ratinhos fêmea, com 8 - 12 semanas de idade foram usados para este estudo. C57 / BL6 de tipo selvagem (WT) e IL-15 deficientes (IL-15 - / -) foram adquiridos a partir de National Center Animal Laboratory (NLAC), Taiwan e Taconic Farm, respectivamente. -IL-15 deficientes (IL-15 - / -) e IL-15 dominante (+/- IL-15 e IL-15 + / +) mostrou uma proporção de 1: 3 na segunda geração a partir do cruzamento de heterozigotos de IL-15 +/-. O genótipo de IL-15 - / - ratos foi confirmada por análise de PCR. Camundongos foram mantidos na instalação Specific Pathogen gratuito (SPF) no Laboratório animal Center (LAC), Universidade Nacional de Taiwan (NTU) College of Medicine. Todos os procedimentos animais, incluindo os materiais e métodos anestésicos foram realizados de acordo com o protocolo de animais aprovado pela Taiwan University College Nacional de Medicina e Faculdade de Animal Care Institucional Saúde Pública e Use Committee (IACUC) (Declaração de Aprovação do Protocolo animal 20130225).
1. Preparação de agulhas de acupuntura
NOTA: agulhas de acupunctura são dispositivos médicos constituídos por uma pega e uma ponta de agulha (Figura 1A). Os diâmetros da agulha de acupuntura variou entre 0,2 mm (36 L) a 0,35 mm (28 G). Nós seleccionar o ponto mais fino do que a agulha, para evitar o dano celular excessivo potencial durante a punção da pele. Existem 4 comprimentos diferentes da agulha de 0,2 mm, sendo 13 mm (0,5 polegada), 25 mm (1,0 pol), de 40 mm (1.5 in) e 50 mm (2,0 in) de comprimento. Um conjunto de agulhas 10 com comprimento de 13 milímetros desde a aderência melhor confortável durante a oscilação da agulha na pele do ratinho C57BL / 6. Os parâmetros podem ser modificados se o método é aplicado à pele de animais maiores ou realizado por pesquisadores com as mãos maiores.
- Remover agulhas de acupunctura a partir da embalagem estéril, não pirogénico. Colocar as agulhas em um campo estéril.
- Utilizar fita adesiva para ligar rotulagem 10 agulhas em conjunto ifeixe na (Figura 1B).
NOTA: As agulhas 10 são geometricamente dispostos de modo a formar uma forma de cilindro. Por conveniência, utilizar uma peça de película de parafina para estabilizar o arranjo antes de aplicar a fita adesiva. Certifique-se de todos os pontos de agulha estão no mesmo plano. Usando um pacote, em vez de uma única agulha facilita infusão ADN máxima, aumentando a área de contacto entre as agulhas e a pele.
2. Preparação de uma quantidade grande e livre de Endotoxina O DNA de plasmídeo
- Transformar células bacterianas quimicamente competentes com o plasmídeo de ADN.
- Seleccionar e inocular uma única colónia bacteriana em 3 ml de meio LB contendo antibióticos e incubar a 37 ° C num agitador durante a noite.
- Dimensionar-se a cultura por diluição da cultura bacteriana em 1: 100 em 250 ml de meio LB com antibióticos e agitando durante a noite a 37 ° C.
- Prepara-se uma grande quantidade de ADN, utilizando um elevado Qy, kit de preparação de plasmídeo livre de endotoxina seguindo as instruções do fabricante.
NOTA: protocolo Acufection exige elevado grau de pureza e uma grande quantidade de DNA de plasmídeo. Uso de uma alta qualidade, endotoxina livre e o DNA de plasmídeo purificado em coluna é recomendado. - Elui-se o ADN em água estéril. ADN loja em pequenas alíquotas a -20 ° C até estar pronto para acufection.
NOTA: Evite repetidos de congelamento e descongelamento de DNA para garantir a expressão de DNA plasmídeo consistente. - Dilui-se DNA de plasmídeo a 1 mg / ml em PBS estéril para acufection.
3. Procedimento para Acufection
NOTA: A quantidade óptima de ADN e a área da superfície da pele o alvo pode variar para diferentes genes e precisam de ser ainda mais optimizado. A força de perfurao e o número de vezes para soltar a camada córnea da pele também pode variar dependendo da espessura da pele. Estas condições devem ser cuidadosamente determinada depois de avaliar o nível de gene transcri acufected expressãopts por qRT-PCR.
- Pesar os ratinhos e administrar tribromoetanol (400 ug por g de peso corporal) por injecção peritoneal.
NOTA: 2,2,2-tribromoetanol é um agente anestésico injectável que foi utilizada em ratinhos. As soluções são preparadas por dissolução de um grau não-farmacêuticos 2,2,2-tribromoetanol (2,5 g) em água destilada (200 ml) contendo 2,5% de 2-metil-2-butanol. - Use vet oftalmológico pomada nos olhos para evitar a secura sob anestesia.
NOTA: O efeito anestésico vai ser induzida em 1-2 min. Verifique o aperto reflexo dedo do pé para garantir profundidade suficiente de anestesia antes da operação. - Raspar a pele do flanco dorsal e aplica o creme depilatório para dissolver proteínas de queratina na haste do cabelo.
NOTA: O uso de creme depilatório para remover o cabelo vai facilitar a infusão de DNA na pele. - Use bolas de algodão embebidas em água para limpar o creme depilatório.
NOTA: O creme depilatório é solúvel em água. A remoção completa do wil cremel evitar uma superfície gordurosa e garantir um resultado melhor picada. - Usar uma mecha de algodão estéril embebido em etanol a 70% para desinfectar a superfície da pele.
- Mark área alvo (1 centímetro x 1 cm) sobre a pele depilada com uma matriz pré-medido. NOTA: Marcando o site de destino ajudará a aplicar o pacote agulha para cima e para baixo dentro de uma área definida. Isto é importante para assegurar a entrega da mesma quantidade de ADN para uma área de superfície específica para minimizar a variação da experiência-a-experimento.
- Colocar uma gota de 10 ul de ADN de plasmídeo (10 ug) sobre a pele marcada.
NOTA: A quantidade de ADN para acufection varia com diferentes genes e o tipo de vector de expressão. A quantidade de ADN utilizado deve ser cuidadosamente ajustado antes de realizar a experiência de interesse. A 10 uL é uma pequena gota de líquido e situa-se bem sobre a pele raspada e depiladas sem rolar para baixo enquanto picar. Incluem um grupo de controlo de ratinhos tratados com 10 uL de ADN vector vazio para comparar com ratinhos umacufected com o gene estudo. - Segurar o feixe de agulhas de acupuntura (Figura 1B) e picar a superfície marcada com um movimento para cima e para baixo para 100 vezes ou até que a humidade a partir do ADN em PBS na pele desaparece. NOTA: Alguns vermelhidão da superfície da pele podem ocorrer. Evite fazer cortes profundos que sangram. O número de cima e para baixo da punção movimentos sobre a superfície da pele está operativamente determinada quando a humidade a partir do ADN em PBS (10 mL) desaparece na pele. Decidimos 100 vezes em 30 s, porque ele tem dado os resultados mais consistentes de genes entregou-acufection. Se for o caso, as agulhas podem ser reutilizados para até 6 picadas na pele-alvo (1 cm x 1 cm cada). Lavam-se as agulhas em etanol a 70% e PBS entre acufection. Mudar para novas agulhas quando eles são opaca ou por DNA de plasmídeo diferente a fim de evitar a contaminação cruzada.
- Coloque ratinhos acufected sobre uma almofada de aquecimento para manter a temperatura do corpo até acordado.
- Voltar ratos para sua gaiola quando eles têmconsciência suficiente recuperou. Nota: Observar ratinhos acufected em gaiola separada (menos de 5 animais por gaiola) da gaiola de ratinhos acufected-un.
- Coloque a garrafa de água no lugar e voltar a gaiola para o IVC (gaiola ventilado individualmente) rack.
Cuidados 4. Pós-operatório
- Durante as primeiras 48 h após o procedimento, ratos acompanhar de perto para qualquer desconforto incluindo alterações comportamentais (agitação, agitação ou eating disorder) ou aparência anormal (pelagem áspera ou postura arqueada).
5. Imiquimod (IMQ) Tratamento de Pele de IL-15ΔE7-acufected
NOTA: expressão transcricional e produção de proteína do gene acufected são detectáveis no dia 3. Os ratinhos acufected com o plasmídeo de interesse podem ser tratadas com diferentes tipos de estimulantes 3 dias após a transfecção. Nós ilustramos aqui tratando a pele IL-15ΔE7-acufected rato com creme IMQ. IMQ é um f imidazoquinolin amina aprovadoou o tratamento de verrugas genitais externas e perinatais 13. Tratamento IMQ tópica é mostrado para induzir doenças de pele com psoríase de tipo humano em ratinhos com a manifestação de pele escamosa, proliferação epidérmica e infiltração 12, 14, 15 de neutrófilos dérmica.
NOTA: O vector plasmídeo continha-rato de comprimento completo de ADNc de IL-15, sob a regulação do factor de alongamento 1 α (PEF), flanqueado com um péptido sinal de IL-2 e uma etiqueta FLAG no terminal C (pEF-IL 15, 5859 pares de bases), que foi construído como descrito por Bamford et al. 16. O plasmídeo é utilizado como um modelo de IL-15 para eliminar os primeiros 16 aminoácidos nos resíduos 33-48 do exão 7 do gene da IL-15 para IL-15ΔE7 (pEF-IL-15ΔE7, 5,811 pares de bases) por SOE (síntese por extensão de sobreposição) método de PCR de 17. colônias de bactérias que estavam com sucessotransformada com IL-15ΔE7 foram verificadas por digestão com enzimas de restrição e sequenciação de ADN, seguido por 12, 18. Uma grande quantidade de DNA de plasmídeo isento de endotoxina foi preparado como descrito no passo 2 do protocolo.
- Anestesiar ratos acufected por injecção intraperitoneal de tribromoetanol (400 ug por g de peso corporal) e aplicar veterinário pomada oftalmológica em olhos para evitar a secura sob anestesia. Verifique o aperto reflexo de igual para assegurar profundidade suficiente de anestesia antes do início dos procedimentos operatórios. Observação: Uma vez que a pele de 2 cm x 2 cm de vão ser tratados para IMQ, 2 doses de pIL-15ΔE7 plasmídeo de ADN (10? G em 10? L de PBS por dose) é acufected em 2 locais-alvo (1 cm x 1 cm cada).
- Mark flanquear pele (2 cm x 2 cm), cobrindo a área acufected.
- Use aplicador Q-tip para aplicar topicamente creme IMQ sobre a área de superfície marcada. Nota: passo 5.1 só é levada a cabo durante a primeira dose (60 mg / dose).As doses seguintes consecutivos são aplicados aos ratos não-anestesiados.
- Documentar as alterações de pele dorsal-tratada IMQ diariamente com uma câmara de vídeo de alta definição. Nota: Uma pessoa segura o mouse enquanto outro está gravando. As imagens estáticas são filmados e editados em um momento posterior.
- Eutanásia ratos por injecção de uma overdose de tribromoetanol (800 ug por g de peso corporal) seguida por deslocamento cervical no dia 4 ou dia 7 após o tratamento IMQ. A pele é retirado e processados (Passos 4,1-4,5).
6. homogeneizado rato Pele
- Use um par de tesouras cirúrgicas para fazer um corte horizontal da base da cauda. Proceder bilateralmente para a base do membro posterior e continuar a cortar verticalmente ao longo do flanco para a base do membro anterior.
- Cuidadosamente tirar a pele a partir do tecido subjacente de posterior para o anterior. Use a tesoura para cortar a pele dorsal. Coloque a pele em uma placa de Petri estéril.
- Use um bisturi para extirpar-alvopele e congelá-lo em azoto líquido imediatamente. Nota: O mesmo tamanho de pele sem acufected (1 cm x 1 cm) ou com tratamento IMQ (2 cm x 2 cm) é fixada para cada rato para minimizar variações experimento-a-experimento.
- Colocar o tecido de pele congelado no centro de uma argamassa de compartimento 2 pré-refrigerada com alças e um pilão. Use um martelo de chumbo na argamassa para pulverizar o tecido.
- coloque rapidamente o tecido pulverizado para um novo tubo contendo 500 ul de reagente de lise de células para a extracção de RNA ou a um tubo contendo 50 uL de PBS e 1x cocktail inibidor de protease para obter lisado de proteína.
7. H & E e imuno-histoquímica Coloração de Secção de pele
- Colocar o tecido da pele de uma cassete e mergulhá-lo em paraformaldeído a 4% durante a noite.
- Incorporar e seco de tecido, que, no nosso caso, foi realizada pelo Laboratório de Patologia no LAC, NTU. Nota: A secção é cortada a uma espessura de 5? M. seç tecido lugarons em linas carregadas positivamente.
- Aquecer as lâminas a 65 ° C durante 15 min.
- Colocar as lâminas em um suporte de coloração. Imergir a cremalheira para dentro do tanque correspondente contendo substituto de xileno durante 5 minutos duas vezes, seguido por imersão sequencial em 100%, 95%, 80%, 75%, 60% e 50% de etanol (5 min cada) para re-hidratação. Mergulhar as lâminas em água da torneira durante 3 min antes da coloração.
- Execute hematoxilina e eosina. Nota: H & E mancha foi realizado a pedido no Laboratório de Patologia no LAC, NTU.
- Para coloração imuno-histoquímica, bloquear a secção com uma solução de bloqueio à temperatura ambiente durante 5 min para reduzir a colorao de fundo n especica. Nota: A solução de bloqueio é comercialmente desenvolvidas com técnicas de imunocoloração. Nenhum soro animal é contido neste produto.
- Dip slide em PBS para lavar a solução de bloqueio.
- Dilui-se a solução bloco em PBS a 1:10 e adiciona soro fetal de bovino a 2% (FBS) (solução diluente).
- Pipeta o anticorpo primário diluído apropriadamente para a secção e incubar durante 60 min à temperatura ambiente. Nota: Os anticorpos são diluídos em solução diluente. As concentrações de anticorpos para esta coloração foram optimizados em 1: 800 e 1: 200 para Ki-67 (clone SolA15) e Ly6G (clone 1A8), respectivamente. Estas concentrações são encontrados para mostrar mancha distinta, sem coloração de fundo.
- Corar uma secção de série no mesmo ensaio com a mesma solução omitindo o anticorpo primário para controlar a ligação não específica do anticorpo secundário.
- Lave as lâminas três vezes em TBS mais 0,1% de Tween-20 (solução de TBST) durante 5 minutos cada. Mudança solução entre as lavagens.
- Pipetar uma gota de polímeros marcados para cada secção e incubar à temperatura ambiente durante 40 min. Nota: O polímero marcado está comercialmente preparada por combinação de polímeros de aminoácidos com peroxidase e anticorpo secundário o qual é reduzido a um fragmento Fab'. O reagente está pronto a ser usado paracoloração imuno-histoquímica de secções de tecido de ratinho.
- Lave as lâminas três vezes em TBST, durante 5 minutos cada. Mudança solução entre as lavagens.
- Pipeta 3,3'-diaminobenzindine tetracloridrato solução (DAB) na seco de tecido e deixe repousar à temperatura ambiente até que um precipitado castanho é visível sob um microscópio de campo brilhante. Nota: O tempo para DAB para precipitar na presença de peroxidase é de cerca de 30 min.
- Imergir as lâminas em água para parar a atividade da peroxidase. Dip slides em solução verde de metilo para coloração nuclear. Lave as lâminas três vezes em PBS durante 5 min cada.
- Coloque uma lamela sobre a secção corada que é coberta com meio de montagem permanente (8 mL por secção).
8. Foto e análise do tecido Seção manchado
- Visualizar secções de tecidos coradas H & E e IHC sob um microscópio de campo brilhante. As imagens de captura usando dispositivo de acoplamento da câmara de carga (CCD) ligado ao microscópio. para qanálise quantitativas, software de imagem pode ser usado
- Digitalizar todo o secções coradas usando um scanscope com um objetivo 20X.
- Medir a espessura da epiderme dentro de um segmento de 1 mm da epiderme e contar o número de células imunorreactivas-Ki67 no interior do segmento.
NOTA: Quantitative análise é realizada usando microscopia de automação e imagem software de análise. A espessura da epiderme é definida pela distância entre a camada basal e a camada mais externa da epiderme. - Contar o número de células imunorreactivas Ly6G na área dérmica (230 x 270? M 2 rectângulo) imediatamente abaixo tópico da pele tratados com IMQ.