a inalação, ingestão ou contato com a pele. Para evitar a disseminação no ar, as nanopartículas são mantidas em solução (água ultrapura).

1. Prepare uma suspensão de 1 mg.mL^{− 1} de^TiO₂ NPs em água ultrapura. Dispersar o TiO₂ NPs usando pulsos intensos sonication 1-min em RT (750 W, 20 kHz, amplitude: 30%) usando um gerador de ultra-som e uma dedicado microsonda cónica.
2. Dilua o TiO₂ NPs na concentração desejada em meio de cultura a fim de obter uma suspensão de exposição de 4 µg.cm^{− 2} (concentração final). Substitua o volume apropriado de médio contendo NPs em células médio e misture delicadamente para distribuição homogênea do TiO₂ NPs. Prepare controle células da mesma forma, sem a adição de TiO₂ NPs.
3. Incube as populações de células por 24 h a 37 ° C, 5% (v/v) de CO₂ e uma atmosfera saturada de água.

4. microscopia de fixação e fluorescência paraformaldehyde.

1. Prepare uma solução fresca de solução de paraformaldeído (PFA, 4% w/v) armazenados em buffer na salina de tampão fosfato (PBS, pH 7,4).
   1. Dissolva 4 g de pó PFA em 100 mL de PBS. Aquece a solução a 65 ° C, agitando usando um ímã e um agitador magnético em uma coifa. Aumente o pH, adicionando 1 gota de NaOH M um de cada vez até que a solução limpa. Esfriar a solução à temperatura ambiente e ajustar o pH para 7,4. Use a solução recentemente preparada imediatamente ou manter a + 4 ° C e proteger da luz.
      Nota: Soluções PFA pré-fabricados poderiam ser usadas no entanto uma preparação extemporânea do PFA garante melhor qualidade de fixação e conservação a longo prazo das amostras fixas.
      Atenção: PFA é tóxico; evitar a inalação, ingestão ou contato com a pele. Utilize sempre uma funcionamento químico exaustora e filtros adequados.
2. Uma vez decorrido o tempo de incubação, remover o meio de cultura celular contendo o TiO₂ NPs. lavar as populações de células, uma vez com meio de cultura fresco e uma vez com PBS (2 mL). Remover a PBS, enxágue rapidamente com uma alíquota de PFA fresco e frio (4% w/v, + 4 ° C).
   1. Adicione PFA (mL 2, 4% w/v, + 4 ° C). Incube 15 minutos à temperatura ambiente.
   2. Remover o PFA, enxágue as células com PBS (2 mL, 3 vezes, 5 min) sob agitação.
      Pausa ponto: Estes quimicamente fixa as amostras podem ser usados para o procedimento de "mergulho-congelamento" depois da fluorescência de imagem (vá para o passo 5) ou usado somente para fluorescência de imagem (vá para o passo 4.3).
3. Mancha do núcleo com Hoechst³³³⁴² incubar as células por 10 min em PBS. Hoescht³³³⁴² é usado em uma concentração final de 500 nM. Após a incubação, remover a solução e enxágue com PBS.
   Atenção: Hoechst³³³⁴² é célula permeant e podem ser tóxicos. Evite o contato direto e usar luvas enquanto se preparando e usando Hoechst³³³⁴².
   Crítica: garantir a Hoechst³³³⁴² coloração solução recentemente preparada e mantida em condições estéreis.
4. Processo fixo amostras para in situ e de imagem única célula usando microscopia de fluorescência (Figura 1).

5. "desidratação e fixação de mergulho congelamento"

1. Prepare um prato de transferência de alumínio-refrigeração em nitrogênio líquido. Loja a placa em uma caixa cheia de nitrogênio líquido e manter a superfície da placa acima do líquido em vapor a frio de nitrogênio.
   Nota: A placa de transferência pode ser feita de qualquer chapa metálica (aqui, nós usamos o alumínio) que poderia ser arrefecido à temperatura do nitrogênio líquido, e que pode entrar na câmara de amostra liofilizador.
   Crítica: A caixa deve ser mantida fechada, tanto quanto possível para evitar a deposição de vapor de água sobre a superfície do prato frio. A amostra armazenada na placa durante a preparação não deve ser coberta por nitrogênio líquido.
2. Enxagúe as células uma vez no meio de cultura e depois duas vezes mais, brevemente, em água estéril e ultrapura para obter livrar de qualquer vestígio de sais extracelulares restantes.
   Crítica: Certifique-se que os meios de comunicação são recém preparados e mantidos em condições estéreis. Aqueça todos os meios a 37 ° C antes de serem utilizados. O enxágue deve ser muito breve (alguns segundos) e o excesso de líquido em amostras removido o mais rápido possível.
3. Mergulho-congelar as células a-150 ° C no líquido refrigerado por nitrogênio 2-methylbutane durante 30 s e lugá-los para o alumínio transferir a placa. Armazenar as amostras aqui durante a preparação de todas as outras amostras. Quando as amostras são todos cryofixed, transferi todo-de uma vez, colocando a placa de transferência em um liofilizador.
   Crítica: O processo de cryofixation global não deve durar mais de 20 min para evitar modificações estruturais para aparecer nas amostras temporariamente armazenadas na caixa de transferência.
4. Congelar as amostras usando as seguintes sequências: 1) realizar uma primária dessecação por 12 a 24 h (-99 ° C, 10^-3 mbar) a baixa pressão e baixa temperatura e, em seguida, 2) realizar uma fase secundária dessecação pelo menos 24 h, aumentando a temperatura da placa de + 40 ° C, mantendo a pressão baixa (+ 40 ° C, 10^-3 mbar).
   Atenção: Nitrogênio líquido é extremamente frio e pode causar danos graves queimaduras ou olho em cima do contato. Use recipientes superior banco adaptado para transporte e use equipamento de segurança (luvas criogênicas, proteção de olhos e da face).
   Atenção: 2-Methylbutane é extremamente inflamável. Uma contaminação prejudicial do ar pode ser alcançada rapidamente a evaporação desta substância a + 20 ° C. Evitar a inalação, ingestão ou contato com a pele. Use a respiração e óculos de proteção, luvas de protecção. Sempre use uma coifa química funcione correctamente. Pode ser armazenado em + 4 ° C.
   Crítica: Use um termômetro apropriado (-150 º C) para monitorar as temperaturas de 2-Methylbutane durante a sessão de "Mergulho-congelamento". O 2-methylbutane deve ser mantido fresco em uma fase líquida. Transferência cryofixed amostras à atmosfera ambiente pode causar danos celulares, devido ao aumento de temperatura ou o vapor de água de condensação na superfície da amostra. Por conseguinte, a transferência deve ser feita tão rapidamente quanto razoavelmente possível (30 s)
   Pausa ponto: Após cryofixation, as amostras podem ser armazenadas à temperatura ambiente durante vários dias em condições estéreis e secas (protegidos da poeira e da umidade). Segure as amostras com pinça fina com cuidado e colocá-los em uma placa estéril de 12 selada com parafilme. Dessecante pode ser usado para secar a atmosfera.

6. nuclear microsonda análise

Nota: Nuclear microsonda análise foi realizada na linha de micro-raio de AIFIRA (aplicações Interdisciplinaires des Faisceaux ions en Région Aquitaine) usando as técnicas analíticas de feixe de íon complementares partícula induzida por emissão de raios x (µ- PIXE) e microscopia de íon da transmissão (µ-STIM). A instalação é baseada em um acelerador de partículas do MV 3.5 entrega de feixes de iões luz na faixa de energia MeV. ^{22 , 23}

Pausa ponto: AIFIRA é uma instalação de feixe de iões hospedada pela Universidade de Bordeaux que oferece um acesso a equipas nacionais e internacionais após a avaliação científica do experimento proposto.

1. Monte os suportes de amostra PEEK em um prato mucous usando fita dupla-face.
2. Coloque a placa de suporte de amostra em um plano vertical perpendicular à direção do feixe.
3. Fechar a câmara de análise e de vácuo da câmara de análise.
4. Microscopia de íon transmissão (µ-STIM)
   Nota: STIM é usado para gravar os mapas de densidade das células após a conversão de perda de energia em massa celular, aproveitando o fato de que a perda de energia é proporcional à densidade da amostra (expressada em µg.cm^-2).
   1. Usar um microbeam de hélio (ele é⁺) 2 MeV como uma sonda com um tamanho no plano focal de cerca de 300 nm de diâmetro e na fluência baixa (2000 ions.s^-1). Medida da energia dos íons transmitidos com um detector de silício planar (detector de PIPS, 25 mm², resolução de energia keV 11 @ 5,4 MeV), colocado atrás da amostra no eixo do feixe.
5. Partícula induzida por emissão de raios-x (µ-PIXE) e espectrometria de dispersão de Rutherford (µ-RBS).
   Nota: µ-Pixe e µ-RBS análises fornecem a distribuição espacial e quantificação de elementos químicos com uma resolução de sub-micrônicas.
   1. Use um microbeam de próton (H⁺) 1,5 MeV (pA 50-150), voltada para baixo para um diâmetro de 1 µm e varredura sobre as mesmas células de interesse manchado por STIM de 4 a 8 horas e cerca de 100 x 100 µm².
   2. Colete induzidos fótons de raio-x, emitidos a partir de átomos presentes na amostra (mais pesada que o at) por um de alta resolução Si(Li) detector Solid-State (resolução de energia 145 eV, @Mn-Kα) posicionados a 45 ° do eixo entrada do feixe. Use a energia do fóton detectado para identificar a natureza dos emissores (por exemplo, Z do elemento) e intensidade de raios-x para determinar a concentração do elemento.
   3. Simultaneamente, coletar prótons espalhados por trás-135 ° com um detector de silício (detector parcialmente empobrecido, 25 mm², 11 keV FWHM @ 5,4 MeV) para medir o número total de partículas recebidas e para normalizar as intensidades de raios-x.
      Crítica: Uma coleção de padrões de calibração certificadas para quantificação de concentração atômica é usada para calibrar a resposta do detector de raio-x. Materiais de referência são uma coleção de filmes finos de atômicas depositados na 6,3 µm espessura foils de Mylar. Emitidos raios x energias variam de 0.6 (Li, linha K) até 20,2 keV (Rh, linha K).

7. análise de dados

1. Reconstrua a químicos elementares mapas usando o plugin do IBA-J para ImageJ. ²⁴
   Nota: Software dedicado, sob a forma de um plugin para o ImageJ foi desenvolvido para processar dados de análise crua microsonda nuclear. Dados brutos correspondem a uma lista de eventos resultantes da interação do feixe de partículas com células que são registrados juntamente com a posição do feixe como uma sequência cronológica.
   1. Usar o plugin de IBA-J para classificar eventos de acordo com seu tipo: transmissão de energia do íon (STIM), retroespalhados energia do íon (RBS) ou energia de fóton de raio-x (PIXE). Em seguida, processe separadamente cada tipo de dados.
   2. Calcular o mapa de densidade de área STIM
   3. Calcular a médios espectros de energia de fóton de raio-x e definir para cada elemento químico, de interesse de uma janela de energia, a fim de recuperar a distribuição espacial do elemento.
   4. Definir as regiões de interesse (ROI) (por exemplo, células individuais, estrutura densa, agregados, etc.) e calcular os espectros de raios x correspondente.
2. Analise os espectros RBS correspondentes a fim de calcular o número total de partículas incidentes²⁵.
3. Espectros de raios-x usando o software de Gupix²⁶ a fim de determinar a concentração do elemento para cada ROI de caber.
   Nota: Típico limite de detecção (LOD) para o método é o intervalo de µg.g de 1 a 10^-1 de massa seca, dependendo o número atômico do elementos (LOD está diminuindo com Z).

Resultados

Cultura celular e a imagem latente de fluorescência do TiO fluorescente etiquetada ₂ NPs

Nós projetamos um porta-amostras adaptado para cultura de células, manipulação de células, bem como a análise multimodal. Especificamente, era importante que o titular permitida rotina microscopia óptica como bem como nuclear microsonda análise e geração de imagens. Este suporte d...

Discussão

Nós descrevemos um método de fornecer informações úteis, além do que é possível com outras técnicas de imagem, especialmente a nível subcelular. Além de sua capacidade de geração de imagens, análise de microsonda nuclear também oferece possibilidades de quantificação dos elementos químicos que entram na composição de uma amostra biológica. No presente trabalho, estudamos as populações de células humanas e voltada para a análise de uma região escolhida de interesse com base em uma única célula exposta ao TiO₂ N...

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo

Nome	Empresa	Número de catálogo	Comentários
Cultura de células
U2OS	ATCC, LGC STANDARDS	ATCC HTB-96
Médio MCCOY 5A sem L-Glutamina	Dominique DUTSCHER	L0211-500
FBS 500 mL	Dominique DUTSCHER	500105U
Penicilina/Estreptomicina	ThermoFisher Scientific	11548876
L-Glutamina 200 mM, 100 mL	Invitrogen	25030024
Geneticina,  20 mL	ThermoFisher Scientific	10092772
Tripsina-EDTA 0,25% (v/v)  500 mL	ThermoFisher Scientific	11570626
Viromer Red	Lipocalyx	VR-01LB-01
Matrix-roGFP Plasmid	AddGene	#49437
Hoechst 33342	ThermoFisher Scientific	H3570	Manuseie com cuidado
preparação de NPs
TiO2 P25 AERÓXIDO	Degussa/Evonik
Isotiocianato de tetrametilrodamina (TRITC)	SIGMA-ALDRICH	T3163	Modificação da superfície de NPs
Preparação da amostra
Folha de policarbonato	Goodfellow	CT301020
Éter Éter Cetona suporte (PEEK)	Matechplast	A-239-4047
Etanol, ACS absoluto	SIGMA-ALDRICH	02860-6x1L
Chlorform, Anidro, 99%	SIGMA-ALDRICH	372978-1L	Cuidado tóxico
Formvar 100 g	Agar Scientific	AGR1201	Nocivo. Use em uma concentração de 10 µ g por mL de clorofórmio
NaOH	SIGMA-ALDRICH	S5881-500G
Fixação da amostra
Pó, 95% Paraformaldeído	SIGMA-ALDRICH	158127-500G	Cuidado tóxico. Use como solução a 4% em PBS
PBS (pH 7,4, sem Ca2+ e Mg2+)	ThermoFisher Scientific	11503387
Prolong Gold Antifade Reagent	ThermoFisher Scientific	P36934
Triton X-100	SIGMA-ALDRICH	93443
NocivoCriofixação de amostras
nitrogênio líquido	sante		Metilbutano prejudicial
> = 99%	SIGMA-ALDRICH&	nbsp; M32631-1L	Cuidado tóxico
Placa de transferência de alumínio	Caseiro
Água destilada e desionizada	Caseiro		Produzido em laboratório utilizando o sistema Barnstead Smart2Pure
Parafilm	VWR	52858-000
Equipment
Barnstead Smart2Pure	ThermoFisher Bancada	Scientific 50129870
, classe II	ThermoFisher Scientific	MSC-Advantage
TC20	Biorad	145-0102SP
Lâminas de contagem 2 poços	Biorad	1450016
detector PIPS, 25 mm2, resolução de energia de 12 keV @5.5 MeV	Canberra	PD25-12-100AM
Detector de estado sólido Si (Li) de alta resolução, resolução de 145-eVenergy, @Mn-Kα	da Oxford Instruments
	Orsay Physics	1-SED
XRF Calibração Padrão sódio ou cloro como NaCl	Micromatéria	34381
Padrão de calibração XRF Magnésio como MgF2	Micromatéria	34382
Padrão de calibração XRF Alumínio como metal	Al Micromatéria	34383
Calibração XRF Padrão Silício como SiO	Micromatéria	34384
Padrão de calibração XRF Enxofre como CuSx	Micromatéria	34385
Padrão de calibração XRF Cálcio como CaF2	Micromatéria	34387
Padrão de calibração XRF Titânio como Ti metal	Micromatéria	34388
Calibração XRF Padrão Ferro como Fe metal	Micromatéria	34389
Sonicator 750W	Sonics Materiais	11743619
Microssonda 3MM	Bioblock scientific	220-05
Liofilizador no vácuo	Elexience	EK3147
Microscópio óptico Zeiss AxioObserver Z1	Carl Zeiss MicroImaging, GmbH	431006-9901
Platina motorizada xy	Carl Zeiss MicroImaging, GmbH	432031-9902
EC Plan-Neofluar 20X, NA 0,50 Ph2 M27 objetiva	Carl Zeiss MicroImaging, GmbH	420351-9910
Plan-Apochromat 63X, NA 1,40 Ph3M27 objetiva	Carl Zeiss MicroImaging, GmbH	420781-9910
Conjunto de filtros Zeiss 02	Carl Zeiss MicroImaging, GmbH	488002-9901
Conjunto de filtros Zeiss 38HE	Carl Zeiss MicroImaging, GmbH	489038-9901
Conjunto de filtros Zeiss 31	Carl Zeiss MicroImaging, GmbH	000000-1031-350
Hotte químico	Erlab	Captair SD321
Acelerador de partículas	HVEE	singletron
Software
ImageJ software	National Institutes of health, EUA	ImageJ 1.51
SimNRA software	Max-Planck-Institut fü r Plasmaphysik, Alemanha	SIMNRA 6.06
Software Gupix	Universidade de Guelph, Canadá	GUPIXWIN 2.2.4